Summary

Vurdering av akutt innånding av luftbårne partikler ved å utsette dyrkede menneskelige lungeceller ved luftflytende grensesnitt

Published: February 23, 2020
doi:

Summary

Vi presenterer et robust, overførbart og prediktivt in vitro-eksponeringssystem for screening og overvåking av luftbårne partikler om deres akutte lungecytotoksisitet ved å utsette dyrkede menneskelige lungeceller ved luftvæskegrensesnittet (ALI).

Abstract

Her presenterer vi et spesialdesignet modulær in vitro eksponeringssystem som muliggjør homogen eksponering av dyrkede menneskelige lungeceller ved ALI til gasser, partikler eller komplekse atmosfærer (f.eks. sigarettrøyk), og gir dermed realistisk fysiologisk eksponering av den apikale overflaten av den menneskelige alveolære regionen til luft. I motsetning til sekvensielle eksponeringsmodeller med lineær aerosolveiledning oppfyller den modulære utformingen av radialstrømningssystemet alle krav til kontinuerlig generasjon og transport av testatmosfæren til cellene, en homogen fordeling og avsetning av partiklene og kontinuerlig fjerning av atmosfæren. Denne eksponeringsmetoden er primært utformet for eksponering av celler for luftbårne partikler, men kan tilpasses eksponeringen av flytende aerosoler og svært giftige og aggressive gasser avhengig av aerosolgenereringsmetoden og materialet i eksponeringsmodulene .

Innenfor rammen av en nylig fullført valideringsstudie ble dette eksponeringssystemet bevist som en overførbar, reproduserbar og prediktiv screeningmetode for kvalitativ vurdering av akutt lungecytotoksisitet av luftbårne partikler, og dermed potensielt redusere eller erstatte dyreforsøk som normalt ville gi denne toksikologiske vurderingen.

Introduction

Innånding av giftige luftbårne partikler er en folkehelsebekymring, noe som fører til en rekke helserisikoer over hele verden og mange millioner dødsfall årlig1,2. Klimaendringer, den pågående industriutviklingen og den økende etterspørselen etter energi-, landbruks- og forbrukerprodukter har bidratt til økningen av lungesykdommer de siste årene3,4,5,6. Kunnskap og evaluering av inhalerbare stoffer om akutt innåndingstoksisitet gir grunnlag for farevurdering og risikostyring, men denne informasjonen mangler fortsatt for et bredt spekter av disse stoffene7,8. Siden 2006 krever EUs kjemiske lovgivning REACH (Registrering, evaluering, autorisasjon og begrensning av kjemikalier) at allerede eksisterende og nylig introduserte produkter gjennomgår en toksikologisk karakterisering, inkludert innåndingsruten før de plasseres på markedet. Derfor fokuserer REACH på alternative og dyrefrie metoder, implementeringen av “3R”-prinsippet (Erstatning, raffinement og reduksjon av dyreforsøk) og bruk av passende in vitro-modeller9. I de senere årene har mange forskjellige og tilstrekkelige ikke-dyr innånding toksisitet testing modeller (f.eks in vitro celle kulturer, lunge-på-en-chip modeller, presisjon kuttet lungeskiver (PCLS)) er utviklet for å vurdere den akutte innånding toksisitet av luftbårne partikler5,7,10,11. Når det gjelder in vitro celle kultur modeller, dyrket celler kan bli utsatt under nedsenket forhold eller ved ALI (Figur 1). Imidlertid er gyldigheten av nedsenkede eksponeringsstudier begrenset med hensyn til evaluering av toksisiteten av luftbårne forbindelser, spesielt partikler. Nedsenket eksponeringsteknikker samsvarer ikke med den menneskelige in vivo-situasjonen; cellekulturmediet som dekker cellene kan påvirke fysico-kjemiske egenskaper og dermed de giftige egenskapene til et teststoff12,13. ALI in vitro innånding modeller tillate direkte eksponering av celler til teststoffer uten forstyrrelser av cellekulturmediet med testpartikler, dermed etterligne menneskelig eksponering med høyere fysiologisk og biologisk likhet enn nedsenket eksponering12,14.

