Summary

En svin hornhinnen endothelial organ kultur modell ved hjelp av Split hornhinne knapper

Published: October 06, 2019
doi:

Summary

Her presenteres en steg-for-trinn-protokoll for utarbeidelse og dyrking av svin delt hornhinne knapper. Ettersom denne organo-typisk dyrket orgel kultur modellen viser cellen dødstallene innen 15 dager, kan sammenlignes med menneskelig donor hornhinner, representerer den første modellen gir langsiktig dyrking av ikke-menneskelige hornhinner uten å legge giftig dextran.

Abstract

Eksperimentell forskning på hornhinnen endothelial celler er forbundet med flere vanskeligheter. Human donor hornhinner er knappe og sjelden tilgjengelig for eksperimentelle undersøkelser som de er normalt nødvendig for transplantasjon. Endothelial cellekulturer ofte ikke oversette godt til in vivo situasjoner. På grunn av biostructural karakteristikker av ikke-menneskelige hornhinner, stromal hevelse under dyrking induserer betydelig hornhinne endothelial celle tap, noe som gjør det vanskelig å utføre dyrking i en lengre periode. Deswelling midler som dextran brukes til å motvirke dette svaret. Men de også forårsake betydelig endothelial celle tap. Derfor ble en ex vivo organ kultur modell som ikke krevde deswelling agenter etablert. Pig øyne fra en lokal slakteri ble brukt til å forberede delt hornhinnen knapper. Etter delvis hornhinne inngrep, de ytre lag av hornhinnen (epitel, Bowman lag, deler av stroma) ble fjernet. Dette reduserer hornhinnen endothelial celle tap indusert av massiv stromal hevelse og Descemefs ‘ s membran folding gjennom lengre dyrking perioder og forbedrer generell bevaring av endothelial celle laget. Påfølgende komplett hornhinne inngrep ble etterfulgt av fjerning av splitt hornhinnen knappen fra de resterende øye pære og dyrking. Endothelial celle tetthet ble vurdert ved oppfølgings tider på opptil 15 dager etter tilberedning (dvs. dager 1, 8, 15) ved hjelp av lys mikroskopi. Preparatet teknikken brukes gir en bedre bevaring av endothelial celle laget aktiveres av mindre stromal vev hevelse, som resulterer i langsom og lineær nedgang priser i delt hornhinnen knapper sammenlignes med menneskelig donor hornhinner. Som denne standardiserte organo-vanligvis dyrket forsknings modell for første gang gir en stabil dyrking i minst to uker, er det et verdifullt alternativ til menneskelig donor hornhinner for fremtidige undersøkelser av ulike eksterne faktorer med hensyn til deres effekter på hornhinnen endotelet.

Introduction

Hornhinnen transplantasjon prosedyrer er blant de hyppigst utførte Sygehus over hele verden1. Ettersom det er en alvorlig mangel på menneskelig donor hornhinner, eksperimentell forskning adressering hornhinnen endothelial celler i menneskelig hornhinner er vanskelig å utføre1. Men innføringen av vannings løsninger og andre stoffer som brukes i øyet, viskoelastiske enheter, samt Kirurgiske instrumenter og teknikker (f. eks, phacoemulsification instrumenter og teknikker, ultralyd energi) krever gyldige og omfattende undersøkelser om deres virkninger på hornhinnen endotelet før klinisk bruk.

Få alternativer til menneskelige donor hornhinner eksisterer for forskning. Animal forskning modeller er svært verdifull, men på samme tid svært ressurskrevende og stadig spørsmålstegn etisk. En stor ulempe for in vitro cellekulturer er deres begrenset oversettelse til det menneskelige øyet. Resultater innhentet fra cellekulturer kan være urimelig å i vivo forhold, fordi cellene kan gjennomgå endothelial mesenchymal overgang (EMT), noe som resulterer i Fibroblast-lignende morfologi forårsaket av tap av celle polaritet og endringer i celle form og gen uttrykket2.

