Summary

מדידות התגובות הפיזיולוגיות של הלחץ בג. אלגיה

Published: May 21, 2020
doi:

Summary

כאן, אנו מאפיינים את התגובות הסלולר מדגיש התגובה התאית ב-נמטודות C. אלגיה על ידי מדידת ההפעלה של כתבים פלורסנט ההמרה ולומר רגישות ללחץ פיזיולוגי.

Abstract

אורגניזמים נחשפים לעתים קרובות לסביבות תנודות ושינויים בהומאוסטזיס תאיים, אשר יכול להיות השפעות מזיקות על פרוטדום ופיזיולוגיה שלהם. כך, האורגניזמים התפתחו ממוקד התגובות לחץ ספציפי מוקדש לתיקון נזק ושמירה על הומאוסטזיס. מנגנונים אלה כוללים את תגובת החלבון המופרש של הרשתית האנדופלזמית (UPRER), תגובת החלבון המופרש של המיטותרפיה (UprMT), תגובת הלם חום (hsr), ואת תגובת הלחץ חמצוני (oxsr). הפרוטוקולים המוצגים כאן מתארים שיטות לגילוי ולאפיון הפעלת מסלולים אלה ואת ההשלכות הפיזיולוגיות שלהם ב nematode, ג. אלגיה. ראשית, השימוש של כתבים מסוימים פלורסנט ההמרה מוגדר לאפיון סלולרי מהיר, הקרנת סמים, או הקרנה גנטית בקנה מידה גדול (למשל, RNAi או ספריות מוטציה). בנוסף, מתוארים הפיזיולוגיה המשלימה והאיתנה, שניתן להשתמש בה ישירות להערכת רגישות של בעלי חיים לגורמי משתמש ספציפיים, המשמשים כאימות פונקציונלי של הכתבים הטרנסקריפטלים. ביחד, שיטות אלה מאפשרות אפיון מהיר של ההשפעות הסלולר והפיסיולוגיים של רטבאליות רעילים פנימיים וחיצוניים.

Introduction

היכולת של אורגניזם להגיב לשינויים בסביבה הפנים והחילוץ היא חיונית להישרדותה וההסתגלות שלה. זה מושגת על רמה תאית דרך מסלולים הגנה רבים המבטיחים את שלמות התא. בעוד רכיבים סלולריים רבים כפופים נזק הקשורים למתח, מעורבות גדולה של תגובות הלחץ הסלולר היא לתקן ולהגן על הומאוסטזיס של פרוטדום הסלולר. עם זאת, ממדר של חלבונים לתוך מבנים מיוחדים, הנקראים אורגלים, מציב אתגר עבור התא, כפי שהוא לא יכול להסתמך על צורה מרכזית אחת של בקרת איכות חלבון כדי להבטיח כי כל החלבונים בתוך התא הם מקופלים ופונקציונלי כראוי. לכן, כדי להתמודד עם רטבאליות החלבונים שלהם, אורגלים התפתחו מנגנוני בקרת איכות ייעודי, אשר יכול לחוש חלבונים מקופלים ולהפעיל תגובת לחץ בניסיון להקל על הלחץ בתוך התא. לדוגמה, הציטוזול מסתמך על תגובת הלם החום (HSR), בעוד הרשתית האנדופלזמית (ER) והמיטותרפיה מסתמכים על התגובות שלהם לתאים החלבון המופרש (UPR). OxSR משמש כדי להקל על ההשפעות הרעילות של מינים חמצן תגובתי (ROS). כל תגובת מתח מופעלת בנוכחות אתגרים סלולריים ועלבונות סביבתיים ומשרה תגובה מותאמת המותאמת. הסימנים של תגובות אלה כוללים סינתזה מולקולות כי לקפל מחדש חלבונים שאינם מקופלים (כגון מלווים) מיועדים ארגונית נכונה, או לחילופין, להסיר חלבונים פגומים על ידי השפלה חלבון. אי הפעלת תגובות אלה לחץ תוצאות הצטברות של חלבונים פגומים, תפקוד הסלולר הופץ כישלון מערכתי של רקמות, ובסופו של דבר מותו של האורגניזם. הפונקציה והרגולציה של תגובות הלחץ השונות נבדקות במקומות אחרים1.

