Summary

Calvarial modell av ben förstärkning i kanin för bedömning av bentillväxt och kärlnybildning i ben ersättning material

Published: August 13, 2019
doi:

Summary

Här presenterar vi ett kirurgiskt protokoll på kaniner med syfte att bedöma benersättningsmaterial i form av benregenereringskapacitet. Genom att använda PEEK cylindrar fast på kanin dödskallar, osteoconduction, osteoinduktion, osteogenesis och vasculogenesis induceras av materialen kan utvärderas antingen på levande eller euthanized djur.

Abstract

Den grundläggande principen för kanincalvarial modellen är att odla ny benvävnad vertikalt ovanpå den kortikala delen av skallen. Denna modell möjliggör bedömning av ben ersättning material för oral och kraniofacial ben förnyelse i form av bentillväxt och kärlnybildning stöd. När djuren är sövda och ventilerade (endotrakeal intubation), fyra cylindrar gjorda av polyetereterketon (PEEK) skruvas på skallen, på båda sidor av median och koronala suturer. Fem intramedullära hål borras inom det ben område som avgränsas av varje cylinder, vilket möjliggör inflöde av benmärgsceller. Materialproverna placeras i de cylindrar som sedan stängs. Slutligen, den kirurgiska webbplatsen sys, och djur är vakna. Bentillväxt kan bedömas på levande djur med hjälp av mikrotomografi. När djuren är euthanized, bentillväxt och kärlnybildning kan utvärderas med hjälp av mikrotomografi, immunhistologi och immunofluorescensering. Som utvärderingen av ett materiellt kräver maximum standardisering och kalibrering, calvarial modellerar verkar ideal. Tillgången är mycket enkel, kalibrering och standardisering underlättas genom användning av definierade cylindrar och fyra prov kan bedömas samtidigt. Dessutom kan levande tomografi användas och i slutändan en stor minskning av djur som skall euthanized kan förutses.

Introduction

Den calvarial modell av ben förstoring utvecklades på 90-talet i syfte att optimera begreppet guidad ben förnyelse (GBR) i den orala och kraniofaciala kirurgiska domänen. Den grundläggande principen för denna modell är att odla ny benvävnad vertikalt ovanpå den kortikala delen av skallen. För att göra detta, en reaktor (t. ex., Titan-Dome,-cylinder eller-bur) är fast på skallen för att skydda ben förnyelse utförs av ett transplantat (t. ex., hydrogel, bensubstitut, etc.). Med hjälp av denna modell, Titan eller keramiska burar1,2,3,4,5,6, GBR membran7,8,9 ,10, Osteogena faktorer11,12,13,14,15,16,17, nytt ben substitut12,16,17,18,19,20,21,22,23 , 24 , 25 , 26 , 27 , 28 , 29 eller mekanismen för kärlnybildning under benregenereringsprocessen30 bedömdes.

Från en translationell synvinkel, den calvarial modellen representerar en en-vägg defekt som kan jämföras med en klass IV defekt i käken31. Målet är att odla nytt ben över en kortikal yta, utan någon lateral stöd från endogena ben väggar. Modellen är således ytterst stringent och bedömer den verkliga potentialen hos vertikal osteoöverledning över den kortikala delen av benet. Om den modell som beskrivs häri främst är avsedd för bedömning av osteoöverledning i ben ersättningar, kan osteogenes och/eller osteoinduktion också bedömas, liksom vasculogenesis1,2,3, 4,5,6,7,8,9,10,11,12,13 ,14,15,16,17,18,19,20,21,22 ,23,24,25,26,27,28,29,30.

I huvudsak av etiska, praktiska och ekonomiska skäl, den calvarial modellen utvecklades i kanin där benmetabolism och struktur är ganska relevant jämfört med Human32. Av de 30 ovannämnda referenserna använde 80% kaninkalvarial modell1,2,3,4,5,6,7,8 ,9,10,11,12,13,14,15,17,22, 23,26,27,28,29,30,33, vilket visar relevansen av denna djurmodell. I 2008, Busenlechner gruppen överfört calvarial modell till gris, för att möjliggöra en jämförelse av åtta ben ersättningar samtidigt20 (jämfört med två ben ersättningar med kanin). Å andra sidan, vår grupp överfört kanin calvarial modell till får. I korthet placerades Titan kupoler på fårskallar för att karakterisera osteoconduction av en ny 3D-tryckt ben ersättning. Dessa studier tillät oss att utveckla och behärska calvarial modellen och dess analys16,21.