For regulatoriske prosesser som REACH er imidlertid bare dyremodeller tilgjengelige innen akutt innånding toksikologi, da ingen alternative in vitro-metoder har blitt tilstrekkelig validert og offisielt akseptert så langt14. For dette formålet må testmodeller valideres i henhold til kravene til EUs referanselaboratorium for alternativer til dyretesting (EURL-ECVAM) prinsipper om testgyldighet15.

En tidligere pre-validering studie og en nylig fullført validering studie vellykket demonstrert e-området av CULTEX RFS eksponeringssystem og dens overførbarhet, stabilitet, og reproduserbarhet13. Dette eksponeringssystemet er et in vitro cellebasert eksponeringssystem som muliggjør homogen eksponering av celler for gasser, partikler eller komplekse atmosfærer (f.eks. sigarettrøyk) ved ALI på grunn av sitt radiale aerosoldistribusjonskonsept og ledning av testaerosolen i en kontinuerlig strøm over cellene16. Den grunnleggende modulen til dette radiale strømningssystemet består av innløpsadapteren, aerosolføringsmodulen med radial aerosoldistribusjon, prøvetaking og socket-modul og en låsemodul med et håndhjul (figur 2). De genererte partiklene når cellene via innløpsadapteren og aerosolføringsmodulen og deponeres på cellekulturinnsatsene, som ligger i de tre radialt arrangerte eksponeringskamrene i prøvetakingsmodulen. Aerosolføringsmodulen samt prøvetakingsmodulen kan varmes opp ved å koble til et eksternt vannbad17.

Innenfor rammen av begge studiene ble A549-celler brukt til alle eksponeringseksperimenter. Cellelinjen A549 er en human udødeliggjort epitelcellelinje som er svært godt karakterisert og har blitt brukt som in vitro-modell for type II alveolær epitelceller i mange toksikologiske studier. Cellene er preget av lamellære kropper, produksjon av overflateaktivt middel og en rekke betennelsesrelevante faktorer18. De viser også egenskaper av bronkial epitelceller på grunn av deres slimproduksjon19. Videre kan de dyrkes på ALI. Selv om denne cellelinjen er mangelfull i å bygge cellecellekontakter, er dyrkingen av disse cellene mye mer praktisk, billigere og resultater avledet av disse er donoruavhengige sammenlignet med primærceller20.

A549 celler ble seeded i 6-brønncellekulturinnsatser (PET membran, 4,67 cm2, porestørrelse 0,4 mm) med en tetthet på 3,0 x 105 celler per innsats og dyrket i 24 timer under nedsenket forhold. Cellene ble deretter eksponert i tre uavhengige laboratorier for ren luft og tre forskjellige eksponeringsdoser (25, 50 og 100 μg/cm2)av 20 teststoffer ved ALI. Eksponeringsdosen er korrelert med avsetningstiden, noe som resulterer i en konstant partikkelhastighet på henholdsvis 25 μg/cm2,50 μg/cm2 og 100 μg/cm2 på cellene etter henholdsvis 15, 30 eller 60 min. Deponerte partiklene ble imidlertid ikke vasket av etter avsetning, men forble på cellene i 24 timer. Partiklenes avsetningstider var derfor 15, 30 og 60 min, men eksponeringen av cellene varte totalt i 24 timer. Avsetningsfrekvensen for teststoffene ble bestemt i foreløpige eksperimenter i henhold til tidligere metoder17.

