Summary

الكشف عن سرطان المبيض باستخدام الضوئية تدفق الصوتية الخلوية

Published: January 17, 2020
doi:

Summary

يتم تقديم بروتوكول للكشف عن الخلايا السرطانية المبيضة المتداولة باستخدام نظام تدفق الصوتية التصويرية حسب العرف والمستهدفة النانويه كبريتيد النحاس المغطي بحمض الفوليك.

Abstract

تشير العديد من الدراسات إلى ان تعداد الخلايا السرطانية المتداولة (CTCs) قد يظهر الوعد كاداه نذيره لسرطان المبيض. وتشمل الاستراتيجيات الحالية للكشف عن ctcs التدفق الخلوي ، والاجهزه ميكروفلويديك ، وفي الوقت الحقيقي تفاعل البلمره سلسله (RT-PCR). علي الرغم من التطورات الاخيره ، وأساليب للكشف عن سرطان المبيض المبكر الانبثاث لا تزال تفتقر إلى الحساسية والخصوصية المطلوبة للترجمة السريرية. هنا ، يتم تقديم طريقه جديده للكشف عن الخلايا السرطانية المنتشرة في المبيض عن طريق التدفق الصوتي الضوئي للخلايا (الاتحاد الاسيوي لكره القدم) باستخدام نظام طباعه ثلاثي الابعاد (3D) مخصص ، بما في ذلك غرفه التدفق ومضخة المحاقن. تستخدم هذه الطريقة جزيئات كبريتيد النحاس المغطية بحمض الفوليك لاستهداف خلايا سرطان المبيض من قبل الاتحاد الاسيوي للسرطان. يوضح هذا العمل تقارب عوامل التباين هذه لخلايا سرطان المبيض. تظهر النتائج توصيف NP ، والكشف عن الاتحاد الاسيوي لكره اليد ، وامتصاص NP عن طريق المجهر الفلوري ، مما يدل علي امكانيه هذا النظام الجديد للكشف عن CTCs المبيض في تركيزات ذات الصلة من الناحية الفسيولوجية.

Introduction

سرطان المبيض هو واحد من الأورام الخبيثة الامراض النسائية الأكثر فتكا ، وأسفرت عن وفيات يقدر 184,800 في جميع انحاء العالم في 20181. وقد أظهرت دراسات متعددة العلاقة بين تطور سرطان المبيض (اي, الانبثاث) ووجود ctcs2,3,4. الطريقة الأكثر شيوعا للكشف عن وعزل CTCs يستخدم نظام Cellsearch ، الذي يستهدف مستقبلات EpCam5. Epcam التعبير ، ومع ذلك ، هو دوونريجولاتيد في ظهاري للانتقال المستوي ، الذي كان متورطا في السرطان الانبثاث6. وعلي الرغم من التقدم المحرز ، لا تزال التكنولوجيات السريرية الحالية تعاني من انخفاض الدقة وارتفاع التكلفة والتعقيد. ونظرا لهذه العيوب ، أصبحت التكنولوجيات الجديدة لاكتشاف وتعداد CTCs المبيض مجالا هاما للبحوث.