תובנות רבות לגבי הרגולציה והפעילות של התגובות לחץ הסלולר יוחסו nematode, האלגיה של Caenorditis, האורגניזם המודל הרב-תאי במחקר גנטי. מתכונדס לא רק לאפשר ללמוד את הפעלת תגובות הלחץ ברמה התאית, אלא גם ברמה ארגונית; נמטודות שימשו כדי ללמוד את ההשפעות של רטבאליות גנטית או חשיפה סמים ומזהמים על הצמיחה שלהם והישרדות. זמן הדור הזריז שלהם, הקימוט, השקיפות, הדחיפה הגנטית וקלות השימוש במהלך הניסויים, הופכים אותם לאידיאליים למחקרים כאלה. בנוסף, התגובה הפיסיולוגית מהירה יחסית למתח (בין שעות ומספר ימים) והשימור האבולוציוני של מסלולים סלולריים להפוך מכשיר בולט במחקר התנגדות לחץ.

ישנם שני זנים נפוצים E. coli המשמשים כמקור מזון לצמוח C. אלגיה: תקן OP50, מאמץ B שבו רוב הניסויים כבר בוצעה היסטורית2 ו HT115, זן K-12 המשמש כמעט כל ניסויים rnai3,4. חשוב לציין כי ישנם הבדלים משמעותיים בין OP50 ו HT115 בקטריאלי דיאטות. צמיחה על אלה מקורות חיידקיים שונים הוכח לגרום הבדלים עיקריים פרופיל מטבולית, מספר העתק מיטוכונדריאלי עותק DNA, ומספר פנוטיפים עיקריים, כולל תוחלת החיים5. חלק מההבדלים הללו מיוחסים למחסור בויטמין B12 הקשור לגידול בחיידקים OP50, אשר יכולים לגרום לפגמים בהומאוסטזיס מיטוכונדריאלי ורגישות מוגברת לפתוגנים וללחצים. כל פנוטיפים אלה הוכחו להקלה על ידי צמיחה על HT115 חיידקים, אשר יש רמות גבוהות יותר של ויטמין B126. לכן, מומלץ כי כל הניסויים על התגובות הפיזיולוגיות הלחץ להתבצע על HT115 בקטריה, ללא קשר לצורך של תנאי RNAi. עם זאת, בשל הקלות של שמירה על בעלי חיים על OP50, כל הצמיחה הסטנדרטית (כלומר, תחזוקה והגברה של בעלי חיים) ניתן לבצע על OP50, כמו הבדלים משמעותיים התפיסות הנסיוני שתוארו כאן לא זוהו תולעים המתוחזקות ב OP50 כל עוד הם הועברו לסנכרון HT115 post (כלומר, מתוך הצוהר לאחר ה

כאן, אפיון הפעילות של התגובה ללחץ הסלולר באמצעות שתי שיטות פונקציונלי מתואר. יצוין כי הפרוטוקולים המוצגים מתמקדים בעיקר בתגובות לחץ הסלולר השפעתם על הומאוסטזיס חלבון. ראשית, כתבים פלורסנט להמרה מנוצלים, אשר מוסדרים על ידי היזמים גנים אנדוגני המופעלות במיוחד בתגובה ללחצים סלולריים שונים. אלה כתבים פלורסנט מבוסס על אינדוקציה הטרנסקריפטוניים של גנים ספציפיים כי הם חלק ביסודו של תגובת הלחץ. לדוגמה, HSP-4, חלבון בהלם חום האורתוולוגי אל המלווה האנושי HSPA5/BiP, מופעל על המתח ER ומדגיש את המיון כדי להקל על הלחץ. בתנאים של מתח ER (למשל, חשיפה tunicamycin), חלבון פלורסנט ירוק (gfp), הממוקם תחת התקנה של המקדם hsp-4 , הוא מסונתז ברמות גבוהות כפי שניתן להעריך על ידי מיקרוסקופ פלורסנט או כימות באמצעות החלקיקים גדול-חלקיק cy, לנסות של נמטודות7. באופן דומה, היזם של מלווה מיטוכונדריאלי, hsp-6 (אורתוולוגי HSPA9), מנוצל כדי לפקח על ההפעלה של UprMT8, ואת המקדם של המלווה cytosolic hsp-16.2 (אורתוולוגי לגנים האנושיים crystallin alpha) משמש להערכת הפעילות של hsp9. כתבים אלה מאפשרים אפיון מהיר של המסלולים המופעלות בתגובה לרטבאליות שונות.

