Summary

عزل ميكروليا الخاصة بالمنطقة من واحد الكبار الفار الدماغ نصف الكره لعمق خليه واحده التسلسل RNA

Published: December 03, 2019
doi:

Summary

نحن نقدم بروتوكولا لعزل الخلايا الصغيرة من المناطق تشريح مختلفه من نصف الكره الدماغ الفار الكبار ، تليها اعداد المكتبة شبه المؤتمتة لعمق خليه واحده الحمض الريبي النيبالي تسلسل كامل طول الكتابات النصية. ستساعد هذه الطريقة علي توضيح التغاير الوظيفي للدبقيه الصغيرة في الصحة والمرض.

Abstract

كما الضامة المقيمين في الجهاز العصبي المركزي ، الميكروبات الصغيرة بنشاط السيطرة علي نمو الدماغ والتوازن ، واختلالاتها قد تدفع الامراض البشرية. وقد أحرز تقدم كبير للكشف عن التواقيع الجزيئية من الخلايا الصغيرة الساكنة ، فضلا عن التغييرات في التعبير الجيني لديها استجابه للمؤثرات البيئية. مع ظهور ونضوج المنهجيات الجينية أحاديه الخلية ، فانه من المسلم به بشكل متزايد ان غير متجانس الصغيرة قد تكمن وراء الأدوار المتنوعة التي تلعبها في الظروف التنموية والمرضية المختلفة. ويمكن تحقيق مزيد من التشريح لهذا التغاير من خلال العزل الفعال للخلايا الصغيرة من منطقه معينه من الاهتمام ، يليه التنميط الحساس لكل خليه. هنا ، ونحن نقدم بروتوكول مفصل للعزل السريع من الخلايا الصغيرة من مناطق الدماغ المختلفة في نصف الكره الدماغية الماوس الكبار واحد. ونحن أيضا شرح كيفيه استخدام هذه الخلايا الصغيرة فرزها لتسلسل المستندة إلى لوحه عميقة الحمض الريبي النيبالي. ونناقش قابليه هذه الطريقة للتكيف مع سيناريوهات أخرى ونقدم مبادئ توجيهيه لتحسين النظام لاستيعاب الدراسات الواسعة النطاق.

Introduction

الأجزاء الصغيرة التي تمثل 5% − 10% من جميع الخلايا العصبية هي الضامة المقيمة المنتشرة في جميع انحاء الجهاز العصبي المركزي (CNS)1. المحمية وراء حاجز الدم في الدماغ, الميكروبات النموذجية في الدماغ الكبار صحية تحتوي علي العديد من العمليات الدقيقة التي تمتد بسرعة والتراجع للتفاعل مع الخلايا العصبية وغيرها من الكريات الدبقيه في parenchyma. ويمكن أيضا ان تعتمد الخلايا الصغيرة المورفولوجية الشكل الأميبا المرتبطة بزيادة وظيفة البالعة خلال مراحل تنموية محدده أو عند التحديات المناعية في الإصابات والامراض1،2،3،4. كما يتم توضيح المزيد من وظائف الخلايا الصغيرة الصغرى ، ويغذي الاثاره أكثر من الدراسات علم الوراثة البشرية ، والتي أظهرت ان العديد من الجينات خطر الامراض العصبية ، مثل TREM2 ، هي في الغالب أو حصرا التي أعرب عنها ميكروليا5،6،7. نظرا لأهميتها في التنمية والأدوار المعقولة القيادة المرض, وقد تم مؤخرا بذل جهد هائل نحو فهمنا لتنظيم الجينات ميكروجليال ووظيفة في الأمل في العثور علي أهداف علاجيه جديده للامراض التنكسية العصبية1,8.

ويسمح تسلسل الحمض الريبي النيبالي (RNA-seq) بتوصيف غير متحيز للتعبير الجيني الخاص بنوع الخلية ، والذي بدوره يرشد العلماء إلى التحقيق في وظائف الجينات في الشبكات الخلوية الكثيفة7. وقد تم الحمض الريبي النيبالي-seq في الغالب علي عينات السائبة ، مما يؤدي إلى اكتشاف التوقيع الجينات ميكروجليال التماثل الذي يميزها عن الخلايا العصبية والمناعية الأخرى9. ومع ذلك ، يمكن ان يغفل هذا النهج الاختلافات الجزيئية والوظيفية بين الخلايا الصغيرة ، وخاصه تلك الموجودة بشكل عابر في التنمية ، أو المرتبطة بالشيخوخة والمرض. وفي الواقع ، فان الخلية الواحدة RNA-seq (scrna-seq) تقدم الحساسية والدقة التي أحدثت ثوره في المجال من خلال الكشف عن عدم التجانس في السابق من الميكروبات الصغيرة في مجموعه متنوعة من السياقات2،3،10. الاضافه إلى ذلك ، ونظرا لوجود خلايا مناعية مماثله أخرى في واجهه الجهاز العصبي الدوران ، يوفر scRNA-seq معلومات تساعد علي تصميم أدوات جديده لفصل وتشريح وظيفيا هذه الخلايا ذات الصلة مع القليل من المعرفة السابقة2،11.

