Qui, presentiamo un protocollo per staccare le cellule endoteliali corneali (CEC) dalla membrana di Descemet (DM) utilizzando un laser neodymium:YAG (Nd:YAG) come modello di malattia ex vivo per la cherata toropatia (BK).
I laser Nd:YAG sono stati utilizzati per eseguire interventi chirurgici intraoculari non invasivi, come la capsulotomia da diversi decenni. L’effetto incisivo si basa sulla rottura ottica al fuoco laser. Vengono generate onde d’urto acustiche e bolle di cavitazione, causando la rottura del tessuto. Le dimensioni delle bolle e le ampiezza di pressione variano a seconda dell’energia dell’impulso e della posizione del punto focale. In questo studio, gli occhi di porcina enucleati sono stati posizionati di fronte a un laser Nd:YAG disponibile in commercio. Sono state testate le energie di impulso variabili e le diverse posizioni dei punti focali posteriori alla cornea. Le lesioni risultanti sono state valutate dalla microscopia a due fotoni e dall’istologia per determinare i migliori parametri per un distacco esclusivo delle cellule endoteliali corneali (CEC) con un danno collaterale minimo. I vantaggi di questo metodo sono l’ablazione precisa della CEC, la riduzione dei danni collaterali e, soprattutto, il trattamento senza contatto.
La trasparenza della cornea è essenziale per la trasmissione della luce alla retina e ai suoi fotorecettori1. A questo proposito, uno stato relativo di disidratazione è fondamentale per mantenere le fibre di collagene all’interno dello stroma corneale correttamente allineate. Questa omeostasi è mantenuta da cellule endoteliali corneali (CEC) situate sulla membrana del Descemet (DM)2. L’endotelio è lo strato corneale più interno. Ha un’importante barriera e funzione di pompaggio, che è fondamentale per la trasparenza corneale3. A differenza dell’epitelio, l’endotelio non è in grado di auto-rinnovarsi4. Pertanto, qualsiasi danno cellulare causato da malattie o traumi stimola le cellule endoteliali rimanenti ad ingrandire e migrare, a coprire i difetti risultanti e a mantenere la funzionalità corneale5. Tuttavia, se la densità CEC scende al di sotto di una soglia critica, lo scompenso dell’endotelio porta ad un edema, con conseguente visione e disagio offuscati o anche dolore grave4. Nonostante la disponibilità di farmaci per alleviare i sintomi, attualmente l’unico trattamento definitivo in questi casi è il trapianto di cornea, che può essere eseguito sotto forma di un trapianto endoteliale a tutto spessore o un trapianto endoteliale lamellare. Quest’ultima procedura è disponibile come keratoplastica endoteliale a membrana (DMEK) di Descemet e come keratoplastica endoteliale di Descemet (DSAEK)6. Tuttavia, la protezione della CEC rimanente e il miglioramento della loro sopravvivenza potrebbe essere un obiettivo alternativo, che necessita di un modello di malattia adeguato per testare potenziali farmaci terapeutici.
Gli attuali modelli di malattia da perdita CEC si concentrano sulla distruzione dell’endotelio attraverso l’iniezione di agenti tossici (ad esempio, il cloruro di benzalkonium) nella camera anteriore o per abrasione meccanica delle cellule utilizzando una tecnica di descemetorhexis invasiva7,8. Mentre questi modelli sono ben consolidati, esistono svantaggi come la risposta infiammatoria generale e danni collaterali imprecisi. Pertanto, questi modelli hanno maggiori probabilità di rappresentare le fasi finali della malattia, quando le opzioni chirurgiche di cui sopra sono inevitabili.
Con i progressi nelle strategie di trattamento cellulare come le cellule staminali e la terapia genica, l’applicazione di queste terapie cellulari potrebbe essere utile nelle prime fasi della perdita di CEC9. Successivamente, abbiamo bisogno di un modello che rappresenti queste fasi precedenti della malattia in modo più adeguato. A questo proposito, i modelli di coltura cellulare sono migliorati nell’ultimo decennio, ma sono ancora limitati nella loro validità, in quanto le cellule in vitro non possono avvicinarsi alla replica delle complesse interazioni che si verificano tra i diversi tipi di cellule all’interno della cornea10. Pertanto, i modelli ex vivo e in vivo sono ancora molto richiesti e migliorare quelli esistenti è del massimo interesse.
Chirurgia intraoculare non invasiva da fotodisruption utilizzando un neodymium:YAG (Nd:YAG) laser è diventato una procedura di routine per oftalmologi in tutto il mondo dalla sua introduzione alla fine del 11 anni11. La fotodisruption si basa sull’assorbimento della luce non lineare che porta alla formazione di plasma, alla generazione di onde acustiche d’urto e alla creazione di bolle di cavitazione, ogni volta che il sito di applicazione si trova in un ambiente liquido12. In generale, questi processi contribuiscono all’effetto previsto di un taglio preciso dei tessuti. Tuttavia, possono anche essere la fonte di danni collaterali non necessari che limitano il confinamento locale della chirurgia laser13.
La previsione degli effetti meccanici risultanti è notevolmente migliorata attraverso la caratterizzazione del corso di propagazione e cavitazione dell’onda d’urto. Il nostro obiettivo è quello di indirizzare la CEC con il minor danno possibile al tessuto circostante per fornire un modello di malattia sperimentale non invasivo assistito dal laser per le prime fasi della perdita di CEC. A questo scopo, è necessario determinare le energie di impulso ottimali e le posizioni dei punti focali del laser.
I risultati di questo studio pilota indicano che un laser Nd:YAG può essere utilizzato per ablamare selettivamente le cellule endoteliali corneali quando vengono scelti i parametri appropriati per la dose di energia e la posizione del punto di messa a fuoco.
Poiché la funzione endoteliale è importante per la trasparenza corneale e la salvaguardia della cornea dall’edema stromale, i modelli di disfunzione endoteliale svolgono un ruolo importante nello sviluppo di farmaci anti-edematosi o pro…
The authors have nothing to disclose.
Ringraziamo Christine En e Jan A. M. Sochurek per il loro aiuto con metodi sperimentali.
BARRON VACUUM TREPHINE | Katena | K20-2058 | |
Cryostat | Leica | CM 3050S | |
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium – high glucose | PAA | E-15009 | |
Eye holder | Self | N/A | |
Inverted Microscope | Leica | DMI 6000 B | |
KH2PO4 | Merck | 529568 | |
Na2HPO4 | Merck | 1065860500 | |
Nd:YAG laser | Zeiss Meditec | visuLAS YAG II plus | |
OCT Tissue Tek | Sakura Finetechnical | 4583 | |
Penicillin-Streptomycin | Sigma-Aldrich | P4333 | |
Phosphate Buffered Saline (PBS) | Gibco | 10010056 | |
Porcine serum | Sigma-Aldrich | 12736C | |
Spectral-domain optical coherence tomograph | Heidelberg Engineering | Spectralis | |
Tissue culture plate 12-well | Sarstedt | 833921 | |
Two-Photon Microscope | JenLab | DermaInspect | |
Viscoelastic | OmniVision | Methocel |