Summary

גירוי נישות תאי גזע והתחדשות רקמות בעור עכבר על ידי פוטוגנרציה תלוית פרוטופורפירין IX ניתנת להחלפה של מיני חמצן תגובתי באתרם

Published: May 08, 2020
doi:

Summary

מטרת פרוטוקול זה היא לגרום לייצור חולף in vivo של רמות לא קטלניות של מיני חמצן תגובתי (ROS) בעור העכבר, ולקדם עוד יותר תגובות פיזיולוגיות ברקמה.

Abstract

במאמר זה אנו מתארים פרוטוקול להשראת פוטוגנרציה ניתנת להחלפה in vivo של מיני חמצן תגובתי אנדוגני (ROS) בעור עכבר. ייצור חולף זה של ROS באתרו מפעיל ביעילות את התפשטות התאים בגומחות תאי גזע וממריץ התחדשות רקמות המתבטאת בחוזקה באמצעות האצת ריפוי כוויות ותהליכי צמיחת זקיקי שיער. הפרוטוקול מבוסס על טיפול פוטודינמי מווסת המטפל ברקמה עם קודמנים של הפוטונסיטייזר האנדוגני פרוטופורפירין IX ומקרין עוד יותר את הרקמה באור אדום תחת פרמטרים פיסיקוכימיים מבוקרים היטב. בסך הכל, פרוטוקול זה מהווה כלי ניסויי מעניין לניתוח הביולוגיה של ROS.

Introduction

מיני חמצן תגובתי (ROS) הם תוצאה של חיזור כימי של חמצן מולקולרי ליצירת מים, וכוללים חמצן סינגלט, אניון סופראוקסיד, מי חמצן ורדיקל הידרוקסיל 1,2,3. ל-ROS יש תוחלת חיים קצרה מאוד בשל אופיים הריאקטיבי הכימי ביותר. באורגניזמים אירוביים, ROS נוצרים באופן מקרי בתוך התאים כתוצר לוואי דולף עיקרי של נשימה אירובית (שרשרת הובלת אלקטרונים) במיטוכונדריה. הצטברות חולפת של רמות גבוהות של ROS בתא גורמת למצב של עקה חמצונית שעלולה לעורר השבתה בלתי הפיכה של חלבונים, שומנים וסוכרים והכנסת מוטציות במולקולת הדנ”א 2,3,4,5. ההצטברות ההדרגתית של נזקי חמצון בתאים, רקמות ואורגניזמים שלמים עולה בהתמדה עם הזמן ונקשרה להשראת תוכניות מוות תאי, מספר פתולוגיות ותהליך ההזדקנות 2,3,4,6.

אורגניזמים אירוביים פיתחו בהתמדה מנגנונים מולקולריים יעילים כדי להתמודד עם הצטברות עודפת של ROS בתאים וברקמות. מנגנונים אלה כוללים חברים במשפחת החלבונים סופראוקסיד דיסמוטאז (SOD), אשר מזרזים את פירוק רדיקלי סופראוקסיד לחמצן מולקולרי ומי חמצן, כמו גם קטלזות ופרוקסידאזות שונות המשתמשות במאגר נוגדי החמצון (גלוטתיון, NADPH, פרוקסירדוקסין, תיורדוקסין 7,8) כדי לזרז את ההמרה הבאה של מי חמצן למים ולחמצן מולקולרי.

עם זאת, מספר דוחות תומכים בתפקיד של ROS כרכיבי מפתח של מעגלים מולקולריים המווסתים תפקודי תאים קריטיים, כולל התפשטות, התמיינות וניידות 2,3,4. תפיסה זו נתמכת גם על ידי זיהוי ואפיון ראשוני של מנגנונים ייעודיים לייצור ROS באורגניזמים אירוביים, כולל lipoxygenases cyclooxygenases ו- NADPH oxidases 9,10. במובן זה, ROS ממלאים תפקיד פעיל במהלך התפתחות עוברים בעלי חוליות 11,12,13 ותפקידי מפתח עבור מולקולות אלה בוויסות תפקודים פיזיולוגיים ספציפיים in vivo דווחו במערכות ניסוי שונות, כולל תוכנית התמיינות של אבות המטופויטיים בדרוזופילה14, השראת ריפוי בדגי זברה, או התחדשות זנב בראשנים של קסנופוס 15. ביונקים, ROS היה מעורב בפוטנציאל ההתחדשות העצמית / התמיינות של תאי גזע עצביים במודל נוירוספרה16 ובדה-רגולציה של תפקוד תאי גזע במעי במהלך התחלת סרטן המעי הגס17. בעור, איתות ROS נקשר להתמיינות אפידרמיס ולוויסות נישת תאי גזע העור ומחזור צמיחת זקיק השערה18,19.