وقد تم اختراع مجموعه متنوعة من المنصات التي تليها scRNA ، كل مناسبه لتطبيقات معينه12. وبصفه عامه ، فان الطرق القائمة علي القطرات ، مثل الجينوم الجيني 10x ، تكون اعلي في الانتاجيه مع (عشرات) آلاف الخلايا المتسلسلة في كل شوط ، وهي اقل انتقائية للمدخلات التي قد تحتوي علي مجموعات مختلطة من الخلايا التي تتطلب تصنيفا واسعا. توفر الطرق المستندة إلى اللوحة حساسية اعلي وقراءه العمق13،14، وعاده ما تستهدف الفئات السكانية المحددة من فرز الخلايا للكشف عن الاختلافات الدقيقة أو النصوص النادرة.

هنا ، ونحن نقدم تفاصيل حول كيفيه عزل الخلايا الصغيرة من مناطق مختلفه من الدماغ الماوس تشريح من نصف الكره الواحد ، والتي تستخدم لخليه واحده (أو السائبة) الحمض الريبي النيبالي-seq بعد اجراء شبه الألى لوحه القائمة علي التحضير للمكتبة. ويمكن بعد ذلك استخدام نصف الكره الآخر للتحقق من صحة الانسجه. تبسيط من الطريقة المنشورة سابقا9، ويهدف هذا البروتوكول العزلة لتعظيم العائد من كميه صغيره من مواد البداية ، وفي الوقت نفسه الحفاظ علي ملامح التعبير الجيني ميكروجليال الذاتية. نستخدم الفرز الخلوي المنشط (FACS) لإثراء الأجزاء الصغيرة (أو الخلايا المناعية الأخرى ذات الاهتمام) في لوحات 96 وتصغير احجام الكواشف لاعداد المكتبة من أجل زيادة الانتاجيه. ونحن نسلط الضوء علي هذه المنصة الحساسة ، علي الرغم من انه يمكن تطبيق استراتيجيات أخرى قائمه علي اللوحات. يمكن تكييف هذه الطريقة بسهوله لعزل الخلايا الصغيرة من الانسجه الأخرى التي تم تشريحها ، مثل الاصابه أو بؤر المرض ، ويمكن ان يختلف عمر الماوس عبر اي مراحل ما بعد الولادة تقريبا. ومن شان العزل الفعال للخلايا الصغيرة الاقليميه للدراسات الناسخة أحاديه الخلية ان يسهل الفهم الأفضل لوظائفهم في مجال الصحة والمرض.

Protocol

وتتفق جميع الإجراءات المتعلقة بالقوارض مع المبادئ التوجيهية لجامعه ستانفورد ، التي تمتثل للقوانين والسياسات الوطنية والولائية. تمت الموافقة علي جميع الإجراءات الحيوانية من قبل الفريق الإداري لجامعه ستانفورد المعني برعاية الماشية في المختبرات. ملاحظه: يتم توفير…

Representative Results

يصف هذا البروتوكول أسلوبا لعزل وفرز الخلايا الصغيرة من مناطق الدماغ المختلفة في نصف الكره الارضيه الدماغ البالغة ، تليها scRNA-seq. نحن نستخدم دونسينج لإنشاء تعليق خليه واحده وأيضا كخطوه اولي لإثراء الخلايا الصغيرة. نقص أو الإفراط في دونسينج يقلل من الغلة. الاضافه إلى ذلك ، تحتوي أدمغه الفئرا…

Discussion

الميكروبات تتفاعل بنشاط مع أنواع الخلايا الأخرى في الوحدة العصبية الخاصة ، وانها حساسة جدا للمؤثرات البيئية. من أجل التقليل من الاستجابات التهابيه والتغيرات الشاذة في التعبير الجيني اثناء عمليه العزل ، تم تبسيط هذا البروتوكول من الطريقة9المنشورة سابقا ، وهو الآن مناسب لعزل …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نشكر ماريكو ل. بينيت ، ليانا نيكول بونانو ، و سبيروس دارمانيس لمساعدتهم خلال تطوير هذا البروتوكول. ونشكر أيضا المرفق المشترك لمؤسسه “ستانفورد” ، ولا سيما ميريديث وايغلارز وليزا نيكولز ؛ ين تران ، مايكل Eckart من البروتين ستانفورد ومرفق الحمض النووي (PAN) لدعمهم الكبير للتصوير. ويتم تمويل هذا العمل من قبل مؤسسه JPB ومؤسسه فنسنت j. Coates.

