Summary

En revidert metode for å indusere sekundær lymfødem i Hindlimb bentap av mus

Published: November 02, 2019
doi:

Summary

Denne dyre modellen gjør det mulig for forskere å indusere statistisk signifikant sekundær lymfødem i hindlimb bentap av mus, som varer i minst 8 uker. Modellen kan brukes til å studere patofysiologi av lymfødem og å undersøke romanen behandlingstilbud.

Abstract

Animal modeller er av største betydning i forskningen av lymfødem for å forstå patofysiologi av sykdommen, men også å utforske potensielle behandlingstilbud. Denne muse modellen gjør det mulig for forskere å indusere betydelig lymfødem som varer i minst 8 uker. Lymfødem er indusert ved hjelp av en kombinasjon av fraksjoneres strålebehandling og kirurgisk ablasjon av lymphatics. Denne modellen krever at musene får en dose på 10 Gray (gy) stråling før og etter operasjonen. Den kirurgiske delen av modellen innebærer ligation av tre lymfe fartøy og utvinning av to lymfeknuter fra musen hindlimb bentap. Å ha tilgang til mikrokirurgisk verktøy og et mikroskop er viktig, på grunn av de små anatomiske strukturer av mus. Fordelen med denne modellen er at det resulterer i statistisk signifikant lymfødem, som gir et godt grunnlag for å vurdere ulike behandlingstilbud. Det er også et flott og lett tilgjengelig alternativ for mikrokirurgisk trening. Begrensningen av denne modellen er at prosedyren kan være tidkrevende, spesielt hvis ikke praktisert på forhånd. Modellen resulterer i objektivt målbare lymfødem i mus, uten å forårsake alvorlig sykelighet og har blitt testet i tre separate prosjekter.

Introduction

Lymfødem er preget av en opphopning av lymfe væske som fører til lokaliserte vev hevelse, som i hovedsak oppstår på grunn av nedsatt eller forstyrret flyt av lymfe væske i lymfesystemet fartøy1. Lymfe strømmen kan svekkes eller forstyrret av infeksjon, obstruksjon, skade eller medfødt defekter i lymfesystemet2. Disse årsaker resultere i opphopning av lymfatisk væske, noe som fører til en kronisk tilstand av betennelse, noe som resulterer i påfølgende fibrose, samt deponering av fettvev3. Lymfødem kan kategoriseres som primær eller sekundær lymfødem. Primær lymfødem er forårsaket av utviklingsmessige unormalt eller genetisk mutasjon2,4. Sekundær lymfødem oppstår på grunn av underliggende systemisk sykdom, kirurgi eller traumer2,4. Sekundær lymfødem er den vanligste formen for lymfødem i verden2. I utviklede land, den vanligste årsaken til sekundær lymfødem er onkologiske terapi som adjuvant strålebehandling og lymfe node disseksjon5. Lymfødem er hyppigste blant brystkreftpasienter, men kan også utvikles hos pasienter med Gynecologic, melanom, urin eller nakke kreft6. Det har blitt antydet at av alle kvinner diagnostisert med brystkreft, vil 21% utvikle lymfødem7.

Lymfødem kan være stressende for pasienten både fysisk og psykologisk. Pasienter med lymfødem har en økt risiko for infeksjon5,8,9, dårlig livskvalitet og kan utvikle sosial angst og symptomer på depresjon10. Komplikasjoner av kronisk lymfødem føre til høye kostnader for omsorg og en økt sykdoms byrde9,11. Funnene har også antydet at lymfødem kan være assosiert med økt risiko for død etter brystkreftbehandling12. Konservativ ledelse som kompresjon av det berørte området, manuell lymfe drenering og generell hudpleie forblir den første linjen tilnærming. Det er for øyeblikket ingen helbredende behandling6. Selv om fremgangen har blitt gjort innen kirurgisk og medisinsk behandling, er det fortsatt rom for forbedring. Mer forskning, som gir innsikt i patofysiologi og progresjon av sykdommen, er nødvendig for at klinikere skal kunne gi bedre behandlingsalternativer for pasientene5.

