Summary

Измерения физиологических стрессовых реакций у C. Elegans

Published: May 21, 2020
doi:

Summary

Здесь мы характеризуем клеточные протеотоксические реакции стресса в нематоде C. elegans путем измерения активации флуоресцентных транскрипционных репортеров и просказа чувствительности к физиологическому стрессу.

Abstract

Организмы часто подвергаются колебаниям среды и изменения внутриклеточного гомеостаза, которые могут иметь пагубные последствия для их протеома и физиологии. Таким образом, организмы развивались целенаправленные и конкретные реакции стресса, посвященный ремонту повреждений и поддерживать гомеостаз. Эти механизмы включают в себя развернутую реакцию белка эндоплазмического ретикулума (UPRER),развернутую белковую реакцию митохондрий (UPRMT),реакцию теплового шока (HSR) и окислительную реакцию стресса (OxSR). Представленные здесь протоколы описывают методы обнаружения и характеристики активации этих путей и их физиологических последствий в нематоде, C. elegans. Во-первых, использование флуоресцентных транскрипционных репортеров, специфичных для использования в пути, описывается для быстрой клеточной характеристики, скрининга наркотиков или крупномасштабного генетического скрининга (например, библиотеки РНК или мутантов). Кроме того, описаны дополнительные, надежные физиологические анализы, которые могут быть использованы для непосредственной оценки чувствительности животных к конкретным стрессорам, служа функциональной проверкой транскрипционных репортеров. Вместе эти методы позволяют быстро охарактеризовать клеточные и физиологические эффекты внутренних и внешних протеотоксических возмущений.

Introduction

Способность организма реагировать на изменения внутри- и внеклеточной среды имеет решающее значение для его выживания и адаптации. Это достигается на клеточном уровне через многочисленные защитные пути, которые обеспечивают целостность клетки. В то время как многочисленные клеточные компоненты подвержены стресс-ассоциированных повреждений, одним из основных участие клеточных реакций стресса является ремонт и защита гомеостаза клеточного протеома. Тем не менее, разобщенство белков в специальные структуры, называемые органеллами, представляет собой проблему для клетки, так как она не может полагаться на одну централизованную форму контроля качества белка, чтобы гарантировать, что все белки в клетке правильно сложены и функциональны. Поэтому, чтобы справиться с возмущениями к их белкам, органеллы развили специальные механизмы контроля качества, которые могут чувствовать неправильно сложенные белки и активировать стресс ответ в попытке облегчить стресс в этом отсеке. Например, цитозол опирается на реакцию теплового шока (HSR), в то время как эндоплазмический ретикулум (ER) и митохондрии полагаются на их отсек конкретных развернутых белковых реакций (UPR). OxSR служит для облегчения токсического воздействия реактивных видов кислорода (ROS). Каждый стресс ответ вызывается в присутствии сотовых проблем и экологических оскорблений и вызывает индивидуальный транскрипционный ответ. Отличительными чертами этих ответов являются синтез молекулы, которые повторно складываются неправильно сложенные белки (например, сопровождающие), предназначенные для надлежащей органеллы, или же, удалить поврежденные белки путем деградации белка. Неспособность активировать эти стрессовые реакции приводит к накоплению поврежденных белков, клеточной дисфункции, распространяемых на системный отказ тканей, и в конечном итоге смерти организма. Функция и регулирование различных ответов на стресс рассматриваются в другом месте1.

Многие идеи в отношении регулирования и активности клеточных реакций стресса были отнесены к нематод, Caenorhabditis elegans, многоклеточной модели организма в генетических исследованиях. Нематоды позволяют изучать активацию стрессовых реакций не только на клеточном уровне, но и на уровне организма; нематод были использованы для изучения влияния генетических возмущений или воздействия наркотиков и загрязняющих веществ на их рост и выживание. Их быстрое время генерации, изогенность, прозрачность, генетическая уступчивость и простота использования во время экспериментов делают их идеальными для таких исследований. Кроме того, относительно быстрая физиологическая реакция на стресс (между часами и несколькими днями) и эволюционное сохранение клеточных путей делают нематоды выдающимся инструментом в изучении стрессоустойчивости.