في الاونه الاخيره ، برزت الاتحاد كطريقه فعاله للكشف عن الخلايا السرطانية غير الغازية ، وتحليل المواد النانويه ، وتحديد البكتيريا7،8،9. يختلف الاتحاد الاسيوي لكره اليد عن التدفق الخلوي التقليدي عن طريق الكشف عن التحاليل في التدفق باستخدام الصوتيات الضوئية. يتم إنشاء تاثير الصوتية الضوئية عندما يتم امتصاص ضوء الليزر من قبل المواد التي تسبب التمدد الحراري ، وإنتاج موجه الصوتية التي يمكن الكشف عنها بواسطة محول الموجات فوق الصوتية10،11. وتشمل مزايا الاتحاد علي أساليب التدفق الخلوي التقليدية البساطة ، وسهوله الترجمة إلى الإعدادات السريرية ، والكشف عن ctcs في أعماق لم يسبق لها مثيل في عينات المريض12،13. وقد استخدمت الدراسات الحديثة أنظمه الاتحاد للكشف عن الخلايا باستخدام التباين الداخلي والخارجي14،15. بالقرب من الاشعه تحت الحمراء (نير) وقد استخدمت عوامل التباين امتصاص الضوء مثل الصبغة الخضراء ، والمعادن NPs (مثل الذهب والجمارك) لوضع العلامات الانتقائية من الخلايا والانسجه في تركيبه مع التصوير الصوتي التصويري16،17،18. نظرا لتحسن عمق تغلغل ضوء نير داخل الانسجه البيولوجية ، يمكن اجراء الكشف الصوتي الضوئي لامتصاص في أعماق أكبر للتطبيقات السريرية. ونظرا لإمكاناتها الكبيرة للاستخدام في العيادة ، فان الجمع بين عوامل التباين المستهدفة مع الاتحاد الاسيوي لكره القد ولد اهتماما كبيرا بالكشف عن هذه التحويلات.

ويوفر الاتحاد بالاشتراك مع عوامل التباين المستهدفة نهجا محسنا للتحليل العالي الإنتاجي لعينات المريض بدقه معززه والكشف المستهدف لctcs. وتتمثل أحدي استراتيجيات الكشف الرئيسية لهذه التحويلات في الاستهداف المحدد للبروتينات الغشائية الموجودة في خليه الفائدة. واحده من السمات البارزة لctcs المبيض هو التعبير المفرط من مستقبلات حمض الفوليك الموجودة علي الغشاء الخارجي لها19. استهداف مستقبلات حمض الفوليك هو استراتيجية مثاليه لتحديد CTCs المبيض في الدم لان الخلايا الذاتية, التي لديها اعلي تعبير عن مستقبلات حمض الفوليك, عموما الاناره ولها التعرض محدوده لمجري الدم20. وقد تم مؤخرا التعرف علي كبريتيد النحاس NPs (CuS NPs) لقدرتها علي استهداف مستقبلات حمض الفوليك التي أعرب عنها في الخلايا السرطانية21. بالاضافه إلى توافقها الحيوي ، وسهوله التوليف ، والامتصاص العميق في تقرير الجرد العام ، فان عوامل التباين NP هذه تجعل استراتيجية الاستهداف المثالية للكشف عن CTCs المبيض باستخدام الاتحاد الاسيوي.

يصف هذا العمل اعداد الاتحاد العام لكره القد واستخدامها للكشف عن خلايا سرطان المبيض في نظام تدفق الصوتية الضوئية. يتم تعديل المصادر الخاصة بحمض الفوليك لاستهداف CTCs المبيض علي وجه التحديد وتنبعث منها اشاره صوتيه ضوئيه عند تحفيزها باستخدام ليزر 1,053 nm. تشير النتائج إلى الاكتشاف الناجح لخلايا سرطان المبيض التي تم احتضانها باستخدام عوامل التباين الصوتية الضوئية داخل نظام الاتحاد الاسيوي للسرطان. تظهر هذه النتائج الكشف عن خلايا سرطان المبيض وصولا إلى تركيزات 1 خليه/μL ، والمجهر الفلوري يؤكد الامتصاص الناجح لهذه الجزيئات من قبل الخلايا السرطانية المبيضية-3 المبيض22. يوفر هذا العمل وصفا مفصلا لتوليف الاتحاد النقدي الخاص-CuS إلى NPs ، واعداد عينات لفحص المجهر الفلوري ، وبناء نظام التدفق الصوتي الضوئي ، والكشف الصوتي الضوئي لخلايا سرطان المبيض. تظهر الطريقة المعروضة التعرف الناجح علي CTCs المبيض في التدفق باستخدام الاتحاد النقدي الخاص-CuS إلى NPs. وسوف تركز الاعمال المستقبلية علي التطبيق السريري لهذه التكنولوجيا نحو الكشف المبكر عن سرطان المبيض الانبثاث.