Cellelevedyktighet som en indikator på toksisitet ble vurdert 24 timer etter partikkelavsetning ved hjelp av en cellelevedyktighetsanalyse. Det ble satt spesielt fokus på kvaliteten på rene luftkontroller, optimalisering og raffinement av eksponeringsprotokollen, intra- og inter-laboratoriereproduserbarhet og etablering av en prediksjonsmodell (PM). Stoffer som førte til en reduksjon av cellelevedyktighet en under 50 % (PM 50 %) eller 75 % (PM 75 %) i noen av de tre eksponeringsdosene ble ansett for å utøve en akutt innåndingsfare. Resultatene ble deretter sammenlignet med eksisterende in vivo-data (basert på minst én pålitelig studie i henhold til OECDs testretningslinje (TG) 403 eller TG 43621,22), noe som førte til en samlet konkordans på 85 %, med en spesifisitet på 83 % og en følsomhet på 88 %23.

I tillegg til måling av cellelevedyktighet, kan andre endepunkter som cytokinfrigjøring, undersøkelse av cellelysat eller membranintegritet via LDH-analyse vurderes, men var ikke nødvendig for valideringsstudien. Dermed ble eksponeringssystemet (f.eks. CULTEX RFS) bevist som et prediktivt screeningsystem for kvalitativ vurdering av den akutte innåndingstoksisiteten til de testede luftbårne partiklene, som representerer en lovende alternativ metode for dyretesting. Følgende protokoll anbefales for eksponeringseksperimenter til luftbårne partikler ved hjelp av dette eksponeringssystemet.

Protocol

MERK: Protokollen for ett eksponeringseksperiment dekker en periode på tre dager. Dag 1 1. Generelle preparater og dyrking av celler MERK: Human lungeadenokarsinom epitelcellelinje A549 ble brukt til eksponeringseksperimenter. Celler må håndteres under sterile forhold. Andre cellelinjer som er egnet for dyrking ved ALI kan brukes. Forbered vekstmediet (Dulbecco’s Minimum Essential Medium (DMEM), supplert med 10% føtal storfe…

Representative Results

CULTEX RFS er et spesialdesignet modulær in vitro-eksponeringssystem som muliggjør direkte og homogen eksponering av celler ved ALI. I en tidligere pre-valideringstudie ble den generelle anvendelsen av dette eksponeringssystemet og dets overførbarhet, stabilitet og reproduserbarhet vellykket demonstrert. I et nylig forskningsprosjekt finansiert av det tyske føderale utdannings- og forskningsdepartementet ble eksponeringssystemet vellykket validert og etablert som en prediksjonsmodell …

Discussion

Mange ikke-dyr innånding toksisitet testing modeller har blitt utviklet de siste årene for å få informasjon om akutt innånding fare for inhalerbare partikler og for å redusere og erstatte dyreforsøk i henhold til 3R prinsippet25.

Når det gjelder cellekulturmodeller, kan eksponering av celler gjøres under nedsenkede forhold eller ved ALI. Utsette celler under nedsenket forhold kan påvirke fysico-kjemiske egenskaper og dermed giftige egenskaper av en test stoff<…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av det tyske føderale utdannings- og forskningsdepartementet (Bundesministerium für Bildung und Forschung, BMBF, Tyskland (Grant 031A581, underprosjekt A-D)) og av Den tyske forskningsstiftelsen (Deutsche Forschungsgesellschaft, DFG, Forskningsopplæringsgruppe GRK 2338).