Есть два широко используемых штаммов кишечной палочки, используемых в качестве источника пищи для выращивания C. elegans: стандартный OP50, штамм B, в котором большинство экспериментов было исторически выполнено2 и HT115, штамм K-12, который используется почти для всех экспериментов РНК3,4. Важно отметить, что существуют значительные различия между OP50 и HT115 бактериальных диет. Рост на этих различных бактериальных источников было показано, что причиной серьезных различий в метаболических профиля, митохондриальной КОПИи днк номер, и несколько основных фенотипов, в том числе продолжительность жизни5. Некоторые из этих различий объясняются дефицитом витамина В12, связанным с ростом бактерий OP50, что может привести к дефектам митохондриального гомеостаза и повышенной чувствительности к патогенам и стрессам. Все эти фенотипы, как было показано, были смягчены ростом на HT115 бактерий, которые имеют более высокий уровень витамина B126. Поэтому рекомендуется проводить все эксперименты по физиологическим стрессовым реакциям на бактериях HT115, независимо от необходимости РНК. Однако, из-за простоты поддержания животных на OP50, весь стандартный рост (т.е. обслуживание и усиление животных) может быть выполнен на OP50, так как значительные различия в экспериментальных парадигмах, описанных здесь, не были обнаружены у червей, поддерживаемых на OP50 до тех пор, пока они не были перенесены на HT115 пост синхронизации (т.е. от люка после отбеливания с или не-ареста).

Здесь описана характеристика активности клеточных стрессовых реакций с использованием двух функциональных методов. Следует отметить, что представленные протоколы в первую очередь ориентированы на клеточные реакции стресса и их влияние на белок гомеостаза. Во-первых, используются флуоресцентные транскрипционные репортеры, которые регулируются эндогенными генными промоутерами, которые специально активируются в ответ на различные клеточные стрессы. Эти флуоресцентные транскрипционные репортеры основаны на транскрипционной индукции конкретных генов, которые являются родным и частью реакции на стресс. Например, HSP-4, белок теплового шока orthologous для человека сопровождающего HSPA5/BiP, активируется на ER-стресс и локализуется в ER, чтобы облегчить стресс. В условиях стресса ER (например, воздействие туникамицина), зеленый флуоресцентный белок (GFP), помещенный под регулирование hsp-4 промотор, синтезируется в высоких уровнях, как может быть оцененфлоесцентной микроскопии или количественно измеряется с помощью крупночастицного потока цитометрии нематод7. Аналогичным образом, промоутер митохондриального сопровождающего, hsp-6 (ортологос для млекопитающих HSPA9), используется для мониторинга активации UPRMT8, и промоутер цитосоликического сопровождающего hsp-16.2 (ортолологос того к кристаллическому альфа-генам человека) используется для оценки активности HSR9. Эти репортеры позволяют быстро охарактеризовать пути, активированные в ответ на различные возмущения.

Часто представленные здесь репортеры изображены с помощью микроскопии, которая обеспечивает качественный выход активации стрессовых реакций. Однако, хотя методы визуализации предоставляют как информацию об интенсивности, так и местонахождении тканей репортеров, описанных выше, ее количественная оценка не всегда является точной или надежной. Хотя можно количественно флуоресцентной активации с помощью инструментов анализа изображений, эти методы являются относительно низкой пропускной всей и размер выборки невелик, из-за относительно низкого числа животных изображения. Легкость и способность получать большое количество животных быстро делают C. elegans идеальной модельной системой для того чтобы рассказать активацию флуоресцентных репортеров усилия через использование цитометра потока больших частиц. Цитометр потока больших частиц способен регистрировать, анализировать и сортировать на основе размера и флуоресценции от многих живых животных. Используя этот метод, можно получить флуоресцентную интенсивность, размер, а также пространственную (2D) информацию для тысяч червей. Система управляется с помощью FlowPilot, что позволяет в режиме реального времени получать и анализировать измеренные параметры. Здесь в качестве методов измерения активации стрессовых реакций предлагаются методы как микроскопической визуализации, так и количественного анализа с использованием цитметра потока больших частиц.