Protocol

1. جسيمات متناهي التوليف والوظيفية ملاحظه: يتم تحقيق التوليف من الاتحاد الكره التي-CuS NPs باستخدام طريقه واحده التوليف وعاء مقتبس من بروتوكول21نشرت سابقا.تحذير: يجب ان يحدث كل التوليف في غطاء الدخان الكيميائي التهوية. قبل التوليف ، وتصفيه ما يقرب من 300 مل من…

Representative Results

الشكل 1a يظهر صوره نموذجيه من الجسيمات النانويه توليفها. متوسط حجم جسيمات متناهي نموذجيه تقريبا 8.6 نانومتر ± 2.5 nm. تم اجراء قياس جسيمات متناهي في ImageJ. وطبقت وظائف العتبة ومستجمعات المياه للفصل بين الجزيئات للقياس. وتم قياس الأقطار الافقيه والراسية…

Discussion

هذا البروتوكول هو وسيله واضحة للكشف عن CTCs المبيض باستخدام الاتحاد الاسيوي لكره القد وعامل التباين المستهدفة CuS. وقد تم استكشاف العديد من الطرق للكشف عن ctcs المبيض ، بما في ذلك الاجهزه ميكروفلويديك ، RT-PCR ، والفلوري تدفق الخلوي23،24،25. هذه الم…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ويود المؤلفون ان يعترفوا بمادلين هاويل لمساعدتها في التوليف ، ماثيو الصدر لمساعدته في تصميم نظام تدفق ، وإيثان Marschall للحصول علي المساعدة مع سوليدووركس.

Materials

0.025% Trypsin With EDTA Corning 25-053-Cl
0.2 µm 1000 mL Vacuum Filtration Unit VWR 10040-440 For filtering larger volumes of DI water.
0.2 µm sterile syringe filter VWR 28145-477
3D Printed Tank Custom-made
Acquisition Card National Instruments PXIe-5170R 250 MS/s, 8-Channel, 14-bit
Alconox Sigma-Aldrich 242985-1.8KG Detergent used for cleaning glassware.
Amicon Ultra-15 Centrifugal Filters Millipore UFC903024
Amicon Ultra-4 Centrifugal Filters Millipore UFC803024
Bright-Line Hematocytometer Hausser Scientific 1492
Copper(II) Chloride ACROS ORGANICS 206532500
Coupling Objective Thorlabs LMH-10x-532 To couple pulsed light to optical fiber.
Coupling Stage Newport F-91-C1-T Stage for coupling pulsed light to objective. Holds FP-1A and LMH-10x-532
CPX Series Digital Ultrasonic Cleaning Bath Fisherbrand Model CPX3800
Data Acquisition software National Instruments NI LabVIEW 2017 (32-bit) LabVIEW used to synchronize laser pulses with data acquisition.
Data Processing Software Mathworks Matlab R2016a Reconstructions and graphs produced using Matlab software.
FBS Sigma-Aldrich F2442-500ML
Fiber Chuck Newport FPH-DJ Used to hold the bare fiber.
Fiber Coupler Newport FP-1A 3-Axis stage for positioning fiber chuck and optical fiber at the focus of the objective.
Folic Acid Sigma-Aldrich F7876-10G
Formvar Coated TEM Grids Electron Microscopy Sciences FCF300-CU-SB
Masterflex Tubing Cole Parmer EW-96420-14
McCoy's 5A Medium ATCC 30-2007
Norm-Ject 10 mL Syringes HENKE SASS WOLF 4100-X00V0
Optical Fiber Thorlabs FG550LEC Used to expose sample to pulsed light.
PBS Alfa Aesar J62036
Penicillin Streptomycin GIBCO 15140-122
Pulsed Laser RPMC Lasers Inc Quantus-Q1D-1053 Pulsed laser source with specifications 1053 nm, 8 ns pulse, 10 Hz maximum.
Pulser/Receiver Olympus 5077PR Receives, filters, and amplifies photoacoustic signals. Operated with 59 dB Gain.
Quartz Capillary Tube Sutter Instrument QF150-75-10
RPMI Midum 1640 (1X) Folic Acid Free Gibco 27016-021
Silicone Momentive Performance Materials, Inc. GE284
SKOV-3 Cells ATCC HTB-77
Sodium Bicarbonate Sigma-Aldrich S5761
Sodium Carbonate Sigma-Aldrich S7795-500G
Sodium Hydroxide Beads BDH BDH9292-500G
Sodium Sulfide Nonahydrate Sigma-Aldrich 431648-50G
Syringe Pumps New Era Pump Systems Inc DUAL-1000
Texas Red-X-Succinimydl ester Invitrogen 1949071
Transducer Olynmpus V214-BB-RM Ultrasound detector with central frequency of 50 MHz and -6 dB fractional bandwidth of 82%.
Trypan Blue Solution .4% Amresco K940-100ML
Tween 20 Sigma-Aldrich P7949-100ML
Ultrasound Gel Parker Laboratories Inc. Aquasonic 100 Ultrasound gel for transducer coupling