De tre sista studierna citerade16,20,21, tillsammans med flera andra utredningar12,17,18,19,22, 23,24,26,27,28,29, bekräftade den stora potentialen hos den calvariala modellen som en screening och karakterisering Modell. Men även om de erhållna resultaten var ganska tillfredsställande, påpekade de också vissa begränsningar: (1) användningen av Titan kupoler, som förhindrade röntgen diffusion och i sin tur levande mikro-CT-användning. Dessa kunde inte tas bort före histologisk bearbetning, tvinga forskarna att bädda in proverna i poly (metylmetakrylat) harts (PMMA). De resulterande analyserna var därför till stor del begränsade till topografi. (2) höga finansiella kostnader, särskilt på grund av kostnaden för djuren, och kostnader i samband med logistik, underhåll och kirurgi av djuren. (3) svårigheter att få etiska godkännanden för stora djur.

En nyligen studie av Polo, et al.26 till stor del förbättrat modellen på kanin. Titan kupoler ersattes med stängbara cylindrar som kunde fyllas med en konstant volym av material. Fyra av dessa cylindrar placerades på kanin dödskallar. Vid slutförandet kunde cylindrarna tas bort så att biopsier var metallfria och introducerade mycket mer flexibilitet när det gällde prov bearbetningen. Kaninen calvarial modell blev attraktiv för samtidig testning med lägre kostnader, enkel djurhantering och underlättande av provbearbetning. Genom att dra nytta av den senaste tidens utveckling har vi förbättrat modellen ytterligare genom att ersätta Titan med PEEK för att tillverka cylindrar, vilket möjliggör röntgendiffusion och användning av mikrotomografi på levande djur.

I denna artikel kommer vi att beskriva anestesi och kirurgi processer och Visa exempel på utgångar som kan erhållas med hjälp av detta protokoll, dvs (Immuno-) histologi, histomorphometry, Live och ex vivo mikrotomografi för att utvärdera mekanismerna av ben förnyelse och kvantifiera den nya ben syntesen som stöds av bensubstitut material.

Protocol

I enlighet med schweiziska rättsliga krav godkändes protokollet av en akademisk kommitté och övervakades av kantonala och federala veterinärmyndigheter (auktorisationer n ° GE/165/16 och GE/100/18). 1. särskilda anordningar och djur Cylindrar Maskin cylindrar med laterala stabiliserande flikar av PEEK för att ha innerdiameter på 5 mm, ytterdiameter på 8 mm och en höjd av 5 mm (figur 1). Maskin PEEK mösso…

Representative Results

Den modell som beskrivs häri är tillägnad bedömningen av osteoconduction i ben ersättningar. Osteogenes och-eller osteoinduktion av ben ersättningar antingen (pre-) cellulariserad eller laddad med bioaktiva molekyler kan också bedömas, samt vasculogenesis1,2,3,4, ,5 , 6 , <s…

Discussion

Modellen som beskrivs häri är enkel och bör utvecklas ganska lätt så länge som alla steg följs och utrustningen är lämplig. Som det beskrivna protokollet är en kirurgisk metod, alla steg verkar kritisk och måste följas korrekt. Det är viktigt att utbildas för djurförsök, särskilt i kanin hantering och anestesi. Tveka inte att be om professionell anestetist och veterinär hjälp. Det är viktigt att insistera på den dagliga visuella övervakningen av djur före och efter sutur avlägsnande. Även om hude…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna är skuldsatta till Geistlich AG (Wolhusen, CH) och Osteology Foundation (Lucerne, CH) (Grant n ° 18-049) för deras stöd, samt globala D (Brignais, FR) för att ge skruvarna. Ett särskilt tack går till Dr B. Schaefer från Geistlich. Vi är också tacksamma mot Eliane Dubois och Claire Herrmann för deras utmärkta histologiska bearbetning och deras dyrbara råd. Slutligen, vi erkänner varmt Xavier Belin, Sylvie Roulet och hela teamet av PR Walid Habre, “experimentell kirurgi DPT”, för deras anmärkningsvärda tekniska hjälp.