Помимо анализа репортера, чувствительность или устойчивость животных к стрессу может быть измерена с помощью физиологических анализов стресса. Это достигается путем воздействия животных на стрессовых средах, которые активируют конкретные клеточные пути стресса. Здесь предусмотрено несколько методов измерения чувствительности целых животных к определенным видам стрессоров.

ER стресс применяется к C. elegans с помощью химического агента, туникамицина, который блокирует N-связанных гликозилирования, вызывая накопление неправильно сложенных белков в ER10. В C. elegans, рост при воздействии туникамицина приводит к серьезным возмущениям в функции ER, и значительно сократилась продолжительность жизни11. Путем измерять выживание животных на туникамицин-содержащих плитах, чувствительность усилия ER может быть измерять. Например, животные с внематочной индукцией UPRER и, таким образом, повышенной устойчивостью к воздействию белка неправильно горит в ER, имеют повышенную выживаемость при воздействии туникамицина по сравнению с дикими животнымитипа 12.

Оксидативный и митохондриальный стресс применяется к C. elegans, подвергая животных химическому агенту, параквату. Паракват является широко используемым гербицидом, который вызывает образование супероксида специально в митохондриях13. В связи с конкретной локализацией митохондрий полученных реактивных видов кислорода (ROS), паркватные анализы часто используются в качестве “митохондриального” стресс-анализ. Тем не менее, супероксид быстро преобразуется в перекись водорода митохондриальной супероксид дисмутазы (SODs)14. Перекись водорода может впоследствии диффундии из митохондрий и вызвать окислительный стресс в других отсеках клетки. Таким образом, мы описываем паракват выживания анализы как измерение чувствительности как к митохондриальной и окислительного стресса (другие окислительные стрессы анализы можно найти15).

Термотерпимость анализы выполняются в C. elegans путем размещения животных в повышенной температуре. Температура нематод температуры нематод составляет 15-20 градусов по Цельсию, а тепловой стресс индуцируется при температурах выше 25 градусов по Цельсию16,17. Термотерпимость анализы, как правило, выполняются при температурах, начиная от 30-37 градусов по Цельсию, как животные проявляют основные клеточные дефекты при такой температуре, и выживание анализы завершены в течение 24 часов16,18. Здесь предусмотрены два альтернативных метода для проведения термопереносимости анализов: рост при 34 градусах Цельсия и рост при 37 градусах Цельсия. Вместе, протоколы, представленные здесь могут быть использованы для выполнения крупномасштабных экранов в сочетании со стандартным геном нокдаун с помощью РНК-помех или химических библиотек наркотиков.

Протокол может быть разбит на 4 широкие процедуры – рост C. elegans и подготовка к визуализации (разделы 1 и 2), визуализация транскрипционных репортеров с использованием флуоресцентной микроскопии (раздел 3-5), количественные измерения репортеров с использованием китометра потока больших частиц (раздел 6), и физиологические анализы для измерения чувствительности к стрессу в C. elegans (раздел 7).

Protocol

1. Стандартные условия роста температур ы и OP50 против HT115 Стандартный рост и расширение Выращивайте культуру OP50 в LB(таблица 1)или эквивалентные носители выбора для 24-48 ч при температуре окружающей среды (22-25 градусов по Цельсию). Выращивайте бактерии при комнатной темпе…

Representative Results

Использование транскрипционных репортеров для измерения активации стрессовых реакцийЗдесь используются флуоресцентные транскрипционные репортеры, которые служат надежными инструментами для измерения активации большинства стрессовых реакций в C. elega…

Discussion

Здесь описаны методы для изучения клеточных реакций стресса в C. elegans,с помощью флуоресцентных транскрипционных репортеров и физиологических анализов выживания стресса. Репортеры все используют выражение GFP приводом под промоутер вниз по течению транскрипционной цели транскрипц…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