Animal modeller brukes i prekliniske forskning for å forstå patofysiologi av sykdommer og utvikle potensielle behandlingstilbud. Adskillige annerledes lymfødem dyr modeller ha blitt etablerte inne hjørnetenner13,14, kanin15, sau16, pigs17,18 og gnagere19,20, 21,22,23,24. Den gnager modellen synes å være den mest kostnadseffektive modellen, når gransker gjenoppbyggingen av lymfatisk funksjon, på grunn av gnagere blir lett tilgjengelig og relativt lavt priset25. De fleste av musene modellene har fokusert på inducing lymfødem i halen av mus21,22,23. Halen modellen er svært pålitelig, men den eksakte kirurgiske teknikken for inducing lymfødem varierer betydelig i tidligere publisert materiale. Dette resulterer i svingninger i varighet og robusthet av de utviklede lymfødem presentert i kjente litteratur25. Ulike teknikker blir også brukt for inducing lymfødem i hindlimb bentap modellen og de gir også varierende resultater, men hindlimb bentap modellen kan være lettere å forstå fra et translational perspektiv. Tidligere lymfødem modeller har blitt hemmet av spontan lymfødem oppløsning og derfor en reproduserbar og permanent lymfødem modell er nødvendig25. Forskere har tidligere forsøkt å øke dosen av stråling, for å hindre spontan lymfødem oppløsning, men dette har ofte ført til påfølgende alvorlig sykelighet25.

Denne modellen resulterer i statistisk signifikant lymfødem, uten å forårsake alvorlig sykelighet, ved å kombinere mikrokirurgi med stråling. Modellen har blitt revidert fra en tidligere kirurgisk modell ved å legge en dose av bestråling som induserer lymfødem, uten å forårsake alvorlig sykelighet26. Den likeledes tilbyder en stor opportunity for mikrokirurgisk lærer opp. Å ha tilgang til mikrokirurgisk utstyr og et mikroskop er nødvendig, på grunn av de små anatomiske strukturer av mus. Den kirurgiske prosedyren kan utføres når brukeren har lært grunnleggende mikrokirurgisk teknikker, for eksempel suturing med mikrokirurgisk instrumenter. Operatørene som utførte denne prosedyren alle så tutorial videoer av Acland på forutsetningene for mikrokirurgisk ferdigheter (1981) og grunnleggende microsuture teknikk (1985). Vi anbefaler at du praktiserer den kirurgiske prosedyren 8 − 10 ganger før du bruker den i forskning. Praktisere prosedyren sikrer at færre feil er gjort og at prosedyren kan utføres mer effektivt. Når mestret, kan den kirurgiske prosedyren utføres i 45 minutter.

Protocol

Dyrene var huset inne det universitet av Sør Danmark dyr bekymre Letter ifølge institusjonell retningslinjene. Alle prosedyrer som involverer dyr har blitt godkjent av The Animal eksperimenter Datatilsynet, Miljøverndepartementet og mat av Danmark. 1. pre-kirurgi bestråling Merk: pre-kirurgi bestråling finner sted 7 dager før operasjonen. Indusere anestesi. Plasser musen i en induksjon boks og sette fordamper til 3% isoflurane med en oksygen …

Representative Results

Denne prosedyren har tidligere vært brukt i tre separate eksperimenter. Alle eksperimentene ble gjort av forskjellige bly etterforskere som alle er co-forfatterne av denne artikkelen. I alle tre eksperimenter ble det tatt stor forsiktighet for å følge samme fremgangsmåte som beskrevet i denne protokollen. I alle tre eksperimenter ble sekundær lymfødem indusert i en hindlimb bentap mens de andre hindlimb bentap fungerte som en kontroll. Volumene av hindlimbs var det primære utfallet…

Discussion

Det finnes noen viktige trinn i denne protokollen. For det første er det viktig at forskerne tar sikkerhetsforanstaltninger når du arbeider med radioaktivitet. For det andre, under kirurgisk del av denne protokollen, er det viktig å starte prosedyren når musen er anesthetized og fullføre den uten unødvendige pauser. Dette er viktig for å unngå en overdrevent lang kirurgisk periode for dyret og for å hindre at anestesi mister effekt under operasjonen. Det anbefales å bare administrere en bolus injeksjon av bedø…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Peter bollen, leder av biomedisinsk laboratorium for utlån av utstyr som trengs for å spille inn opptakene sett gjennom mikroskop.

