Summary

En ektopisk Chemokine uttrycks modell för att testa macrophage rekrytering in vivo

Published: September 25, 2019
doi:

Summary

För att testa effekten av en Chemokine på makrofag rekrytering in vivo, var hela Mount in situ hybridisering används för att upptäcka ektopisk uttryck för Chemokine, och immunofärgning användes för att märka makrofager. Live Imaging användes för realtids observation av makrofagmigrering.

Abstract

Zebrafish används ofta i grundläggande och biomedicinsk forskning. Många zebrafiskar transgena linjer är för närvarande tillgängliga för att märka olika typer av celler. På grund av den genomskinliga embryonala kroppen av zebrafisk, det är bekvämt för oss att studera effekten av en Chemokine på beteendet hos en viss typ av celler in vivo. Här har vi tillhandahållit ett arbetsflöde för att undersöka funktionen hos en Chemokine på makrofagmigrering in vivo. Vi konstruerade en vävnad-specifika överuttryck plasmid att överuttrycka Il-34 och injiceras plasmiden i en cell skede transgena fisk embryon vars makrofager var särskilt märkta med ett fluorescerande protein. Vi använde sedan hela montera fluorescerande in situ hybridisering och immunofärgning att upptäcka mönstret av Chemokine uttryck och antalet eller lokalisering av makrofager. De injicerade WT-embryona höjdes för att generera en stabil transgen linje. Slutligen använde vi konfokalmikroskopi Live Imaging att direkt observera makrofag beteende i den stabila transgena fisken att studera funktionen av Il-34 på makrofager in vivo.

Introduction

Zebrafish är en liten tropisk hårda ben sötvattenfisk har sitt ursprung i Indien. Angående gen beskydd har zebrafiskar en likhet av 87% till människan1. Det kan ge oss insikter om relaterade ämnen av människan genom att studera genreglering, proteinfunktion och cell beteende såsom migration, proliferation et.al i zebrafisk. Zebrafish embryo kan användas för att observera utvecklingen av tidiga embryon i olika stadier efter att hämma pigment. Under tiden tar det bara tre månader för zebrafiskar att utvecklas till sexuell mognad, då zebrafisken kan producera hundratals ägg var 4 dagar. Mini-storlek, enkel avel, stark fortplantningsförmåga, dessa fördelar gör zebrafiskar kultur mycket utrymmesbesparande, bidrar till storskalig kultur. Den traditionella däggdjurs modellen mus har en högre underhållskostnader än Zebrafish, därför begränsa omfattningen av mus höjning. I aspekten av tidig embryonal utveckling, mus embryo är svårt att Observera i levande tillstånd på grund av egenskaperna hos mus embryots utveckling i moderlivmodern. Tvärtom, zebrafiskar embryon utvecklas externt och är transparenta, därför är de lätta att observera under ett mikroskop. Dessutom är zebrafiskar mycket lätt att konstruera en mängd transgena linjer för relaterad genfunktion forskning. För närvarande, olika zebrafiskar transgena linjer är tillgängliga för att märka olika typer av celler. Det är mycket bekvämt nu att konstruera transgena linjer för att överuttrycka chemokines på specifika platser och studera chemokines funktion på cell beteende i zebrafisk.

Här, vi tillhandahöll ett arbetsflöde för att använda zebrafiskar transgena linje för att undersöka funktionen av Il-34 på makrofage beteende in vivo2,3,4,5,6,7. För det första konstruerade vi en leverspecifik överuttryck plasmid av genen il34 och injiceras plasmiden i en-cells skede TG (MPEG1: GFP) fisk embryon som specifikt märkt makrofager av fluorescerande protein GFP. Sedan använde vi hela montera fluorescerande in situ hybridisering och immunofärgning att upptäcka mönstret av il34 uttrycket och antalet eller lokalisering av makrofager. De injicerade WT-embryona höjdes för att generera en stabil transgen linje. I dessa steg, vi etablerade och validerade cytokin-producerande linje och visuellt bedömas de effekter som kan ses på makrofagdistribution. Slutligen, för att undersöka makrofagbeteende som svar på cytokin, vi använde konfokalmikroskopi Live Imaging att direkt observera makrofagmigrering för att bekräfta funktionen av il34 på makrofagmigrering in vivo.

Protocol

Anmärkning: Alla prover behandlades med fenylthiourea (PTU) ägg vatten för att hämma pigment. 1. generering av TG (fabp10a: il34) transgena konstruktioner och fisk injektion Klona 2,8 KB fabp10a promotor8 och Il-34 kodning regioner (ensdart 00000126460.3) av zebrafiskar i pTol2 vektor för att generera fabp10a-il34 konstruera. Injicera konstrukterna i encellsstadiet TG (MPEG1: GFP) och WT-fiskem…

Representative Results

De steg som ingår i zebrafiskar-protokollet illustreras i figur 2. Först genererade vi pBLK-fabp10a-il34-sv40-konstruktionen där il34 drevs av den fabp10a promotorn (figur 2). Konstruktionen var mikroinjicerad i encellig fas TG (MPEG1: GFP) zebrafiskar embryon som kan märka makrofager med GFP och WT embryon som höjdes till vuxna för att generera transgena stabil linje (<strong class="xfig…

Discussion

Protokollet som beskrivs här tillåter oss att undersöka funktionen hos en Chemokine på beteendet hos macrophagein vivo och förfarandet kräver viss teknisk expertis. Sammanfattnings, det finns flera kritiska steg för att undvika komplikationer i protokollet: 1) Välj en lämplig transgena linje som visar specifika och starka transgena signalen att märka cellen av intresse; 2) Välj en lämplig vävnad som är tillgänglig för avbildning och transgena genöveruttryck. 3) gör en känslig och specifik RNA-sond; 4) …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Dr Jingrong peng för att dela TG (fabp10a: DsRed) transgena linje; Dr. Zilong Wen för att dela TG (MPEG1: GFP) transgena linjer; Dr Koichi Kawakami för att tillhandahålla pTol2 Vector. Detta arbete stöddes av National Natural Science Foundation i Kina (31771594), Guangdong vetenskap och teknik plan projekt (2019A030317001) och de grundläggande forskningsfonderna för de centrala universiteten (D2191450).