Materials

Drugs
Enrofloxacine Baytril 10% Bayer Antibiotic
Fentanyl Bischel For analgesia
Ketalar 50mg/ml Pfizer Ketamine for anesthesia
Lidohex Bichsel Lubricating gel for the eyes
Opsite Smith and Nephew 66004978 Sprayable dressing
Povidone iodine 10%, Betadine Mundipharma anti-infective agent
Propofol 2% Braun 3538710 For anesthesia
Rapidocain 2% sintetica Local anesthesia
Ringer-acetate Fresenius Kabi Volume compensation
Rompun 2% Bayer Xylazin for anesthesia
Sevoflurane 5% Abbvie For anesthesia
Sterile saline Sintetica
Temgesic Reckitt Benckiser Buprenorphine hydrochloride, analgesia
Thiopental Inresa Ospediala For anesthesia
Xylocaine 10% spray Astra Zeneca For intubation
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
Fresenius Vial pilot C Imexmed Infusion pump
Heated pad Harvard Apparatus
Suction dominant 50 Medela
Suction tubing Optimus Promedical 80342.2
Surgical motor Schick dental Qube Drilling of intramedullary holes
Ventilation Maquet Servo1
Name Company Catalog Number Comments
Material
Cylinders and caps Boutyplast Customized composition: PEEK (poly ether ether ketone)
Manual self-retaining shaft GlobalD ACT1K
Mobile handle for self-retaining shaft GlobalD MTM
Self- drilling screws GlobalD VA1.2KL4 cross-drive screws composed by Titanium grade5, ISO 5832-3
Name Company Catalog Number Comments
Surgical tray
Endotracheal tube Shiley diameter 2,5mm Covidien 86233 For intubation
Endotracheal tube Shiley diameter 4,9mm Covidien 107-35G For intubation
Ethicon prolene 4-0 Ehticon 8581H Non-resorbable suture
Forceps Marcel Blanc BD027R 145 mm
Intubation catheter Cook medical Guide for intubation
Needlle holder Marcel Blanc BM008R
Needles BD Microlance3 Becton Dickinson 300300/304622 26G; 18G
Periosteal HU-Friedy P9X
Round surgical burs Patterson 78000 0.8 mm in diameter, Drilling of intramedullary holes
Scalpel Swann-Morton n°10 and n°15
Scissors Marcel Blanc 00657 180 mm
Syringes Omnifix Braun 4616057V 5ml, 10ml and 50ml
Venflon G22 Braun 42690985-01 Vasofix safety for the ear iv line