References

  1. Ferlay, J., et al. Estimating the global cancer incidence and mortality in 2018: GLOBOCAN sources and methods. International Journal of Cancer. 144 (8), 1941-1953 (2019).
  2. Zhang, X., et al. Analysis of circulating tumor cells in ovarian cancer and their clinical value as a biomarker. Cellular Physiology and Biochemistry. 48 (5), 1983-1994 (2018).
  3. Zhou, Y., et al. Prognostic value of circulating tumor cells in ovarian cancer: a meta-analysis. PLoS One. 10 (6), e0130873 (2015).
  4. Guo, Y. X., et al. Diagnostic value of HE4+ circulating tumor cells in patients with suspicious ovarian cancer. Oncotarget. 9 (7), 7522-7533 (2018).
  5. Lianidou, E., Hoon, D. 9 – Circulating Tumor Cells and Circulating Tumor DNA. Principles and Applications of Molecular Diagnostics. , 235-281 (2018).
  6. Gorges, T. M., et al. Circulating tumour cells escape from EpCAM-based detection due to epithelial-to-mesenchymal transition. BMC cancer. 12 (1), 178 (2012).
  7. Galanzha, E., Zharov, V. Circulating tumor cell detection and capture by photoacoustic flow cytometry in vivo and ex vivo. Cancers. 5 (4), 1691-1738 (2013).
  8. Nedosekin, D. A., et al. In vivo noninvasive analysis of graphene nanomaterial pharmacokinetics using photoacoustic flow cytometry. Journal of Applied Toxicology. 37 (11), 1297-1304 (2017).
  9. Zharov, V. P., Galanzha, E. I., Kim, J., Khlebtsov, N. G., Tuchin, V. V. Photoacoustic flow cytometry: principle and application for real-time detection of circulating single nanoparticles, pathogens, and contrast dyes in vivo. Journal of Biomedical Optic. 12 (5), 1-14 (2007).
  10. Miranda, C., Sampath Kumar, S., Muthuswamy, J., Smith, B. S. Photoacoustic micropipette. Applied Physics Letters. 113 (26), 264103 (2018).
  11. Miranda, C., Barkley, J., Smith, B. S. Intrauterine photoacoustic and ultrasound imaging probe. Journal of Biomedical Optics. 23 (4), 1-9 (2018).
  12. Galanzha, E. I., Zharov, V. P. Photoacoustic flow cytometry. Methods. 57 (3), 280-296 (2012).
  13. O’Brien, C. M., et al. Capture of circulating tumor cells using photoacoustic flowmetry and two phase flow. Journal of Biomedical Optics. 17 (6), 061221 (2012).
  14. Cai, C., et al. Photoacoustic flow cytometry for single sickle cell detection in vitro and in vivo. Analytical Cellular Pathology. 2016, 11 (2016).
  15. Galanzha, E. I., et al. In vivo magnetic enrichment, photoacoustic diagnosis, and photothermal purging of infected blood using multifunctional gold and magnetic nanoparticles. PLoS One. 7 (9), e45557 (2012).
  16. Hannah, A., Luke, G., Wilson, K., Homan, K., Emelianov, S. Indocyanine green-loaded photoacoustic nanodroplets: dual contrast nanoconstructs for enhanced photoacoustic and ultrasound imaging. ACS Nano. 8 (1), 250-259 (2013).