Materials

Antibody
Alexa 488-Anti-Goat antibody Invitrogen A11055
Anti-Digoxigenin-HRP  perkinelmer NEF832001EA
Goat-Anti-GFP antibody Abcam ab6658
Reagent
CaCl2H2O Sigma 21097
Cyanine 3 Plus Amplification Reagent perkinelmer NEL745001KT
E2 solution 15 mM  NaCl +0.5 mM KCl +1.0 mM MgSO4+150 µM  KH2PO4 + 50 µM  Na2HPO4 +1.0 mM CaCl2 + 0.7 mM NaHCO3 
Fetal Bovine Serum(FBS) Life 10099-133
formamide Diamond A100314
glycerol  Sigma V900860
heparin sodium Sigma H3149
hybridization buffer(HB) 50% formamide+ 5×SSC+9 mM sodium citrate+50 μg/ml heparin sodium+ 500 μg/ml tRNA+ 0.1% Tween20
KCl Sigma P5405
KH2PO4 Sigma P5655
low melting agarose Sigma A9414
methanol GHTECH 1.17112.023
methylene blue  Sigma M9140
MgSO4 Sigma M2643
Na2HPO4 Sigma S5136
NaCl Sigma S5886
NaHCO3  Sigma S5761
paraformaldehyde(PFA) Sigma 158127 Suspend 16 g of PFA in 400 ml of 1x PBS, heat at 60 °C  to dissolve about 30 min. This solution can be prepared in advance and stored at -4 °C. Caution. Manipulate with mask.
10×PBS 14.2 g Na2HPO4+80 g NaCl+2 g KCl+ 2.4 g KH2PO4 in 1L ddH2O
phenylthiourea(PTU) Sigma P7629
1×Plus Amplification Diluent perkinelmer NEL745001KT
Proteinase K  Fermentas E00492
20×Saline sodium citrate(SSC) 175.3 g NaCl+ 88.2 g sodium citrate in 1 L ddH2O, PH 7.0
sodium citrate Sigma A5040
tricaine Sigma E10521
tRNA  Sigma R6625
Tween20 Sigma P2287
Plasmid
pBLK-fabp10a-il34-sv40 For Tg (fab10a:il34) transgenic line generation
pBSK-il34 For il34 probe preparation
Fish
Tg (mpeg1: GFP) Label macrophages with GFP
Tg (fabp10a: DsRed) Label liver cells with DsRed
Tg (fab10a:il34) Over-expression IL-34 in liver cells

References

  1. Howe, K., et al. The zebrafish reference genome sequence and its relationship to the human genome. Nature. 496 (7446), 498-503 (2013).
  2. Wang, Y., et al. IL-34 is a tissue-restricted ligand of CSF1R required for the development of Langerhans cells and microglia. Nature Immunology. 13 (8), 753-760 (2012).
  3. Lin, H., et al. Discovery of a cytokine and its receptor by functional screening of the extracellular proteome. Science. 320 (5877), 807-811 (2008).
  4. Wei, S., et al. Functional overlap but differential expression of CSF-1 and IL-34 in their CSF-1 receptor-mediated regulation of myeloid cells. Journal of leukocyte biology. 88 (3), 495-505 (2010).
  5. Etienne, D., Foucher, S. B. L. P., Norbert Ifrah, P. G. Y. D. IL-34 Induces the Differentiation of Human Monocytes into Immunosuppressive Macrophages. Antagonistic Effects of GM-CSF and IFNc. PLoS One. 8 (2), e56045 (2013).
  6. Segaliny, A. I., et al. Syndecan-1 regulates the biological activities of interleukin-34. Biochimica et Biophysica Acta. 1853 (5), 1010-1021 (2015).
  7. Zhou, S. L., et al. miR-28-5p-IL-34-macrophage feedback loop modulates hepatocellular carcinoma metastasis. Hepatology. 63 (5), 1560-1575 (2016).
  8. Gordon, J. I., et al. Tissue specific expression and developmental regulation of two genes coding for rat fatty acid binding proteins. Journal of Biological Chemistry. 260 (4), 1995-1998 (1985).
  9. Westerfield, M. . The Zebrafish Book: A Guide for the Laboratory Use of Zebrafish (Danio rerio). , (2000).
  10. Nüsslein-Volhard, C., Dahm, R. . Zebrafish: a practical approach. , (2002).
  11. Jiang, Y., Chen, J., Yen, K., Xu, J. Ectopically Expressed IL-34 Can Efficiently Induce Macrophage Migration to the Liver in Zebrafish. Zebrafish. 16 (2), 165-170 (2019).
check_url/kr/60161?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Jiang, Y., Chen, J., Xu, J. An Ectopic Chemokine Expression Model for Testing Macrophage Recruitment In Vivo. J. Vis. Exp. (151), e60161, doi:10.3791/60161 (2019).

View Video