Materials

5 M Betaine Sigma-Aldrich Cat# B0300-5VL
10 mM dNTP mix Thermo Fisher Scientific Cat# R0192
0.5 M EDTA, pH 8.0 Thermo Fisher Scientific Cat# 15575020
10X Hanks’ Balanced Salt Solution Thermo Fisher Scientific Cat# 14185-052
1 M HEPES Thermo Fisher Scientific Cat# 15630080
1X KAPA HIFI Hotstart Master Mix Kapa Biosciences Cat# KK2602
5 mL Round Bottom Polystyrene Tube, with Cell Strainer Cap Corning Cat# 352235
AATI, High Sensitivity NGS Fragment Analysis Kit (1 bp – 6,000 bp) Advanced Analytical Cat# DNF-474-1000
Bovine Serum Albumin Sigma Aldrich Cat# A8806
DNase I Worthington Cat# LS002007 Working solution: 12500 units/ml
DTT, Molecular Grade Promega Cat# P1171
ERCC RNA Spike-In Mix Thermo Fisher Scientific Cat# 4456740
Fetal Bovine Serum Thermo Fisher Scientific Cat# 10437-028
Illumina XT Index Kit v2 Set A (96 indexes) Illumina Cat# FC-131-2001
Illumina XT Index Kit v2 Set B (96 indexes) Illumina Cat# FC-131-2002
Illumina XT Index Kit v2 Set C (96 indexes) Illumina Cat# FC-131-2003
Illumina XT Index Kit v2 Set D (96 indexes) Illumina Cat# FC-131-2004
Lambda Exonuclease (5 U/μl) New England BioLabs Cat# M0262S
Mouse Fc block BD Pharmingen Cat# 553142
Myelin removal beads Miltenyl Biotec Cat# 130-096-433
Nextera XT DNA Sample Prep Kit Illumina Cat# FC-131-1096
NextSeq 500/550 High Output Kit v2.5 (150 Cycles) Illumina Cat# 20024907
PBS (10X), pH 7.4 Thermo Fisher Scientific Cat# 70011044
PCRClean DX beads Aline Biosciences Cat# C-1003-50
Propidium Iodide Thermo Fisher Scientific Cat# P3566 Staining: 1:1000
Qubit dsDNA HS Assay Kit Thermal Fisher Scientific Cat# Q32851
Rat monoclonal anti mouse/human CD11b, Brilliant Violet 421 (clone M1/70) BioLegend Cat# 101236; RRID: AB_11203704 Staining: 1:300
Rat monoclonal anti mouse CD45, PE/Cy7 (clone 30-F11) Thermo Fisher Scientific Cat# 25-0451-82; RRID: AB_469625 Staining: 1:300
Recombinant RNase Inhibitor Takara Bio Cat# 2313B
SMARTScribe Reverse Transcriptase (100 U/μl) Clontech Cat# 639538 Containing 5x First strand buffer
Oligonucleotides
0.1 μM ISPCR Oligo: 5' – AAGCAGTGGTATCAA
CGCAGAGT-3'
(Picelli et al., 2014)
Oligo-dT30VN primer: 5' – AAGCAGTGGTATCAACGCA
GAGTACT 30 VN-3'
(Picelli et al., 2014)
TSO 5' – AAGCAGTGGTATCAACGCAGA
GTACATrGrG+G-3' ("r" is forribobases and "+" is for an LNA base)
(Picelli et al., 2014)
Solutions
FACS buffer Recipe: sterile-filtered 1% FBS, 2 mM EDTA, 25 mM HEPES in 1X PBS
MCS buffer Recipe: sterile-filtered 0.5% BSA, 2 mM EDTA in 1X PBS
Medium A Recipe: 15 mM HEPES, 0.5% glucose in 1X HBSS without phenol red
Plates
384-well Rigi-Plate PCR Microplates, Axygen Scientific VWR 89005-556
Hard-shell 96-well PCR plates Bio-Rad HSP9631
Others
Dumont #55 forceps Fine Science Tools 11295-51
Dounce homogenizer, 2 ml Wheaton 357422
Large depletion column Miltenyi Biotec 130-042-901
Large selection column Miltenyi Biotec 130-042-401
MACS MultiStand Miltenyi Biotec 130-042-303
QuadroMACS Separator Miltenyi Biotec 130-090-976
RNAzap Thermo Fisher Scientific AM9780
Strainer (70 μm) Falcon 352350
Equipment
BD FACSAria II BD Biosciences http://www.bdbiosciences.com/
Bioanalyzer Agilent 2100
Fragment Analyzer Agilent 5300
Mosquito HTS nanoliter pipetting robot TTP Labtech https://www.ttplabtech.com/
Qubit 4 Fluorometer Thermo Fisher Scientific Q33226