לעתים קרובות, הכתבים המוצגים כאן הם התמונה באמצעות מיקרוסקופ, אשר מספק פלט איכותי של הפעלת תגובות הלחץ. עם זאת, בעוד טכניקות דימות לספק הן מידע על עוצמת ומיקום הרקמה של הכתבים שתוארו לעיל, הקוונפיקציה שלה לא תמיד מדויק או חזק. אמנם ניתן לכמת הפעלת פלורסנט באמצעות כלי ניתוח הדמיה, שיטות אלה הן תפוקה נמוכה יחסית וגודל המדגם קטן, בשל מספר נמוך יחסית של בעלי חיים הדמיה. הקלות והיכולת להשיג כמויות גדולות של בעלי חיים במהירות לעשות C. אלגיה מערכת המודל האידיאלי כדי לעצב את ההפעלה של כתבים הלחץ פלורסנט דרך השימוש של זרם חלקיקים גדול cytometer. Cytometer זרם גדול חלקיקים מסוגל להקליט, ניתוח, ומיון בהתבסס על גודל וקרינה מחיות חיים רבים. באמצעות שיטה זו, ניתן לקבל את עוצמת הפלורסנט, גודל, וגם מרחבית (2D) מידע עבור אלפי תולעים. המערכת נשלטת באמצעות FlowPilot, אשר מאפשר רכישת נתונים בזמן אמת וניתוח של פרמטרים נמדד. כאן, שיטות עבור הדמיה הן מיקרוסקופיים וניתוח כמותי באמצעות cytometer החלקיקים הגדולים זרימה מוצעים כשיטות למדוד את הפעלת תגובות הלחץ.

מעבר לניתוח העיתונאי, הרגישות או ההתנגדות של בעלי חיים ללחץ ניתן למדוד באמצעות הלחץ הפיזיולוגי שאומר. זה מושגת על ידי חשיפת בעלי חיים לסביבות מלחיצות המפעילות מסלולים ספציפיים לחץ הסלולר. כאן, מספר שיטות מסופקות כדי למדוד רגישות של בעלי חיים שלמים לסוגים מסוימים של לחצים.

מתח ER מוחל על C. אלגיה באמצעות הסוכן הכימי, tunicamycin, אשר חוסם את הגליציציה מקושרת N, גרימת הצטברות של חלבונים מקופלים במיון10. ב -C. אלגיה, הגדילה על החשיפה לטונאיאמיצין גורמת לרטבאליות העיקריים בתפקוד ה-ER, ומפחיתה את תוחלת החיים11באופן משמעותי. על ידי מדידת ההישרדות של בעלי חיים על tunicamycin המכילים צלחות, ER רגישות לחץ של בעלי חיים ניתן לכמת. לדוגמה, בעלי חייםעם אינדוקציה upr חוץ רחמי ובכך התנגדות מוגברת למתח מעוות חלבונים במיון יש הישרדות מוגברת על החשיפה tunicamycin בהשוואה לחיות בר מסוג12.

לחץ חמצוני ומיטוכונדריאלי מיושם על ידי חשיפת בעלי חיים לסוכן הכימי, paraquat. Paraquat היא בשימוש נפוץ בצמחי מעשה, אשר גורמת היווצרות סופראוקסיד במיוחד המיטו,13. בשל הלוקליזציה הספציפי של מינים מסוג חמצן תגובתי (ROS), paraquat בחני משמשים לעתים קרובות בתור “מיטוכונדריאלי” שיטת הסטרס. עם זאת, סופראוקסיד הוא המרה במהירות לתוך תחמוצת מימן על ידי מיטוכונדריזה הסופראוקסיד dismutases (sods)14. מי חמצן יכול לאחר מכן לפזר מתוך המיטוגרם ולגרום ללחץ חמצוני בתאים אחרים של התא. לכן, אנו מתארים paraquat הישרדות בחני כרגישות מדידה הן מיטוכונדריאלי ומתח חמצוני (אחר לחץ חמצוני אחרים ניתן למצוא15).