Materials

Cells
A549 ATCC CCL-185
Cell culture medium and supplies
DMEM Biochrom, Berlin, Germany FG 0415 used as growth medium
DMEM Gibco-Invitrogen, Darmstadt, Germany 22320 used as exposure medium
FBS superior Biochrom, Berlin, Germany S 0615
Gentamycin (10mg/mL) Biochrom, Berlin, Germany A 2710
HEPES 1M Th. Geyer, Renningen, Germany L 0180
PBS Biochrom, Berlin, Germany L 1825
Trypsin/EDTA (0.05%/0.02%) Biochrom, Berlin, Germany L 2143
Cell culture material
CASY Cups Roche Diagnostic GmbH, Mannheim, Germany REF 05651794
Cell culture plates Corning, Wiesbaden, Germany 3516 6­-well plates
Corning Transwell cell culture inserts Corning, Wiesbaden, Germany 3450 24mm inserts; 6-­well plates; 0.4 µm
Chemicals
CASYton Roche Diagnostic GmbH, Mannheim, Germany REF 05651808001
Compressed Air (DIN EN 12021) Linde Gas Therapeutics GmbH, Oberschleißheim, Germany 2290152
WST-1 Abcam, Cambridge, United Kingdom ab155902
Instruments + equipment
CASY Cell Counter Schärfe System GmbH, Reutlingen, Germany
Circulation thermostat LAUDA, Lauda-Königshofen, Germany Ecoline RE 100
CULTEX HyP – Hydraulic Press Cultex® Technology GmbH, Hannover, Gemany
CULTEX insert sleeve Cultex® Technology GmbH, Hannover, Gemany
CULTEX RFS – Radial Flow System Type 2 (module for particle exposure) Cultex® Technology GmbH, Hannover, Gemany
CULTEX RFS – Radial Flow System Type 2 (module for clean air exposure) Cultex® Technology GmbH, Hannover, Gemany
CULTEX supply
Flow controller 0-30 ml/min (IQ-Flow) Bronkhorst Deutschland Nord GmbH
Flow controller 0-1,5 l/min (EL-Flow) Bronkhorst Deutschland Nord GmbH
Filters (large) Munktell & Filtrak GmbH, Sachsen, Germany LP-050 Munktell Sterile Filter; Particle retention efficiency > 99,999%
Filters (small) Parker Hannifin Corporation, Mainz, Germany 9933-05-DQ Balston disposable filter
Medium pump Cole-Parmer GmbH, Wertheim, Germany Ismatec IPC High Precision Multichannel Dispenser digital peristaltic pump
Microplate Reader Infinite M200 Pro Tecan Deutschland GmbH, Crailsheim, Germany
Vakuum pump KNF, Freiburg, Germany N86 KT.18
Vögtlin mass flow controller 0,2-10 l/min TrigasFI GmbH Vögtlin red-y compact regulator, Typ-Nr.: GCR-C3SA-BA20
Water Bath LAUDA, Lauda-Königshofen, Germany Ecoline Staredition RE 104