Materials

10-0 Nylon suture S&T 12051-10
6-0 Nylon suture – Dafilon B Braun C0933112
Coagulator – ICC 50 ERBE
Cotton tipped applicators Yibon medical co
Dissecting forceps Lawton 09-0190
Elastic retractors Odense University Hospital
Electrical clipper Aesculap GT420
Fentanyl 0,315 mg/ml Matrix
Heating pad – PhysioSuite Kent Scientific Corp.
Isoflurane 1000mg Attane Scan Vet
Isoflurane vaporizer – PPV Penlon
Micro jewler forceps Lawton 1405-05
Micro Needle holder Lawton 25679-14
Micro scissors Lawton 10128-15
Micro tying forceps Lawton 43953-10
Microfine U-40 syringe 0,5ml BD 328821
Microlance syringe 25g BD
Microlance syringe 27g BD
Midazolam 5 mg/ml (hameln) Matrix
Needle holder – Circle wood Lawton 08-0065
Non woven swabs Selefa
Opmi pico microscope F170 Zeiss
Patent blue V – 25 mg/ml Guerbet
Scissors – Joseph BD RH1630
Siemens INVEON multimodality pre-clinical scanner Siemens pre-clinical solutions
Source of radiation – D3100 Gulmay
Stata Statistical Software: Release 15 StataCorp LLC
Temgesic – 0,2 mg Indivior
Vet eye ointment – viscotears Bausch & Lomb