מאמר התרמוסובלנות מתבצעים באמצעות הצבת בעלי חיים בטמפרטורות גבוהות. טמפרטורת הסביבה לנמטודות הם ~ 15-20 ° c ומתח תרמי מושרה בטמפרטורות מעל 25 ° c16,17. מערכות התרמוסבילות מבוצעות בדרך כלל בטמפרטורות החל מ-30-37 ° c, כאשר בעלי חיים מפגינים פגמים סלולאריים מרכזיים בטמפרטורה זו, ומספר ההישרדות הושלם בתוך 24 שעות16,18. כאן מסופקים שתי שיטות חלופיות לביצוע ביצוע: צמיחה ב34 ° c וצמיחה ב-37 ° c. יחד, הפרוטוקולים המוצגים כאן יכול להיות מנוצל כדי לבצע מסכי בקנה מידה גדול כאשר בשילוב עם הגן הסטנדרטי להפיל באמצעות RNA הפרעות או ספריות תרופות כימיות.

הפרוטוקול יכול להיות מחולק ל -4 הליכים רחבים-צמיחה של C. אלגיה והכנה להדמיה (סעיפים 1 ו-2), הדמיה של כתבים הניתנים להמרה באמצעות מיקרוסקופ פלורסנט (סעיפים 3-5), מדידות כמותית של כתבים באמצעות cytometer זרימה גדולה- חלקיק (סעיף 6), והפיזיולוגיה הפיסיולוגית למדידת רגישות

Protocol

1. תנאי צמיחה סטנדרטיים של טמפרטורות & OP50 vs HT115 צמיחה והרחבה סטנדרטית לגדל תרבות של OP50 ליברות (שולחן 1) או מדיה המקבילה של בחירה עבור 24-48 h בטמפרטורת הסביבה (~ 22-25 ° c). לגדול חיידקים בטמפרטורת החדר כמו OP50 הוא מעין מהפך אורציל ו יש שכיחות גבוהה יותר של הגדלות (למשל, מוטציות מדכא) ?…

Representative Results

שימוש בכתבי ההמרה למדידת הפעלת תגובות הסטרסכאן משמשים כתבים בעלי פלורסנט, המשמשים ככלים חזקים למדידת הפעלת רוב תגובות הסטרס בג. ביטוי GFP מונע תחת המקדם של יעדים קאנוניים של מורים מוכווני הבסיס המעורבים בתגובה ללחצים ספציפיים לחלקה. רשימה מקיפה של כתבים ב…

Discussion

כאן, שיטות לחקור תגובות הלחץ הסלולר ב -C. אלגיה, באמצעות כתבים פלורסנט הישרדות הלחץ הפיזיולוגי ההישרדות הפיזי מתוארים. הכתבים כל לנצל את הביטוי GFP מונע תחת היזם של היעד במורד הזרם החוצה של הגורמים שעתוק המעורבים הרכבה התגובות הסלולר. השימוש hsp-4p:: GFP מאופנן על ידי xbp-1s-תיווך משנה</sup…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

R.BZ. נתמך על ידי המענק לטווח ארוך EMBO והקרן לארי ל. הילבלון. R. H. S נתמך על ידי הענקת 5F32AG032023-02 דרך המכון הלאומי להזדקנות (NIA) וקרן גלן למחקר רפואי פוסט דוקטורט. A.F. נתמך על ידי מענק F32AG051355 דרך NIA. H.K.G. נתמך על ידי גרנט DGE1752814 באמצעות תוכנית המלגות למחקר בוגר קרן המדע הלאומי. M.G.M. נתמך על ידי 1F31AG060660-01 דרך NIA. לאחר הספירה נתמכת על ידי הקרן תומס וסטייסי Siebel, המכון הרפואי הווארד יוז, ו 4R01AG042679-04 ו 5R01AG055891-02 מ NIA, ו 5R01AG055891-09 מ-בארני. אנו מודים ללארי ג’ו, מליסה סנצ’ז, נאיימי קלט ובנאל אסקוויבל לסיוע טכני משמעותי. אנו מודים למעבדת מורימוטו ו-CGC (ממומן על-ידי משרד NIH בתוכנית תשתית מחקר P40 OD010440) עבור זנים.