מנקודת מבט זו, מגבלה ניסיונית עיקרית לקביעת התפקידים הפיזיולוגיים של ROS במערכות ביולוגיות, הן בתנאים נורמליים והן בתנאים פתולוגיים, היא היעדר כלים ניסיוניים מתאימים כדי לגרום לייצור מבוקר של מולקולות אלה בתאים וברקמות, הדומות במדויק לייצור הפיזיולוגי שלהן כשליחי איתות שני. כיום, רוב הגישות הניסיוניות כוללות מתן ROS אקסוגני, בעיקר בצורה של מי חמצן. לאחרונה יישמנו גישה ניסיונית להפעלת ייצור invivo ארעי ולא קטלני של ROS אנדוגני בעור העכבר, המבוססת על מתן מבשרי הפוטוגנזה פרוטופורפירין IX (PpIX; למשל, חומצה אמינולאבולינית או נגזרת המתיל שלה מתילאמינולבולינאט) והקרנה נוספת של הדגימה באור אדום כדי לגרום להיווצרות באתרו של ROS מחמצן מולקולרי תוך-תאי (איור 1). הליך פוטודינמי זה עשוי לשמש ביעילות כדי לעורר נישות תאי גזע תושבים, ובכך להפעיל את תוכניות ההתחדשות של הרקמה19,20 ולפתוח את הדרך לשיטות טיפוליות חדשות ברפואה רגנרטיבית של העור. כאן, אנו מציגים תיאור מפורט של הפרוטוקול, המציג דוגמאות מייצגות של גירוי של נישות תאי גזע, שנמדדו כעלייה במספר התאים השומרים על תווית 5-bromo-2′-deoxyuridine (BrdU) לטווח ארוך (LRCs) באזור הבליטה של זקיק השערה19,21, ולאחר מכן הפעלה של תוכניות התחדשות (האצת צמיחת שיער ותהליכי ריפוי כוויות) המושרה על ידי חולף, ייצור ROS לא קטלני בעור של זן עכבר C57Bl6.

Protocol

כל הליכי גידול העכבר והניסויים חייבים להתבצע בהתאם לחקיקה המקומית, הלאומית, הבינלאומית ולהנחיות בנושא ניסויים בבעלי חיים. 1. השראת צמיחת שיער, השראת כוויות וזיהוי של BrdU LRCs ארוכי טווח באפיתל עור הזנב הערה: יש להשתמש בעכברי C57BL/6 בני 10 ימים או 7 שבועות, רצוי כעכברי ?…

Representative Results

מתן מקומי של קודמן mALA בעור הגב והזנב של העכבר גורם להצטברות משמעותית של PpIX בכל הרקמה, ובאופן ניכר, בזקיק השערה, כפי שמודגם על-ידי הפלואורסצנטיות הוורודה-אדמדמה של התרכובת הזו תחת עירור אור כחול (407 ננומטר) (איור 2A,C). הקרנה עוקבת של רקמה מטופלת באור אדום (636 ננומטר) בשט?…

Discussion

כאן, אנו מציגים מתודולוגיה המאפשרת הפעלה חולפת של ייצור ROS אנדוגני in vivo בעור עכבר עם השפעות פיזיולוגיות. המתודולוגיה מבוססת על הליך פוטודינמי לגרימת גירוי מבוקר ומקומי של הפוטונסיטייזר האנדוגני PpIX (איור 1B). גישה ניסויית זו היא כלי מעניין לחקר הביולוגיה של ROS במערכות ניסויי?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי מענקים מ- Ministerio de Economía y Competitividad (RTC-2014-2626-1 ל- JE) ו- Instituto de Salud Carlos III (PI15/01458 to JE) של ספרד. EC נתמך על ידי מענק Atracción de Talento Investigador 2017-T2/BMD-5766 (Comunidad de Madrid ו- UAM).

Materials

2′,7′-Dichlorofluorescin diacetate Sigma Aldrich D6883-50MG
5'-bromo-2'-deoxiuridine Sigma Aldrich B5002-500MG
Anti-Bromodeoxyuridine-Fluorescein Roche 11202693001
Depilatory cream (e.g., Veet) Veet
Dihydroethidium Sigma Aldrich 37291-25MG
In Vivo imaging system, e.g., IVIS Lumina 2 Perkin Elmer
mALA in the form of topical cream, e.g.,METVIX Crema 160 mg/g Galderma
Power energy meter (e.g., ThorLabs Model PM100D) ThorLabs
Red light source, e.g., 636 nm Aktilite LED lamp Photocure ASA