References

  1. Faber, S. C., McCullough, S. D. Through the Looking Glass: In vitro Models for Inhalation Toxicology and Interindividual Variability in the Airway. Applied In vitro Toxicology. 4 (2), 115-128 (2018).
  2. De Matteis, S., et al. Current and new challenges in occupational lung diseases. European Respiratory Review. 26 (146), 1-15 (2017).
  3. LANUV Nordrhein-Westfalen. . Gesundheitliche Risiken von Nanomaterialien nach inhalativer Aufnahme. , (2009).
  4. Bérubé, K., et al. In vitro Models of Inhalation Toxicity and Disease. The report of a FRAME workshop. Alternatives To Laboratory Animals. 37 (1), 89-141 (2009).
  5. Lopez, A. D., Murray, C. C. The global burden of disease, 1990-2020. Nature Medicine. 4 (11), 1241-1243 (1998).
  6. Clippinger, A. J., et al. Alternative approaches for acute inhalation toxicity testing to address global regulatory and non-regulatory data requirements: An international workshop report. Toxicology In vitro. 48, 53-70 (2018).
  7. Agrawal, M. R., Winder, C. Frequency and Occurrence of LD50 Values for Materials in the Workplace. Journal Of Applied Toxicology. 16 (5), 407-422 (1996).
  8. Amtsblatt der Europäischen Union. Verordnung (EG) Nr. 1907/2006 des Europäischen Parlaments und des Rates. Europäische Union. 860, (2006).
  9. Huh, D., et al. Reconstituting Organ-Level Lung Functions on a Chip. Science. 328 (5986), 1662-1668 (2010).
  10. Fisher, R. L., et al. The Use of Human Lung Slices in Toxicology. Human and Experimental Toxicology. 13 (7), 466-471 (1994).
  11. Lenz, A. G., et al. Inflammatory and Oxidative Stress Responses of an Alveolar Epithelial Cell Line to Airborne Zinc Oxide Nanoparticles at the Air-Liquid Interface. Biomed Research International. 12, (2013).
  12. Steinritz, D., et al. Use of the CULTEX Radial Flow System as an in vitro exposure method to assess acute pulmonary toxicity of fine dusts and nanoparticles with special focus on the intra- and inter-laboratory reproducibility. Chemico-Biological Interactions. 206 (3), 479-490 (2013).
  13. Lacroix, G., et al. Air-Liquid Interface In vitro Models for Respiratory Toxicology Research. Applied In vitro Toxicology. 4 (2), 91-106 (2018).
  14. Eskes, C., Whelan, M. . Validation of Alternative Methods for Toxicity Testing. 418, (2016).
  15. Rach, J., Budde, J., Möhle, N., Aufderheide, M. Direct exposure at the air-liquid interface: Evaluation of an in vitro approach for simulating inhalation of airborne substances. Journal Of Applied Toxicology. 34 (5), 506-515 (2014).
  16. Aufderheide, M., Halter, B., Möhle, N., Hochrainer, D. The CULTEX RFS: A comprehensive Technical Approach for the In vitro Exposure of Airway Epithelial Cells to the Particulate Matter at the Air-Liquid Interface. Biomed Research International. 15, (2013).
  17. Lieber, M., Todaro, G., Smith, B., Szakal, A., Nelson-Rees, W. A continuous tumor-cell line from a human lung carcinoma with properties of type II alveolar epithelial cells. International Journal Of Cancer. 17 (1), 62-70 (1976).
  18. Carterson, A. J., et al. A549 lung epithelial cells grown as three-dimensional aggregates: Alternative tissue culture model for Pseudomonas aeruginosa pathogenesis. Infection And Immunity. 73 (2), 1129-1140 (2005).
  19. Kim, K. J., Borok, Z., Crandall, E. D. A useful in vitro model for transport studies of alveolar epithelial barrier. Pharmaceutical Research. 18 (3), 253-255 (2001).
  20. OECD. Test No. 403: Acute Inhalation Toxicity. OECD Guidelines for the Testing of Chemicals, Section 4. , (2009).
  21. OECD. Test No. 436: Acute Inhalation Toxicity – Acute Toxic Class Method. OECD Guidelines for the Testing of Chemicals, Section 4. , (2009).
  22. Tsoutsoulopoulos, A., et al. Validation of the CULTEX Radial Flow System for the assessment of the acute inhalation toxicity of airborne particles. Toxicology In vitro. 58, 245-255 (2019).
  23. Tsoutsoulopoulos, A., et al. A novel exposure system generating nebulized aerosol of sulfur mustard in comparison to the standard submerse exposure. Chemico-Biological Interactions. 298, 121-128 (2019).
  24. Tsoutsoulopoulos, A., et al. Optimization of the CULTEX radial flow system for in vitro investigation of lung damaging agents. Toxicology Letters. 244, 28-34 (2016).
  25. Osman, J. J., Birch, J., Varley, J. The response of GS-NS0 myeloma cells to pH shifts and pH perturbations. Biotechnology and Bioengineering. 75 (1), 63-73 (2001).
  26. OECD. Test Guideline 433: Acute Inhalation Toxicity – Acute Toxic Class Method. OECD Guidelines for the Testing of Chemicals, Section 4. , (2018).
  27. OECD. . Guidance Document on Inhalation Toxicity Studies. , (2018).
check_url/60572?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Tsoutsoulopoulos, A., Gohlsch, K., Möhle, N., Breit, A., Hoffmann, S., Krischenowski, O., Mückter, H., Gudermann, T., Thiermann, H., Aufderheide, M., Steinritz, D. Assessment of the Acute Inhalation Toxicity of Airborne Particles by Exposing Cultivated Human Lung Cells at the Air-Liquid Interface. J. Vis. Exp. (156), e60572, doi:10.3791/60572 (2020).

View Video