Materials

Antimycin A Sigma-Aldrich A8674 for mitochondrial stress
Bacto Peptone Fisher Scientific DF0118072 for NGM plates
BD Difco granulated agar VWR 90000-782 for NGM plates
Calcium chloride dihydrate VWR 97061-904 for NGM plates
Carbenicillin BioPioneer C0051-25 for RNAi
Cholesterol Sigma-Aldrich 57-88-5 for NGM plates
COPAS Biosorter Union Biometrica 350-5000-000 equipped with a 488 nm light source.
COPAS Cleaning Solution Union Biometrica 300-5072-000 to use with COPAS
COPAS Sheath Solution Union Biometrica 300-5070-100 to use with COPAS
DMSO Sigma-Aldrich 472301 solvent for drugs
IPTG dioxane free Denville Scientific CI8280-4 for RNAi
LB Broth Miller Fisher Scientific BP1426500 for LB
M205FA stereoscope Leica 10450040 equipped with a Leica DFC3000G monochromatic CCD camera, standard Leica GFP filter (ex 395-455, EM 480 LP), and LAS X software
Magnesium sulfate heptahydrate VWR EM-MX0070-3 for NGM plates, M9
Paraquat Sigma-Aldrich 36541 for oxidative/mitochondrial stress
Potassium Chloride Fisher P217-500 for bleach soluton
Potassium phosphate dibasic VWR EM-PX1570-2 for NGM plates
Potassium phosphate monobasic VWR EM-PX1565-5 for M9
Revolve ECHO 75990-514 equipped with an Olympus 4x Plan Fluorite NA 0.13 objective lens, standard Olympus FITC filter (ex 470/40; em 525/50; DM 560), and an iPad Pro for camera and to drive ECHO software
Sodium Azide Sigma-Aldrich 71289-50G for imaging
Sodium Chloride EMD Millipore SX0420-5 for NGM plates, M9
Sodium phosphate dibasic VWR 71003-472 for M9
Tert-butyl hydroperoxide Sigma-Aldrich 458139 for oxidative stress
Tetracycline hydrochloride Sigma-Aldrich T7660-5G for RNAi
Tunicamycin Sigma-Aldrich T7765-50MG for ER stress