R.BZ. поддерживается EMBO долгосрочной стипендий и Ларри Л. Hillblom фонда. R.H.S поддерживается грантом 5F32AG032023-02 через Национальный институт старения (NIA) и Фонд Гленн для медицинских исследований постдокторской стипендий. A.F. поддерживается грантом F32AG051355 через NIA. H.K.G. поддерживается грантом DGE1752814 в рамках Программы стипендий для аспирантов Национального научного фонда. M.G.M. поддерживается 1F31AG060660-01 через NIA. A.D. поддерживается Фондом Томаса и Стейси Зибеля, Медицинским институтом Говарда Хьюза и 4R01AG042679-04 и 5R01AG05891-02 от NIA и 5R01ES021667-09 от NIEHS. Мы благодарим Ларри Джо, Мелиссу Санчес, Нааме Келет и Анэла Эскивеля за значительную техническую помощь. Мы благодарим лабораторию Моримото и CGC (финансируется NIH Office исследовательской инфраструктуры программы P40 OD010440) для штаммов.

Materials

Antimycin A Sigma-Aldrich A8674 for mitochondrial stress
Bacto Peptone Fisher Scientific DF0118072 for NGM plates
BD Difco granulated agar VWR 90000-782 for NGM plates
Calcium chloride dihydrate VWR 97061-904 for NGM plates
Carbenicillin BioPioneer C0051-25 for RNAi
Cholesterol Sigma-Aldrich 57-88-5 for NGM plates
COPAS Biosorter Union Biometrica 350-5000-000 equipped with a 488 nm light source.
COPAS Cleaning Solution Union Biometrica 300-5072-000 to use with COPAS
COPAS Sheath Solution Union Biometrica 300-5070-100 to use with COPAS
DMSO Sigma-Aldrich 472301 solvent for drugs
IPTG dioxane free Denville Scientific CI8280-4 for RNAi
LB Broth Miller Fisher Scientific BP1426500 for LB
M205FA stereoscope Leica 10450040 equipped with a Leica DFC3000G monochromatic CCD camera, standard Leica GFP filter (ex 395-455, EM 480 LP), and LAS X software
Magnesium sulfate heptahydrate VWR EM-MX0070-3 for NGM plates, M9
Paraquat Sigma-Aldrich 36541 for oxidative/mitochondrial stress
Potassium Chloride Fisher P217-500 for bleach soluton
Potassium phosphate dibasic VWR EM-PX1570-2 for NGM plates
Potassium phosphate monobasic VWR EM-PX1565-5 for M9
Revolve ECHO 75990-514 equipped with an Olympus 4x Plan Fluorite NA 0.13 objective lens, standard Olympus FITC filter (ex 470/40; em 525/50; DM 560), and an iPad Pro for camera and to drive ECHO software
Sodium Azide Sigma-Aldrich 71289-50G for imaging
Sodium Chloride EMD Millipore SX0420-5 for NGM plates, M9
Sodium phosphate dibasic VWR 71003-472 for M9
Tert-butyl hydroperoxide Sigma-Aldrich 458139 for oxidative stress
Tetracycline hydrochloride Sigma-Aldrich T7660-5G for RNAi
Tunicamycin Sigma-Aldrich T7765-50MG for ER stress