References

  1. Lawenda, B. D., Mondry, T. E., Johnstone, P. A. S. Lymphedema: a primer on the identification and management of a chronic condition in oncologic treatment. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 59 (1), 8-24 (2009).
  2. Greene, A. K., Greene, A. K., Slavin, S. A., Brorson, H. Epidemiology and morbidity of lymphedema. Lymphedema: Presentation, Diagnosis, and Treatment. , 33-44 (2015).
  3. Hespe, G. E., Nores, G. G., Huang, J. J., Mehrara, B. J. Pathophysiology of lymphedema-Is there a chance for medication treatment?. Journal of Surgical Oncology. 115 (1), 96-98 (2017).
  4. Grada, A. A., Phillips, T. J. Lymphedema: Pathophysiology and clinical manifestations. Journal of the American Academy of Dermatology. 77 (6), 1009-1020 (2017).
  5. Chang, D. W., Masia, J., Garza, R., Skoracki, R., Neligan, P. C. Lymphedema: Surgical and Medical Therapy. Plastic and Reconstructive Surgery. 138 (3 Suppl), 209S-218S (2016).
  6. Carl, H. M., et al. Systematic Review of the Surgical Treatment of Extremity Lymphedema. Journal of Reconstructive Microsurgery. 33 (6), 412-425 (2017).
  7. DiSipio, T., Rye, S., Newman, B., Hayes, S. Incidence of unilateral arm lymphoedema after breast cancer: a systematic review and meta-analysis. The Lancet Oncology. 14 (6), 500-515 (2013).
  8. Douglass, J., Graves, P., Gordon, S. Self-Care for Management of Secondary Lymphedema: A Systematic Review. PLoS Neglected Tropical Diseases. 10 (6), e0004740 (2016).
  9. Shih, Y. C. T., et al. Incidence, treatment costs, and complications of lymphedema after breast cancer among women of working age: a 2-year follow-up study. Journal of Clinical Oncology. 27 (12), 2007-2014 (2009).
  10. Ridner, S. H. The psycho-social impact of lymphedema. Lymphatic Research and Biology. 7 (2), 109-112 (2009).
  11. Gutknecht, M., et al. Cost-of-illness of patients with lymphoedema. Journal of the European Academy of Dermatology and Venereology. 31 (11), 1930-1935 (2017).
  12. Hayes, S., et al. Prevalence and prognostic significance of secondary lymphedema following breast cancer. Lymphatic Research and Biology. 9 (3), 135-141 (2011).
  13. Danese, C. A., Georgalas-Bertakis, M., Morales, L. E. A model of chronic postsurgical lymphedema in dogs’ limbs. Surgery. 64 (4), 814-820 (1968).
  14. Das, S. K., Franklin, J. D., O’Brien, B. M., Morrison, W. A. A practical model of secondary lymphedema in dogs. Plastic and Reconstructive Surgery. 68 (3), 422-428 (1981).
  15. Huang, G. K., Hsin, Y. P. An experimental model for lymphedema in rabbit ear. Microsurgery. 4 (4), 236-242 (1983).
  16. Tobbia, D., et al. Lymphedema development and lymphatic function following lymph node excision in sheep. Journal of Vascular Research. 46 (5), 426-434 (2009).
  17. Lahteenvuo, M., et al. Growth factor therapy and autologous lymph node transfer in lymphedema. Circulation. 123 (6), 613-620 (2011).
  18. Honkonen, K. M., et al. Lymph node transfer and perinodal lymphatic growth factor treatment for lymphedema. Annals of Surgery. 257 (5), 961-967 (2013).
  19. Wang, G. Y., Zhong, S. Z. A model of experimental lymphedema in rats’ limbs. Microsurgery. 6 (4), 204-210 (1985).
  20. Oashi, K., et al. A new model of acquired lymphedema in the mouse hind limb: a preliminary report. Annals of Plastic Surgery. 69 (5), 565-568 (2012).
  21. Slavin, S. A., Van den Abbeele, A. D., Losken, A., Swartz, M. A., Jain, R. K. Return of lymphatic function after flap transfer for acute lymphedema. Annals of Surgery. 229 (3), 421-427 (1999).
  22. Cheung, L., et al. An experimental model for the study of lymphedema and its response to therapeutic lymphangiogenesis. BioDrugs : Clinical Immunotherapeutics, Biopharmaceuticals and Gene Therapy. 20 (6), 363-370 (2006).
  23. Rutkowski, J. M., Moya, M., Johannes, J., Goldman, J., Swartz, M. A. Secondary lymphedema in the mouse tail: Lymphatic hyperplasia, VEGF-C upregulation, and the protective role of MMP-9. Microvascular Research. 72 (3), 161-171 (2006).
  24. Tammela, T., et al. Therapeutic differentiation and maturation of lymphatic vessels after lymph node dissection and transplantation. Nature Medicine. 13 (12), 1458-1466 (2007).
  25. Frueh, F. S., et al. Animal models in surgical lymphedema research–a systematic review. Journal of Surgical Research. 200 (1), 208-220 (2016).
  26. Jorgensen, M. G., et al. Quantification of Chronic Lymphedema in a Revised Mouse Model. Annals of Plastic Surgery. 81 (5), 594-603 (2018).
  27. Frueh, F. S., et al. High-resolution 3D volumetry versus conventional measuring techniques for the assessment of experimental lymphedema in the mouse hindlimb. Scientific Reports. 6, 34673 (2016).
  28. Biau, D. J., Kerneis, S., Porcher, R. Statistics in brief: the importance of sample size in the planning and interpretation of medical research. Clinical Orthopaedics and Related Research. 466 (9), 2282-2288 (2008).
  29. Korula, P., Varma, S. K., Sunderrao, S. Inhibition of wound contraction by point-to-point adherent splintage. Plastic and Reconstructive Surgery. 95 (4), 725-730 (1995).
  30. Komatsu, E., et al. Lymph Drainage During Wound Healing in a Hindlimb Lymphedema Mouse Model. Lymphatic Research and Biology. 15 (1), 32-38 (2017).

Play Video

Cite This Article
Wiinholt, A., Jørgensen, M. G., Bučan, A., Dalaei, F., Sørensen, J. A. A Revised Method for Inducing Secondary Lymphedema in the Hindlimb of Mice. J. Vis. Exp. (153), e60578, doi:10.3791/60578 (2019).

View Video