References

  1. Higuchi-Sanabria, R., Frankino, P. A., Paul, J. W., Tronnes, S. U., Dillin, A. A Futile Battle? Protein Quality Control and the Stress of Aging. Developmental Cell. 44 (2), 139-163 (2018).
  2. Brenner, S. The genetics of Caenorhabditis elegans. 유전학. 77 (1), 71-94 (1974).
  3. Rual, J. F., et al. Toward improving Caenorhabditis elegans phenome mapping with an ORFeome-based RNAi library. Genome Research. 14 (10B), 2162-2168 (2004).
  4. Timmons, L., Court, D. L., Fire, A. Ingestion of bacterially expressed dsRNAs can produce specific and potent genetic interference in Caenorhabditis elegans. Gene. 263 (1-2), 103-112 (2001).
  5. Reinke, S. N., Hu, X., Sykes, B. D., Lemire, B. D. Caenorhabditis elegans diet significantly affects metabolic profile, mitochondrial DNA levels, lifespan and brood size. Molecular Genetics and Metabolism. 100 (3), 274-282 (2010).
  6. Revtovich, A. V., Lee, R., Kirienko, N. V. Interplay between mitochondria and diet mediates pathogen and stress resistance in Caenorhabditis elegans. PLOS Genetics. 15 (3), e1008011 (2019).
  7. Calfon, M., et al. IRE1 couples endoplasmic reticulum load to secretory capacity by processing the XBP-1 mRNA. Nature. 415 (6867), 92-96 (2002).
  8. Yoneda, T., Benedetti, C., Urano, F., Clark, S. G., Harding, H. P., Ron, D. Compartment-specific perturbation of protein handling activates genes encoding mitochondrial chaperones. Journal of Cell Science. 117 (Pt 18), 4055-4066 (2004).
  9. Link, C. D., Cypser, J. R., Johnson, C. J., Johnson, T. E. Direct observation of stress response in Caenorhabditis elegans using a reporter transgene. Cell Stress & Chaperones. 4 (4), 235-242 (1999).
  10. Heifetz, A., Keenan, R. W., Elbein, A. D. Mechanism of action of tunicamycin on the UDP-GlcNAc:dolichyl-phosphate Glc-NAc-1-phosphate transferase. 생화학. 18 (11), 2186-2192 (1979).
  11. Struwe, W. B., Hughes, B. L., Osborn, D. W., Boudreau, E. D., Shaw, K. M. D., Warren, C. E. Modeling a congenital disorder of glycosylation type I in C. elegans: a genome-wide RNAi screen for N-glycosylation-dependent loci. Glycobiology. 19 (12), 1554-1562 (2009).
  12. Taylor, R. C., Dillin, A. XBP-1 is a cell-nonautonomous regulator of stress resistance and longevity. Cell. 153 (7), 1435-1447 (2013).
  13. Castello, P. R., Drechsel, D. A., Patel, M. Mitochondria are a major source of paraquat-induced reactive oxygen species production in the brain. The Journal of Biological Chemistry. 282 (19), 14186-14193 (2007).
  14. Oberley, L. W., Buettner, G. R. Role of Superoxide Dismutase in Cancer: A Review. 암 연구학. 39 (4), 1141-1149 (1979).
  15. Senchuk, M. M., Dues, D. J., Van Raamsdonk, J. M. Measuring Oxidative Stress in Caenorhabditis elegans: Paraquat and Juglone Sensitivity Assays. Bio-protocol. 7 (1), (2017).
  16. Lithgow, G. J., White, T. M., Hinerfeld, D. A., Johnson, T. E. Thermotolerance of a long-lived mutant of Caenorhabditis elegans. Journal of Gerontology. 49 (6), B270-B276 (1994).
  17. Labbadia, J., Morimoto, R. I. The Biology of Proteostasis in Aging and Disease. Annual Review of Biochemistry. 84 (1), 435-464 (2015).
  18. Park, H. E. H., Jung, Y., Lee, S. J. V. Survival assays using Caenorhabditis elegans. Molecules and Cells. 40 (2), 90-99 (2017).
  19. Waggoner, L. E., Hardaker, L. A., Golik, S., Schafer, W. R. Effect of a Neuropeptide Gene on Behavioral States in Caenorhabditis elegans Egg-Laying. 유전학. 154 (3), 1181-1192 (2000).
  20. Durieux, J., Wolff, S., Dillin, A. The cell-non-autonomous nature of electron transport chain-mediated longevity. Cell. 144 (1), 79-91 (2011).
  21. Zevian, S. C., Yanowitz, J. L. Methodological Considerations for Heat Shock of the Nematode Caenorhabditis elegans. Methods (San Diego, Calif). 68 (3), 450-457 (2014).