References

  1. Higuchi-Sanabria, R., Frankino, P. A., Paul, J. W., Tronnes, S. U., Dillin, A. A Futile Battle? Protein Quality Control and the Stress of Aging. Developmental Cell. 44 (2), 139-163 (2018).
  2. Brenner, S. The genetics of Caenorhabditis elegans. 유전학. 77 (1), 71-94 (1974).
  3. Rual, J. F., et al. Toward improving Caenorhabditis elegans phenome mapping with an ORFeome-based RNAi library. Genome Research. 14 (10B), 2162-2168 (2004).
  4. Timmons, L., Court, D. L., Fire, A. Ingestion of bacterially expressed dsRNAs can produce specific and potent genetic interference in Caenorhabditis elegans. Gene. 263 (1-2), 103-112 (2001).
  5. Reinke, S. N., Hu, X., Sykes, B. D., Lemire, B. D. Caenorhabditis elegans diet significantly affects metabolic profile, mitochondrial DNA levels, lifespan and brood size. Molecular Genetics and Metabolism. 100 (3), 274-282 (2010).
  6. Revtovich, A. V., Lee, R., Kirienko, N. V. Interplay between mitochondria and diet mediates pathogen and stress resistance in Caenorhabditis elegans. PLOS Genetics. 15 (3), e1008011 (2019).
  7. Calfon, M., et al. IRE1 couples endoplasmic reticulum load to secretory capacity by processing the XBP-1 mRNA. Nature. 415 (6867), 92-96 (2002).
  8. Yoneda, T., Benedetti, C., Urano, F., Clark, S. G., Harding, H. P., Ron, D. Compartment-specific perturbation of protein handling activates genes encoding mitochondrial chaperones. Journal of Cell Science. 117 (Pt 18), 4055-4066 (2004).
  9. Link, C. D., Cypser, J. R., Johnson, C. J., Johnson, T. E. Direct observation of stress response in Caenorhabditis elegans using a reporter transgene. Cell Stress & Chaperones. 4 (4), 235-242 (1999).
  10. Heifetz, A., Keenan, R. W., Elbein, A. D. Mechanism of action of tunicamycin on the UDP-GlcNAc:dolichyl-phosphate Glc-NAc-1-phosphate transferase. 생화학. 18 (11), 2186-2192 (1979).
  11. Struwe, W. B., Hughes, B. L., Osborn, D. W., Boudreau, E. D., Shaw, K. M. D., Warren, C. E. Modeling a congenital disorder of glycosylation type I in C. elegans: a genome-wide RNAi screen for N-glycosylation-dependent loci. Glycobiology. 19 (12), 1554-1562 (2009).
  12. Taylor, R. C., Dillin, A. XBP-1 is a cell-nonautonomous regulator of stress resistance and longevity. Cell. 153 (7), 1435-1447 (2013).
  13. Castello, P. R., Drechsel, D. A., Patel, M. Mitochondria are a major source of paraquat-induced reactive oxygen species production in the brain. The Journal of Biological Chemistry. 282 (19), 14186-14193 (2007).
  14. Oberley, L. W., Buettner, G. R. Role of Superoxide Dismutase in Cancer: A Review. 암 연구학. 39 (4), 1141-1149 (1979).
  15. Senchuk, M. M., Dues, D. J., Van Raamsdonk, J. M. Measuring Oxidative Stress in Caenorhabditis elegans: Paraquat and Juglone Sensitivity Assays. Bio-protocol. 7 (1), (2017).
  16. Lithgow, G. J., White, T. M., Hinerfeld, D. A., Johnson, T. E. Thermotolerance of a long-lived mutant of Caenorhabditis elegans. Journal of Gerontology. 49 (6), B270-B276 (1994).
  17. Labbadia, J., Morimoto, R. I. The Biology of Proteostasis in Aging and Disease. Annual Review of Biochemistry. 84 (1), 435-464 (2015).
  18. Park, H. E. H., Jung, Y., Lee, S. J. V. Survival assays using Caenorhabditis elegans. Molecules and Cells. 40 (2), 90-99 (2017).
  19. Waggoner, L. E., Hardaker, L. A., Golik, S., Schafer, W. R. Effect of a Neuropeptide Gene on Behavioral States in Caenorhabditis elegans Egg-Laying. 유전학. 154 (3), 1181-1192 (2000).
  20. Durieux, J., Wolff, S., Dillin, A. The cell-non-autonomous nature of electron transport chain-mediated longevity. Cell. 144 (1), 79-91 (2011).
  21. Zevian, S. C., Yanowitz, J. L. Methodological Considerations for Heat Shock of the Nematode Caenorhabditis elegans. Methods (San Diego, Calif). 68 (3), 450-457 (2014).