  17. Kim, S. E., et al. Near-infrared plasmonic assemblies of gold nanoparticles with multimodal function for targeted cancer theragnosis. Scientific Reports. 7 (1), 17327 (2017).
  18. Ku, G., et al. Copper sulfide nanoparticles as a new class of photoacoustic contrast agent for deep tissue imaging at 1064 nm. ACS Nano. 6 (8), 7489-7496 (2012).
  19. Parker, N., et al. Folate receptor expression in carcinomas and normal tissues determined by a quantitative radioligand binding assay. Analytical Biochemistry. 338 (2), 284-293 (2005).
  20. Cheung, A., et al. Targeting folate receptor alpha for cancer treatment. Oncotarget. 7 (32), 52553 (2016).
  21. Zhou, M., Song, S., Zhao, J., Tian, M., Li, C. Theranostic CuS nanoparticles targeting folate receptors for PET image-guided photothermal therapy. Journal of Materials Chemistry B. 3 (46), 8939-8948 (2015).
  22. Lusk, J. F., et al. Photoacoustic Flow System for the Detection of Ovarian Circulating Tumor Cells Utilizing Copper Sulfide Nanoparticles. ACS Biomaterials Science & Engineering. 5 (3), 1553-1560 (2019).
  23. Lee, M., et al. Predictive value of circulating tumor cells (CTCs) captured by microfluidic device in patients with epithelial ovarian cancer. Gynecologic Oncology. 145 (2), 361-365 (2017).
  24. Blassl, C., et al. Gene expression profiling of single circulating tumor cells in ovarian cancer-Establishment of a multi-marker gene panel. Molecular Oncology. 10 (7), 1030-1042 (2016).
  25. Lu, Y., et al. Isolation and characterization of living circulating tumor cells in patients by immunomagnetic negative enrichment coupled with flow cytometry. Cancer. 121 (17), 3036-3045 (2015).
  26. Bhattacharyya, K., Goldschmidt, B. S., Viator, J. A. Detection and capture of breast cancer cells with photoacoustic flow cytometry. Journal of Biomedical Optics. 21 (8), 087007 (2016).
  27. Zharov, V. P., Galanzha, E. I., Shashkov, E. V., Khlebtsov, N. G., Tuchin, V. V. In vivo photoacoustic flow cytometry for monitoring of circulating single cancer cells and contrast agents. Optics Letters. 31 (24), 3623-3625 (2006).
  28. Galanzha, E. I., et al. In vivo liquid biopsy using Cytophone platform for photoacoustic detection of circulating tumor cells in patients with melanoma. Science Translational Medicine. 11 (496), eaat5857 (2019).
  29. Cai, C., et al. In vivo photoacoustic flow cytometry for early malaria diagnosis. Cytometry Part A. 89 (6), 531-542 (2016).
  30. Galanzha, E. I., et al. In vivo magnetic enrichment and multiplex photoacoustic detection of circulating tumour cells. Nature Nanotechnology. 4 (12), 855 (2009).
check_url/kr/60279?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lusk, J. F., Miranda, C., Smith, B. S. Ovarian Cancer Detection Using Photoacoustic Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (155), e60279, doi:10.3791/60279 (2020).

View Video