  22. Shen, X., Ellis, R. E., Sakaki, K., Kaufman, R. J. Genetic interactions due to constitutive and inducible gene regulation mediated by the unfolded protein response in C. elegans. PLoS genetics. 1 (3), e37 (2005).
  23. Frakes, A. E., Dillin, A. The UPR(ER): Sensor and Coordinator of Organismal Homeostasis. Molecular Cell. 66 (6), 761-771 (2017).
  24. Martinus, R. D., et al. Selective induction of mitochondrial chaperones in response to loss of the mitochondrial genome. European Journal of Biochemistry. 240 (1), 98-103 (1996).
  25. Nargund, A. M., Pellegrino, M. W., Fiorese, C. J., Baker, B. M., Haynes, C. M. Mitochondrial import efficiency of ATFS-1 regulates mitochondrial UPR activation. Science (New York, N.Y). 337 (6094), 587-590 (2012).
  26. Baker, B. M., Haynes, C. M. Mitochondrial protein quality control during biogenesis and aging. Trends in Biochemical Sciences. 36 (5), 254-261 (2011).
  27. Shore, D. E., Carr, C. E., Ruvkun, G. Induction of Cytoprotective Pathways Is Central to the Extension of Lifespan Conferred by Multiple Longevity Pathways. PLOS Genetics. 8 (7), e1002792 (2012).
  28. Houtkooper, R. H., et al. Mitonuclear protein imbalance as a conserved longevity mechanism. Nature. 497 (7450), 451-457 (2013).
  29. Chiang, S. M., Schellhorn, H. E. Regulators of oxidative stress response genes in Escherichia coli and their functional conservation in bacteria. Archives of Biochemistry and Biophysics. 525 (2), 161-169 (2012).
  30. Blackwell, T. K., Steinbaugh, M. J., Hourihan, J. M., Ewald, C. Y., Isik, M. SKN-1/Nrf, stress responses, and aging in Caenorhabditis elegans. Free Radical Biology & Medicine. 88 (Pt B), 290-301 (2015).
  31. Nguyen, T., Nioi, P., Pickett, C. B. The Nrf2-antioxidant response element signaling pathway and its activation by oxidative stress. The Journal of Biological Chemistry. 284 (20), 13291-13295 (2009).
  32. Lo, J. Y., Spatola, B. N., Curran, S. P. WDR23 regulates NRF2 independently of KEAP1. PLOS Genetics. 13 (4), e1006762 (2017).
  33. Link, C., Johnson, C. Reporter Transgenes for Study of Oxidant Stress in Caenorhabditis elegans. Methods in enzymology. 353, 497-505 (2002).
  34. Choe, K. P., Przybysz, A. J., Strange, K. The WD40 Repeat Protein WDR-23 Functions with the CUL4/DDB1 Ubiquitin Ligase To Regulate Nuclear Abundance and Activity of SKN-1 in Caenorhabditis elegans. Molecular and Cellular Biology. 29 (10), 2704-2715 (2009).
  35. Velazquez, J. M., Lindquist, S. hsp70: nuclear concentration during environmental stress and cytoplasmic storage during recovery. Cell. 36 (3), 655-662 (1984).
  36. Tissières, A., Mitchell, H. K., Tracy, U. M. Protein synthesis in salivary glands of Drosophila melanogaster: relation to chromosome puffs. Journal of Molecular Biology. 84 (3), 389-398 (1974).
  37. Gomez-Pastor, R., Burchfiel, E. T., Thiele, D. J. Regulation of heat shock transcription factors and their roles in physiology and disease. Nature Reviews Molecular Cell Biology. , (2017).
  38. Guisbert, E., Czyz, D. M., Richter, K., McMullen, P. D., Morimoto, R. I. Identification of a tissue-selective heat shock response regulatory network. PLoS genetics. 9 (4), e1003466 (2013).
  39. Hentze, N., Le Breton, L., Wiesner, J., Kempf, G., Mayer, M. P. Molecular mechanism of thermosensory function of human heat shock transcription factor Hsf1. eLife. 5, (2016).
  40. Li, J., Labbadia, J., Morimoto, R. I. Rethinking HSF1 in Stress, Development, and Organismal Health. Trends in Cell Biology. , (2017).
  41. Morley, J. F., Morimoto, R. I. Regulation of longevity in Caenorhabditis elegans by heat shock factor and molecular chaperones. Molecular Biology of the Cell. 15 (2), 657-664 (2004).