References

  1. Blázquez-Castro, A. Direct 1O2 optical excitation: A tool for redox biology. Redox Biology. 13, 39-59 (2017).
  2. Valko, M., et al. Free radicals and antioxidants in normal physiological functions and human disease. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 39 (1), 44-84 (2007).
  3. Sena, L. A., Chandel, N. S. Physiological Roles of Mitochondrial Reactive Oxygen Species. Molecular Cell. 48 (2), 158-167 (2012).
  4. Bartosz, G. Reactive oxygen species: Destroyers or messengers. Biochemical Pharmacology. 77 (8), 1303-1315 (2009).
  5. Brieger, K., Schiavone, S., Miller, J., Krause, K. Reactive oxygen species: from health to disease. Swiss Medical Weekly. 142, 13659 (2012).
  6. Speakman, J. R., Selman, C. The free-radical damage theory: Accumulating evidence against a simple link of oxidative stress to ageing and lifespan. BioEssays. 33 (4), 255-259 (2011).
  7. Fernandez, V., Videla, L. A. Biochemical aspects of cellular antioxidant systems. Biological Research. 29 (2), 177-182 (1996).
  8. Matés, J. M., Sánchez-Jiménez, F. Antioxidant enzymes and their implications in pathophysiologic processes. Frontiers in Bioscience. 4, 339-345 (1999).
  9. Bedard, K., Krause, K. -. H. The NOX Family of ROS-Generating NADPH Oxidases: Physiology and Pathophysiology. Physiological Reviews. 87 (1), 245-313 (2007).
  10. Leto, T. L., Morand, S., Hurt, D., Ueyama, T. Targeting and Regulation of Reactive Oxygen Species Generation by Nox Family NADPH Oxidases. Antioxidants & Redox Signaling. 11 (10), 2607-2619 (2009).
  11. Hernández-García, D., Wood, C. D., Castro-Obregón, S., Covarrubias, L. Reactive oxygen species: A radical role in development. Free Radical Biology and Medicine. 49 (2), 130-143 (2010).
  12. Covarrubias, L., Hernández-García, D., Schnabel, D., Salas-Vidal, E., Castro-Obregón, S. Function of reactive oxygen species during animal development: Passive or active. 발생학. 320 (1), 1-11 (2008).
  13. Timme-Laragy, A. R., Hahn, M. E., Hansen, J. M., Rastogi, A., Roy, M. A. Redox stress and signaling during vertebrate embryonic development: Regulation and responses. Seminars in Cell & Developmental Biology. 80, 17-28 (2018).
  14. Owusu-Ansah, E., Banerjee, U. Reactive oxygen species prime Drosophila haematopoietic progenitors for differentiation. Nature. 461 (7263), 537-541 (2009).
  15. Love, N. R., et al. Amputation-induced reactive oxygen species are required for successful Xenopus tadpole tail regeneration. Nature Cell Biology. 15 (2), 222-228 (2013).
  16. Le Belle, J. E., et al. Proliferative Neural Stem Cells Have High Endogenous ROS Levels that Regulate Self-Renewal and Neurogenesis in a PI3K/Akt-Dependant Manner. Cell Stem Cell. 8 (1), 59-71 (2011).
  17. Myant, K. B., et al. production and NF-κB activation triggered by RAC1 facilitate WNT-driven intestinal stem cell proliferation and colorectal cancer initiation. Cell Stem Cell. 12 (6), 761-773 (2013).
  18. Hamanaka, R. B., et al. Mitochondrial Reactive Oxygen Species Promote Epidermal Differentiation and Hair Follicle Development. Science Signaling. 6 (261), 8 (2013).
  19. Carrasco, E., et al. Photoactivation of ROS Production in situ Transiently Activates Cell Proliferation in Mouse Skin and in the hair Follicle Stem Cell Niche Promoting Hair Growth and Wound Healing. Journal of Investigative Dermatology. 135 (11), 1-12 (2015).
  20. Carrasco, E., Blázquez-Castro, A., Calvo, M. I., Juarranz, &. #. 1. 9. 3. ;., Espada, J. Switching on a transient endogenous ROS production in mammalian cells and tissues. Methods. , 109 (2016).
  21. Braun, K. M., et al. Manipulation of stem cell proliferation and lineage commitment: visualisation of label-retaining cells in wholemounts of mouse epidermis. Development. 130 (21), 5241-5255 (2003).
  22. Hsu, Y. -. C., Li, L., Fuchs, E. Emerging interactions between skin stem cells and their niches. Nature Medicine. 20 (8), 847-856 (2014).
  23. Plikus, M. V., et al. Epithelial stem cells and implications for wound repair. Seminars in Cell & Developmental Biology. 23 (9), 946-953 (2012).
check_url/kr/60859?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Espada, J., Carrasco, E., Calvo-Sánchez, M. I., Fernández-Martos, S., Montoya, J. J. Stimulation of Stem Cell Niches and Tissue Regeneration in Mouse Skin by Switchable Protoporphyrin IX-Dependent Photogeneration of Reactive Oxygen Species In Situ. J. Vis. Exp. (159), e60859, doi:10.3791/60859 (2020).

View Video