Mens tidligere ex vivo-modeller rapporterte dyrking perioder på opp til bare 120 h, en roman forberedelse teknikk for å etablere en svin hornhinnen endothelial orgel kultur modell av dyrking fersk gris hornhinner i minst 15 dager ble nylig innført3 ,4,5,6. Hvis hornhinnen epitel og deler av stroma er fjernet (ca 300 μm totalt) fra hornhinnen før dyrking, hevelse i stroma er redusert i delt hornhinnen knapper resulterer i mindre endothelial celle tap og en godt vedlikeholdt endothelial celle lag etter opp til 15 dager, mens ikke-delt hornhinnen knapper viser signifikant endothelial celle tap på grunn av ujevn stromal hevelse og dannelse av Descemefs ‘ s folder. Øye bankene bruker vanligvis osmotisk deswelling midler som dextran for å redusere hevelse av hornhinner før transplantasjon. Imidlertid ble disse agentene vist å indusere økt endothelial celle tap7,8,9.

Denne artikkelen tar sikte på å visualisere denne standardiserte ex vivo forskning modell i en detaljert trinn-for-trinn-protokollen for å muliggjøre fremtidige etterforskere til å utføre forskning på hornhinnen endotelet ved hjelp av delt hornhinnen knapper. Denne modellen representerer en grei metode for å teste stoffer og teknikker som brukes i øyet, for eksempel viskoelastiske enheter, vannings løsninger og ultralydsenergi, eller andre prosedyrer der hornhinnen endotelet er av interesse.

Protocol

Denne protokollen følger de etiske retningslinjene for institusjonen vår. I samsvar med vedtektene for vår institusjon etiske vurdering komiteen ingen etisk godkjenning måtte innhentes før eksperimentene, som alle svin hornhinner ble innhentet fra den lokale slakteri. 1. orgel kultur Forbered gris øyne. Fra den lokale slakteri, få gris øyne som ble fjernet kort tid postmortem men før termisk behandling. Transporter øynene til laboratoriet og behandle dem i løpet av…

Representative Results

Den presenterte disseksjon teknikken innebærer delvis fjerning av stromal vev, noe som resulterer i en tynnere hornhinne prøve og dermed mindre stromal hevelse (figur 1 og figur 2). Mindre stromal hevelse induserer mindre skjær og klype krefter som har en negativ innvirkning på hornhinnen endotelet, og dermed forårsaker lavere endothelial celle tap priser6. Split hornhinnen knapper viser en betydelig …

Discussion

Denne protokollen gir en metode for utarbeidelse av svin delt hornhinnen knapper, som representerer en standardisert og rimelig ex vivo hornhinnen endothelial organ kultur modell for forskningsformål6. Svin Split hornhinne knappene viste en reduksjon av endothelial celle tetthet sammenlignes med endothelial celle tap observert i Human donor hornhinner dyrket i øye bankene over en to-ukers periode6,10,11

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Etableringen av den presenterte forskningen modellen ble støttet av KMU-innovativ (FKZ: 13GW0037F) av Federal Ministry of Education and Research Tyskland.