  42. Senchuk, M. M., et al. Activation of DAF-16/FOXO by reactive oxygen species contributes to longevity in long-lived mitochondrial mutants in Caenorhabditis elegans. PLoS Genetics. 14 (3), (2018).
  43. Henderson, S. T., Bonafè, M., Johnson, T. E. daf-16 protects the nematode Caenorhabditis elegans during food deprivation. The Journals of Gerontology. Series A, Biological Sciences and Medical Sciences. 61 (5), 444-460 (2006).
  44. Prahlad, V., Cornelius, T., Morimoto, R. I. Regulation of the Cellular Heat Shock Response in Caenorhabditis elegans by Thermosensory Neurons. Science. 320 (5877), 811-814 (2008).
  45. Libina, N., Berman, J. R., Kenyon, C. Tissue-specific activities of C. elegans DAF-16 in the regulation of lifespan. Cell. 115 (4), 489-502 (2003).
  46. Shivers, R. P., Kooistra, T., Chu, S. W., Pagano, D. J., Kim, D. H. Tissue-specific activities of an immune signaling module regulate physiological responses to pathogenic and nutritional bacteria in C. elegans. Cell Host & Microbe. 6 (4), 321-330 (2009).
  47. Kaletsky, R., et al. Transcriptome analysis of adult Caenorhabditis elegans cells reveals tissue-specific gene and isoform expression. PLoS Genetics. 14 (8), (2018).
  48. Glover-Cutter, K. M., Lin, S., Blackwell, T. K. Integration of the Unfolded Protein and Oxidative Stress Responses through SKN-1/Nrf. PLOS Genetics. 9 (9), e1003701 (2013).
  49. Liu, Y., Chang, A. Heat shock response relieves ER stress. The EMBO journal. 27 (7), 1049-1059 (2008).
  50. Stroustrup, N., Ulmschneider, B. E., Nash, Z. M., López-Moyado, I. F., Apfeld, J., Fontana, W. The Caenorhabditis elegans Lifespan Machine. Nature Methods. 10 (7), 665-670 (2013).
  51. Leung, D. T. H., Chu, S. Measurement of Oxidative Stress: Mitochondrial Function Using the Seahorse System. Methods in molecular biology (Clifton, N.J). 1710, 285-293 (2018).
  52. Morton, E. A., Lamitina, T. Caenorhabditis elegans HSF-1 is an essential nuclear protein that forms stress granule-like structures following heat shock. Aging Cell. 12 (1), 112-120 (2013).
  53. Haynes, C. M., Petrova, K., Benedetti, C., Yang, Y., Ron, D. ClpP mediates activation of a mitochondrial unfolded protein response in C. elegans. Developmental Cell. 13 (4), 467-480 (2007).
  54. Kwon, E. S., Narasimhan, S. D., Yen, K., Tissenbaum, H. A. A new DAF-16 isoform regulates longevity. Nature. 466 (7305), 498-502 (2010).
  55. An, J. H., et al. Regulation of the Caenorhabditis elegans oxidative stress defense protein SKN-1 by glycogen synthase kinase-3. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102 (45), 16275-16280 (2005).
  56. Daniele, J. R., Esping, D. J., Garcia, G., Parsons, L. S., Arriaga, E. A., Dillin, A. High-Throughput Characterization of Region-Specific Mitochondrial Function and Morphology. Scientific Reports. 7 (1), 6749 (2017).
  57. Daniele, J. R., et al. A non-canonical arm of UPRER mediates longevity through ER remodeling and lipophagy. bioRxiv. , 471177 (2018).
  58. Xu, N., et al. The FATP1-DGAT2 complex facilitates lipid droplet expansion at the ER-lipid droplet interface. The Journal of Cell Biology. 198 (5), 895-911 (2012).
  59. Baird, N. A., et al. HSF-1-mediated cytoskeletal integrity determines thermotolerance and life span. Science (New York, N.Y.). 346 (6207), 360-363 (2014).
  60. Higuchi-Sanabria, R., et al. Spatial regulation of the actin cytoskeleton by HSF-1 during aging. Molecular Biology of the Cell. 29 (21), 2522-2527 (2018).
check_url/kr/61001?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Bar-Ziv, R., Frakes, A. E., Higuchi-Sanabria, R., Bolas, T., Frankino, P. A., Gildea, H. K., Metcalf, M. G., Dillin, A. Measurements of Physiological Stress Responses in C. Elegans. J. Vis. Exp. (159), e61001, doi:10.3791/61001 (2020).

View Video