References

  1. Anderud, J., et al. Guided bone augmentation using a ceramic space-maintaining device. Oral Surgery, Oral Medicine, Oral Pathology and Oral Radiology. 118 (5), 532-538 (2014).
  2. Lundgren, A. K., Lundgren, D., Hammerle, C. H., Nyman, S., Sennerby, L. Influence of decortication of the donor bone on guided bone augmentation. An experimental study in the rabbit skull bone. Clinical Oral Implants Research. 11 (2), 99-106 (2000).
  3. Lundgren, D., Lundgren, A. K., Sennerby, L., Nyman, S. Augmentation of intramembraneous bone beyond the skeletal envelope using an occlusive titanium barrier. An experimental study in the rabbit. Clinical Oral Implants Research. 6 (2), 67-72 (1995).
  4. Slotte, C., Lundgren, D. Impact of cortical perforations of contiguous donor bone in a guided bone augmentation procedure: an experimental study in the rabbit skull. Clinical Implant Dentistry and Relat Research. 4 (1), 1-10 (2002).
  5. Tamura, T., et al. Three-dimensional evaluation for augmented bone using guided bone regeneration. Journal of Periodontal Research. 40 (3), 269-276 (2005).
  6. Yamada, Y., et al. Correlation in the densities of augmented and existing bone in guided bone augmentation. Clinical Oral Implants Research. 23 (7), 837-845 (2012).
  7. Chierico, A., et al. Electrically charged GTAM membranes stimulate osteogenesis in rabbit calvarial defects. Clinical Oral Implants Research. 10 (5), 415-424 (1999).
  8. Ikeno, M., Hibi, H., Kinoshita, K., Hattori, H., Ueda, M. Effects of the permeability of shields with autologous bone grafts on bone augmentation. International Journal of Oral and Maxillofacial Implants. 28 (6), e386-e392 (2013).
  9. Ito, K., Nanba, K., Murai, S. Effects of bioabsorbable and non-resorbable barrier membranes on bone augmentation in rabbit calvaria. Journal of Periodontology. 69 (11), 1229-1237 (1998).
  10. Lee, Y. M., et al. Enhanced bone augmentation by controlled release of recombinant human bone morphogenetic protein-2 from bioabsorbable membranes. Journal of Periodontology. 74 (6), 865-872 (2003).
  11. Fugl, A., et al. S-nitroso albumin enhances bone formation in a rabbit calvaria model. International Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 43 (3), 381-386 (2014).
  12. Ikeno, M., Hibi, H., Kinoshita, K., Hattori, H., Ueda, M. Effects of self-assembling peptide hydrogel scaffold on bone regeneration with recombinant human bone morphogenetic protein-2. International Journal of Oral and Maxillofacial Implants. 28 (5), e283-e289 (2013).
  13. Ito, K., et al. Effects of ipriflavone on augmented bone using a guided bone regeneration procedure. Clinical Oral Implants Research. 18 (1), 60-68 (2007).
  14. Jung, R. E., Hammerle, C. H., Kokovic, V., Weber, F. E. Bone regeneration using a synthetic matrix containing a parathyroid hormone peptide combined with a grafting material. International Journal of Oral and Maxillofacial Implants. 22 (2), 258-266 (2007).
  15. Minegishi, T., et al. Effects of ipriflavone on bone augmentation within a titanium cap in rabbit calvaria. Journal of Oral Science. 44 (1), 7-11 (2002).
  16. Moussa, M., et al. Medium-Term Function of a 3D Printed TCP/HA Structure as a New Osteoconductive Scaffold for Vertical Bone Augmentation: A Simulation by BMP-2 Activation. Materials. 8 (5), 2174-2190 (2015).
  17. Thoma, D. S., Kruse, A., Ghayor, C., Jung, R. E., Weber, F. E. Bone augmentation using a synthetic hydroxyapatite/silica oxide-based and a xenogenic hydroxyapatite-based bone substitute materials with and without recombinant human bone morphogenetic protein-2. Clinical Oral Implants Research. 26 (5), 592-598 (2014).
  18. Busenlechner, D., et al. Resorption of deproteinized bovine bone mineral in a porcine calvaria augmentation model. Clinical Oral Implants Research. 23 (1), 95-99 (2012).
  19. Busenlechner, D., et al. Paste-like inorganic bone matrix: preclinical testing of a prototype preparation in the porcine calvaria. Clinical Oral Implants Research. 20 (10), 1099-1104 (2009).
  20. Busenlechner, D., et al. Simultaneous in vivo comparison of bone substitutes in a guided bone regeneration model. Biomaterials. 29 (22), 3195-3200 (2008).
  21. Carrel, J. P., et al. A 3D printed TCP/HA structure as a new osteoconductive scaffold for vertical bone augmentation. Clinical Oral Implants Research. 27 (1), 55-62 (2016).
  22. Murai, M., et al. Effects of different sizes of beta-tricalcium phosphate particles on bone augmentation within a titanium cap in rabbit calvarium. Dental Materials Journal. 25 (1), 87-96 (2006).
  23. Nishida, T., et al. Effects of bioactive glass on bone augmentation within a titanium cap in rabbit parietal bone. Journal of Periodontology. 77 (6), 983-989 (2006).
  24. Nyan, M., et al. Feasibility of alpha tricalcium phosphate for vertical bone augmentation. Journal of Investigating and Clinical Dentistry. 5 (2), 109-116 (2012).
  25. Polimeni, G., et al. Histopathological observations of a polylactic acid-based device intended for guided bone/tissue regeneration. Clinical Implant Dentistry and Related Research. 10 (2), 99-105 (2008).
  26. Polo, C. I., et al. Effect of recombinant human bone morphogenetic protein 2 associated with a variety of bone substitutes on vertical guided bone regeneration in rabbit calvarium. Journal of Periodontology. 84 (3), 360-370 (2013).
  27. Slotte, C., Lundgren, D., Burgos, P. M. Placement of autogeneic bone chips or bovine bone mineral in guided bone augmentation: a rabbit skull study. International Journal of Oral and Maxillofacial Implants. 18 (6), 795-806 (2003).