Materials

Subject
Pig eyes local abbatoir
Substances
Alizarin red S Sigma-Aldrich, USA
Culture Medium 1, #F9016 Biochrom GmbH, Germany
Dulbecco's PBS (1x) Gibco, USA
Fetal calf serum Biochrom GmbH, Germany
Hydrochloric acid (HCl) solution own production
Hypotonic balanced salt solution own production per 1 L of H2O: NaCl 4.9 g; KCl 0.75 g; CaCl x H2O 0.49 g; MgCl2 x H2O 0.3 g; Sodium Acetate x 3 H2O 3.9 g; Sodium Citrate x 2 H2O 1.7 g
Povidon iodine 7.5%, Braunol B. Braun Melsungen AG, Germany
Sodium chloride (NaCl) 0.9% B. Braun Melsungen AG, Germany
Sodium hydroxide (NaOH) solution own production
Trypan blue 0.4% Sigma-Aldrich, USA
Materials & Instruments
Accu-jet pro Brand GmbH, Germany
Beaker Glass 50 mL Schott AG, Germany
Blunt cannula incl. Filter (5 µm) 18G Becton Dickinson, USA
Cell culture plate (12 well) Corning Inc., USA
Colibri forceps Geuder AG, Germany
Corneal scissors Geuder AG, Germany
Eppendorf pipette Eppendorf AG, Germany
Eye Bulb Holder L. Klein, Germany
Eye scissors Geuder AG, Germany
Folded Filter ø 185 mm Whatman, USA
Hockey knife Geuder AG, Germany
Laboratory Glass Bottle with cap 100 mL Schott AG, Germany
Magnetic stir bar Carl Roth GmbH & Co. KG, Germany
MillexGV Filter (5 µm) Merck Millopore Ltd., USA
Needler holder Geuder AG, Germany
Petri dishes VWR International, USA
Pipette tips Sarstedt AG & Co., Germany
Scalpel (single use), triangular blade Aesculap AG & Co. KG, Germany
Serological pipette 10 mL Sarstedt AG & Co., Germany
Serological pipette 5 mL Sarstedt AG & Co., Germany
Sterile cups Greiner Bio-One, Österreich
Sterile gloves Paul Hartmann AG, Germany
Sterile surgical drape Paul Hartmann AG, Germany
Stitch scissors Geuder AG, Germany
Suture Ethilon 10-0 Polyamid 6 Ethicon Inc., USA
Syringe (5 mL) Becton Dickinson, USA
trephine ø 7.5 mm own production
Tying forceps Geuder AG, Germany
Weighing paper neoLab Migge GmbH, Germany
Equipment & Software
Binocular surgical microscope Carl Zeiss AG, Germany
Camera mounted on microscope Olympus, Japan
CellSens Entry (software) Olympus, Japan
Cold-light source Schott AG, Germany
Incubator Heraeus GmbH, Germany
Inverted phase contrast microscope Olympus GmbH, Germany
Magnetic stirrer with heating function IKA-Werke GmbH & Co. KG, Germany
pH-meter pHenomenal VWR International, USA
Photoshop CS2 Adobe Systems, USA
Precision scale Ohaus Europe GmbH, Switzerland