  22. Shen, X., Ellis, R. E., Sakaki, K., Kaufman, R. J. Genetic interactions due to constitutive and inducible gene regulation mediated by the unfolded protein response in C. elegans. PLoS genetics. 1 (3), e37 (2005).
  23. Frakes, A. E., Dillin, A. The UPR(ER): Sensor and Coordinator of Organismal Homeostasis. Molecular Cell. 66 (6), 761-771 (2017).
  24. Martinus, R. D., et al. Selective induction of mitochondrial chaperones in response to loss of the mitochondrial genome. European Journal of Biochemistry. 240 (1), 98-103 (1996).
  25. Nargund, A. M., Pellegrino, M. W., Fiorese, C. J., Baker, B. M., Haynes, C. M. Mitochondrial import efficiency of ATFS-1 regulates mitochondrial UPR activation. Science (New York, N.Y). 337 (6094), 587-590 (2012).
  26. Baker, B. M., Haynes, C. M. Mitochondrial protein quality control during biogenesis and aging. Trends in Biochemical Sciences. 36 (5), 254-261 (2011).
  27. Shore, D. E., Carr, C. E., Ruvkun, G. Induction of Cytoprotective Pathways Is Central to the Extension of Lifespan Conferred by Multiple Longevity Pathways. PLOS Genetics. 8 (7), e1002792 (2012).
  28. Houtkooper, R. H., et al. Mitonuclear protein imbalance as a conserved longevity mechanism. Nature. 497 (7450), 451-457 (2013).
  29. Chiang, S. M., Schellhorn, H. E. Regulators of oxidative stress response genes in Escherichia coli and their functional conservation in bacteria. Archives of Biochemistry and Biophysics. 525 (2), 161-169 (2012).
  30. Blackwell, T. K., Steinbaugh, M. J., Hourihan, J. M., Ewald, C. Y., Isik, M. SKN-1/Nrf, stress responses, and aging in Caenorhabditis elegans. Free Radical Biology & Medicine. 88 (Pt B), 290-301 (2015).
  31. Nguyen, T., Nioi, P., Pickett, C. B. The Nrf2-antioxidant response element signaling pathway and its activation by oxidative stress. The Journal of Biological Chemistry. 284 (20), 13291-13295 (2009).
  32. Lo, J. Y., Spatola, B. N., Curran, S. P. WDR23 regulates NRF2 independently of KEAP1. PLOS Genetics. 13 (4), e1006762 (2017).
  33. Link, C., Johnson, C. Reporter Transgenes for Study of Oxidant Stress in Caenorhabditis elegans. Methods in enzymology. 353, 497-505 (2002).
  34. Choe, K. P., Przybysz, A. J., Strange, K. The WD40 Repeat Protein WDR-23 Functions with the CUL4/DDB1 Ubiquitin Ligase To Regulate Nuclear Abundance and Activity of SKN-1 in Caenorhabditis elegans. Molecular and Cellular Biology. 29 (10), 2704-2715 (2009).
  35. Velazquez, J. M., Lindquist, S. hsp70: nuclear concentration during environmental stress and cytoplasmic storage during recovery. Cell. 36 (3), 655-662 (1984).
  36. Tissières, A., Mitchell, H. K., Tracy, U. M. Protein synthesis in salivary glands of Drosophila melanogaster: relation to chromosome puffs. Journal of Molecular Biology. 84 (3), 389-398 (1974).
  37. Gomez-Pastor, R., Burchfiel, E. T., Thiele, D. J. Regulation of heat shock transcription factors and their roles in physiology and disease. Nature Reviews Molecular Cell Biology. , (2017).
  38. Guisbert, E., Czyz, D. M., Richter, K., McMullen, P. D., Morimoto, R. I. Identification of a tissue-selective heat shock response regulatory network. PLoS genetics. 9 (4), e1003466 (2013).
  39. Hentze, N., Le Breton, L., Wiesner, J., Kempf, G., Mayer, M. P. Molecular mechanism of thermosensory function of human heat shock transcription factor Hsf1. eLife. 5, (2016).
  40. Li, J., Labbadia, J., Morimoto, R. I. Rethinking HSF1 in Stress, Development, and Organismal Health. Trends in Cell Biology. , (2017).
  41. Morley, J. F., Morimoto, R. I. Regulation of longevity in Caenorhabditis elegans by heat shock factor and molecular chaperones. Molecular Biology of the Cell. 15 (2), 657-664 (2004).