  28. Tamimi, F. M., et al. Bone augmentation in rabbit calvariae: comparative study between Bio-Oss and a novel beta-TCP/DCPD granulate. Journal of Clinical Periodontology. 33 (12), 922-928 (2006).
  29. Torres, J., et al. Effect of solely applied platelet-rich plasma on osseous regeneration compared to Bio-Oss: a morphometric and densitometric study on rabbit calvaria. Clinical Implant Dentistry and Related Research. 10 (2), 106-112 (2008).
  30. Yamada, Y., et al. Angiogenesis in newly augmented bone observed in rabbit calvarium using a titanium cap. Clinical Oral Implants Research. 19 (10), 1003-1009 (2008).
  31. Cordaro, L., Terheyden, H., Wismeijer, D., Chen, S., Buser, D. . ITI Treatment Guide. 7, (2014).
  32. Pearce, A. I., Richards, R. G., Milz, S., Schneider, E., Pearce, S. G. Animal models for implant biomaterial research in bone: A review. European Cells & Materials. 13, 1-10 (2007).
  33. Min, S., et al. Effects of marrow penetration on bone augmentation within a titanium cap in rabbit calvarium. Journal of Periodontology. 78 (10), 1978-1984 (2007).
  34. Braun, T. M., Giannobile, W. V., Nevins, M. Ch. 4. Osteology guidelines for oral and maxillofacial regeneration Preclinical models for translational research. , 31-43 (2011).
  35. Doro, D. H., Grigoriadis, A. E., Liu, K. J. Calvarial Suture-Derived Stem Cells and Their Contribution to Cranial Bone Repair. Frontiers in Physiology. 8, 956 (2017).
  36. Russel, W., Burch, R. . The principles of humane experimental technique. , (1959).
  37. Asvanund, P., Chunhabundit, P. Alveolar bone regeneration by implantation of nacre and B-tricalcium phosphate in guinea pig. Implant Dentistry. 21 (3), 248-253 (2012).
  38. Gielkens, P. F., et al. Gore-Tex as barrier membranes in rat mandibular defects: an evaluation by microradiography and micro-CT. Clinical Oral Implants Research. 19 (5), 516-521 (2008).
  39. Lioubavina, N., Kostopoulos, L., Wenzel, A., Karring, T. Long-term stability of jaw bone tuberosities formed by "guided tissue regeneration&#34. Clinical Oral Implants Research. 10 (6), 477-486 (1999).
  40. Mardas, N., Kostopoulos, L., Stavropoulos, A., Karring, T. Osteogenesis by guided tissue regeneration and demineralized bone matrix. Journal of Clinical Periodontology. 30 (3), 176-183 (2003).
  41. Stavropoulos, A., Kostopoulos, L., Mardas, N., Nyengaard, J. R., Karring, T. Deproteinized bovine bone used as an adjunct to guided bone augmentation: an experimental study in the rat. Clinical Implant Dentistry and Related Research. 3 (3), 156-165 (2001).
  42. Stavropoulos, A., Kostopoulos, L., Nyengaard, J. R., Karring, T. Deproteinized bovine bone (Bio-Oss) and bioactive glass (Biogran) arrest bone formation when used as an adjunct to guided tissue regeneration (GTR): an experimental study in the rat. Journal of Clinical Periodontology. 30 (7), 636-643 (2003).
  43. Stavropoulos, A., Kostopoulos, L., Nyengaard, J. R., Karring, T. Fate of bone formed by guided tissue regeneration with or without grafting of Bio-Oss or Biogran. An experimental study in the rat. Journal of Clinical Periodontology. 31 (1), 30-39 (2004).
  44. Stavropoulos, A., Nyengaard, J. R., Kostopoulos, L., Karring, T. Implant placement in bone formed beyond the skeletal envelope by means of guided tissue regeneration: an experimental study in the rat. Journal of Clinical Periodontology. 32 (10), 1108-1115 (2005).
  45. Thomaidis, V., et al. Comparative study of 5 different membranes for guided bone regeneration of rabbit mandibular defects beyond critical size. Medical Science Monitor. 14 (4), (2008).
  46. Zhang, J. C., et al. The repair of critical-size defects with porous hydroxyapatite/polyamide nanocomposite: an experimental study in rabbit mandibles. International Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 39 (5), 469-477 (2010).
  47. Zhang, X., et al. Osteoconductive effectiveness of bone graft derived from antler cancellous bone: an experimental study in the rabbit mandible defect model. International Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 41 (11), 1330-1337 (2012).
  48. Bronoosh, P., et al. Effects of low-intensity pulsed ultrasound on healing of mandibular bone defects: an experimental study in rabbits. International Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 44 (2), 277-284 (2015).
  49. Gomes, F. V., et al. Low-level laser therapy improves peri-implant bone formation: resonance frequency, electron microscopy, and stereology findings in a rabbit model. International Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 44 (2), 245-251 (2014).
  50. Lalani, Z., et al. Spatial and temporal localization of secretory IgA in healing tooth extraction sockets in a rabbit model. Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 62 (4), 466-472 (2004).
  51. Osorio, L. B., et al. Post-extraction evaluation of sockets with one plate loss–a microtomographic and histological study. Clinical Oral Implants Research. 27 (1), 31-38 (2014).
check_url/kr/59976?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Marger, L., Barone, A., Martinelli-Kläy, C. P., Schaub, L., Strasding, M., Mekki, M., Sailer, I., Scherrer, S. S., Durual, S. Calvarial Model of Bone Augmentation in Rabbit for Assessment of Bone Growth and Neovascularization in Bone Substitution Materials. J. Vis. Exp. (150), e59976, doi:10.3791/59976 (2019).

View Video