References

  1. Li, Q., Barres, B. A. Microglia and macrophages in brain homeostasis and disease. Nature Reviews Immunology. 18 (4), 225-242 (2018).
  2. Li, Q., et al. Developmental Heterogeneity of Microglia and Brain Myeloid Cells Revealed by Deep Single-Cell RNA Sequencing. Neuron. 101 (2), 207-223 (2019).
  3. Keren-Shaul, H., et al. A Unique Microglia Type Associated with Restricting Development of Alzheimer’s Disease. Cell. 169 (7), 1276-1290 (2017).
  4. Bohlen, C. J., et al. Diverse Requirements for Microglial Survival, Specification, and Function Revealed by Defined-Medium Cultures. Neuron. 94 (4), 759-773 (2017).
  5. Guerreiro, R., et al. TREM2 variants in Alzheimer’s disease. New England Journal of Medicine. 368 (2), 117-127 (2013).
  6. Jonsson, T., et al. Variant of TREM2 associated with the risk of Alzheimer’s disease. New England Journal of Medicine. 368 (2), 107-116 (2013).
  7. Zhang, Y., et al. An RNA-sequencing transcriptome and splicing database of glia, neurons, and vascular cells of the cerebral cortex. Journal of Neuroscience. 34 (36), 11929-11947 (2014).
  8. Colonna, M., Butovsky, O. Microglia Function in the Central Nervous System During Health and Neurodegeneration. Annual Review of Immunology. 35, 441-468 (2017).
  9. Bennett, M. L., et al. New tools for studying microglia in the mouse and human CNS. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (12), 1738-1746 (2016).
  10. Hammond, T. R., et al. Single-Cell RNA Sequencing of Microglia throughout the Mouse Lifespan and in the Injured Brain Reveals Complex Cell-State Changes. Immunity. 50 (1), 253-271 (2019).
  11. Van Hove, H., et al. A single-cell atlas of mouse brain macrophages reveals unique transcriptional identities shaped by ontogeny and tissue environment. Nature Neuroscience. 22 (6), 1021-1035 (2019).
  12. Chen, G., Ning, B., Shi, T. Single-Cell RNA-Seq Technologies and Related Computational Data Analysis. Frontiers in Genetics. 10, 317 (2019).
  13. Svensson, V., et al. Power analysis of single-cell RNA-sequencing experiments. Nature Methods. 14 (4), 381-387 (2017).
  14. Picelli, S., et al. Full-length RNA-seq from single cells using Smart-seq2. Nature Protocols. 9 (1), 171-181 (2014).
  15. Macosko, E. Z., et al. Highly Parallel Genome-wide Expression Profiling of Individual Cells Using Nanoliter Droplets. Cell. 161 (5), 1202-1214 (2015).
  16. Ziegenhain, C., et al. Comparative Analysis of Single-Cell RNA Sequencing Methods. Molecular Cell. 65 (4), 631-643 (2017).
  17. Tabula Muris, C., et al. Single-cell transcriptomics of 20 mouse organs creates a Tabula Muris. Nature. 562 (7727), 367-372 (2018).
  18. Bohlen, C. J., Bennett, F. C., Bennett, M. L. Isolation and Culture of Microglia. Current Protocols in Immunology. 125 (1), 70 (2018).
  19. Haimon, Z., et al. Re-evaluating microglia expression profiles using RiboTag and cell isolation strategies. Nature Immunology. 19 (6), 636-644 (2018).
  20. Collins, H. Y., Bohlen, C. J. Isolation and Culture of Rodent Microglia to Promote a Dynamic Ramified Morphology in Serum-free Medium. Journal of Visualized Experiments. (133), e57122 (2018).
  21. Nikodemova, M., Watters, J. J. Efficient isolation of live microglia with preserved phenotypes from adult mouse brain. Journal of Neuroinflammation. 9, 147 (2012).
  22. Swartzlander, D. B., et al. Concurrent cell type-specific isolation and profiling of mouse brains in inflammation and Alzheimer’s disease. Journal of Clinical Investigation Insight. 3 (13), 121109 (2018).
  23. Hennig, B. P., et al. Large-Scale Low-Cost NGS Library Preparation Using a Robust Tn5 Purification and Tagmentation Protocol. G3. 8 (1), 79-89 (2018).
check_url/kr/60347?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhou, L., Li, Q. Isolation of Region-specific Microglia from One Adult Mouse Brain Hemisphere for Deep Single-cell RNA Sequencing. J. Vis. Exp. (154), e60347, doi:10.3791/60347 (2019).

View Video