  42. Senchuk, M. M., et al. Activation of DAF-16/FOXO by reactive oxygen species contributes to longevity in long-lived mitochondrial mutants in Caenorhabditis elegans. PLoS Genetics. 14 (3), (2018).
  43. Henderson, S. T., Bonafè, M., Johnson, T. E. daf-16 protects the nematode Caenorhabditis elegans during food deprivation. The Journals of Gerontology. Series A, Biological Sciences and Medical Sciences. 61 (5), 444-460 (2006).
  44. Prahlad, V., Cornelius, T., Morimoto, R. I. Regulation of the Cellular Heat Shock Response in Caenorhabditis elegans by Thermosensory Neurons. Science. 320 (5877), 811-814 (2008).
  45. Libina, N., Berman, J. R., Kenyon, C. Tissue-specific activities of C. elegans DAF-16 in the regulation of lifespan. Cell. 115 (4), 489-502 (2003).
  46. Shivers, R. P., Kooistra, T., Chu, S. W., Pagano, D. J., Kim, D. H. Tissue-specific activities of an immune signaling module regulate physiological responses to pathogenic and nutritional bacteria in C. elegans. Cell Host & Microbe. 6 (4), 321-330 (2009).
  47. Kaletsky, R., et al. Transcriptome analysis of adult Caenorhabditis elegans cells reveals tissue-specific gene and isoform expression. PLoS Genetics. 14 (8), (2018).
  48. Glover-Cutter, K. M., Lin, S., Blackwell, T. K. Integration of the Unfolded Protein and Oxidative Stress Responses through SKN-1/Nrf. PLOS Genetics. 9 (9), e1003701 (2013).
  49. Liu, Y., Chang, A. Heat shock response relieves ER stress. The EMBO journal. 27 (7), 1049-1059 (2008).
  50. Stroustrup, N., Ulmschneider, B. E., Nash, Z. M., López-Moyado, I. F., Apfeld, J., Fontana, W. The Caenorhabditis elegans Lifespan Machine. Nature Methods. 10 (7), 665-670 (2013).
  51. Leung, D. T. H., Chu, S. Measurement of Oxidative Stress: Mitochondrial Function Using the Seahorse System. Methods in molecular biology (Clifton, N.J). 1710, 285-293 (2018).
  52. Morton, E. A., Lamitina, T. Caenorhabditis elegans HSF-1 is an essential nuclear protein that forms stress granule-like structures following heat shock. Aging Cell. 12 (1), 112-120 (2013).
  53. Haynes, C. M., Petrova, K., Benedetti, C., Yang, Y., Ron, D. ClpP mediates activation of a mitochondrial unfolded protein response in C. elegans. Developmental Cell. 13 (4), 467-480 (2007).
  54. Kwon, E. S., Narasimhan, S. D., Yen, K., Tissenbaum, H. A. A new DAF-16 isoform regulates longevity. Nature. 466 (7305), 498-502 (2010).
  55. An, J. H., et al. Regulation of the Caenorhabditis elegans oxidative stress defense protein SKN-1 by glycogen synthase kinase-3. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102 (45), 16275-16280 (2005).
  56. Daniele, J. R., Esping, D. J., Garcia, G., Parsons, L. S., Arriaga, E. A., Dillin, A. High-Throughput Characterization of Region-Specific Mitochondrial Function and Morphology. Scientific Reports. 7 (1), 6749 (2017).
  57. Daniele, J. R., et al. A non-canonical arm of UPRER mediates longevity through ER remodeling and lipophagy. bioRxiv. , 471177 (2018).
  58. Xu, N., et al. The FATP1-DGAT2 complex facilitates lipid droplet expansion at the ER-lipid droplet interface. The Journal of Cell Biology. 198 (5), 895-911 (2012).
  59. Baird, N. A., et al. HSF-1-mediated cytoskeletal integrity determines thermotolerance and life span. Science (New York, N.Y.). 346 (6207), 360-363 (2014).
  60. Higuchi-Sanabria, R., et al. Spatial regulation of the actin cytoskeleton by HSF-1 during aging. Molecular Biology of the Cell. 29 (21), 2522-2527 (2018).
check_url/kr/61001?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Bar-Ziv, R., Frakes, A. E., Higuchi-Sanabria, R., Bolas, T., Frankino, P. A., Gildea, H. K., Metcalf, M. G., Dillin, A. Measurements of Physiological Stress Responses in C. Elegans. J. Vis. Exp. (159), e61001, doi:10.3791/61001 (2020).

View Video