References

  1. Gain, P., et al. Global Survey of Corneal Transplantation and Eye Banking. JAMA Ophthalmology. 134 (2), 167-173 (2016).
  2. Roy, O., et al. Understanding the process of corneal endothelial morphological change in vitro. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 56 (2), 1228-1237 (2015).
  3. Meltendorf, C., Ohrloff, C., Rieck, P., Schroeter, J. Endothelial cell density in porcine corneas after exposure to hypotonic solutions. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 245 (1), 143-147 (2007).
  4. Schroeter, J., Meltendorf, C., Ohrloff, C., Rieck, P. Influence of temporary hypothermia on corneal endothelial cell density during organ culture preservation. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 246 (3), 369-372 (2008).
  5. Schroeter, J., Ruggeri, A., Thieme, H. Impact of temporary hyperthermia on corneal endothelial cell survival during organ culture preservation. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 253 (5), 753-758 (2015).
  6. Kunzmann, B. C., et al. Establishment Of A Porcine Corneal Endothelial Organ Culture Model For Research Purposes. Cell and Tissue Banking. 19 (3), 269-276 (2018).
  7. Redbrake, C., et al. A histochemical study of the distribution of dextran 500 in human corneas during organ culture. Current Eye Research. 16 (5), 405-411 (1997).
  8. Zhao, M., et al. Poloxamines for Deswelling of Organ-Cultured Corneas. Ophthalmic Research. 48 (2), 124-133 (2012).
  9. Filev, F., et al. Semi-quantitative assessments of dextran toxicity on corneal endothelium: conceptual design of a predictive algorithm. Cell and Tissue Banking. 18 (1), 91-98 (2017).
  10. Pels, E., Schuchard, Y. Organ-culture preservation of human corneas. Documenta Ophthalmologica. 56 (1-2), 147-153 (1983).
  11. Borderie, V. M., Kantelip, B. M., Delbosc, B. Y., Oppermann, M. T., Laroche, L. Morphology, Histology and Ultrastructure of Human C31 Organ-Cultured Corneas. Cornea. 14 (3), 300-310 (1995).
  12. Linke, S. J., et al. Thirty years of cornea cultivation: long-term experience in a single eye bank. Acta Opthalmologica. 91 (6), 571-578 (2013).
  13. Schroeter, J., et al. Arbeitsrichtlinien – Gute Fachliche Praxis für Hornhautbanken [Procedural guidelines. Good tissue practice for cornea banks]. Ophthalmologe. 106 (3), 265-276 (2009).
  14. Dohlman, C. H., Hedbys, B. O., Mishima, S. The swelling pressure of the corneal stroma. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 1, 158-162 (1962).
  15. Xuan, M., et al. Proteins of the corneal stroma: importance in visual function. Cell and Tissue Research. 364 (1), 9-16 (2016).
  16. Sperling, S. Human Corneal Endothelium in Organ Culture – The Influence of Temperature and Medium of Incubation. Acta Opthalmologica. 57 (2), 269-276 (1979).
  17. Schroeter, J. Endothelial Evaluation in the Cornea Bank. Developments in Ophthalmology. 43, 47-62 (2009).
  18. Pels, E., Schuchard, Y. The Effects of High Molecular Weight dextran on the Presevation of Human Corneas. Cornea. 3 (3), 219-227 (1985).
  19. van der Want, H. J. L., Pels, E., Schuchard, Y., Olesen, B., Sperling, S. Electron Microscopy of Cultured Human Corneas Osmotic Hydration and the Use of dextran Fraction (dextran T 500) in Organ Culture. Archives of Ophthalmology. 101 (12), 1920-1926 (1983).
  20. Thuret, G., Manissolle, C., Campos-Guyotat, L., Guyotat, D., Gain, P. Animal compound-free medium and poloxamer for human corneal organ culture and Deswelling. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 46 (3), 816-822 (2005).
  21. Wenzel, D. A., Kunzmann, B. C., Spitzer, M. S., Schultheiss, M. Staining of endothelial cells does not change the result of cell density. Cell and Tissue Banking. 20 (2), 327-328 (2019).
  22. Wenzel, D. A., Kunzmann, B. C., Hellwinkel, O., Druchkiv, V., Spitzer, M. S., Schultheiss, M. Effects of perfluorobutylpentane (F4H5) on corneal endothelial cells. Current Eye Research. , (2019).
  23. Olsson, I. A. S., Franco, N. H., Weary, D. M., Sandøe, P. The 3Rs principle – mind the ethical gap!. ALTEX Proceedings, 1/12, Proceedings of WC8. , 333-336 (2012).
  24. Sanchez, I., Martin, R., Ussa, F., Fernandez-Bueno, I. The parameters of the porcine eyeball. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 249 (4), 475-482 (2011).
  25. Kim, M. K., Hara, H. Current status of corneal xenotransplantation. International Journal of Surgery. 23 (Pt B), 255-260 (2015).
  26. Fujita, M., et al. Comparison of Proliferative Capacity of Genetically-Engineered Pig and Human. Ophthalmic Research. 49 (3), 127-138 (2013).
check_url/kr/60171?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Wenzel, D. A., Kunzmann, B. C., Steinhorst, N. A., Spitzer, M. S., Schultheiss, M. A Porcine Corneal Endothelial Organ Culture Model Using Split Corneal Buttons. J. Vis. Exp. (152), e60171, doi:10.3791/60171 (2019).

View Video