Summary

Aislamiento de núcleos de tejido adiposo para aplicaciones genómicas de una sola célula

Published: June 12, 2020
doi:

Summary

Esta publicación describe un protocolo para el aislamiento de núcleos de adipocitos maduros, purificación por clasificación activada por fluorescencia y transcriptómica a nivel de una sola célula.

Abstract

La grasa marrón y beige son tejidos adiposos especializados que disipan la energía para la termogénesis por UCP1 (Unacoupling Protein-1) y vías independientes. Hasta hace poco, los adipocitos termogénicos se consideraban una población homogénea. Sin embargo, estudios recientes han indicado que hay múltiples subtipos o subpoblaciones que son distintas en el origen del desarrollo, el uso del sustrato y el transcriptoma. A pesar de los avances en la genómica de una sola célula, la descomposición imparcial de los tejidos adiposos en subtipos celulares ha sido difícil debido a la naturaleza frágil de los adipocitos llenos de lípidos. El protocolo presentado fue desarrollado para eludir estos obstáculos mediante el aislamiento efectivo de núcleos únicos del tejido adiposo para aplicaciones posteriores, incluida la secuenciación de ARN. La heterogeneidad celular se puede analizar mediante secuenciación de ARN y análisis bioinformáticos.

Introduction

Los estudios han demostrado que el tejido adiposo marrón (BAT) tiene una capacidad notable para disipar la energía. Existen dos tipos de adipocitos termogénicos con características de desarrollo distintas tanto en roedores como en humanos: adipocitos beige y adipocitos marrones clásicos. Mientras que los adipocitos marrones clásicos se encuentran principalmente en depósitos de BAT interescapulares, los adipocitos beige emergen esporádicamente en el tejido adiposo blanco (WAT) en respuesta a ciertas señales fisiológicas, como la exposición crónica al frío, un proceso conocido como “marrón” o “beiging”. Mediante el uso de imágenes avanzadas, ahora está claro que los seres humanos adultos tienen depósitos sustanciales de UCP1+ BAT, especialmente en la región supraclavicular1,2,3,4. La cantidad de BAT humano adulto se correlaciona inversamente con la adiposidad y puede aumentarse mediante señales externas, como la exposición crónica al frío5,6 o 3-adrenergic receptor agonista7. El gasto de energía mediado por los BAT puede ofrecer un enfoque viable para combatir la obesidad.

Hasta hace poco, los adipocitos termogénicos se han considerado una población homogénea. Sin embargo, los estudios han revelado la existencia de múltiples subtipos o subpoblaciones que son distintas en el origen del desarrollo, el uso del sustrato, y el transcriptoma8,,9,,10. Por ejemplo, recientemente se describió un tipo de adipocitos beige que utiliza preferentemente glucosa para la termogénesis, el adipocitos g-beige,10. La comprensión incompleta de los tipos de células en el tejido adiposo marrón y beige y la falta de marcadores específicos constituyen una barrera crítica para el estudio de sus funciones biológicas.

Los métodos tradicionales para aislar las subpoblaciones de las células se basan en la expresión de sólo unos pocos genes marcadores conocidos. Los avances recientes en la genómica de una sola célula permiten el uso de datos de expresión génica global de células individuales para proporcionar una estimación imparcial del número de subpoblaciones en un tejido. El objetivo final de este protocolo es determinar todos los subtipos de tejido adiposo bajo diversos estímulos termogénicos a una resolución de una sola célula. A diferencia de otros tejidos y tipos celulares, determinar los subtipos celulares del tejido adiposo es un desafío debido a la fragilidad de los adipocitos llenos de lípidos. Este documento introduce un protocolo robusto para aislar núcleos individuales del tejido adiposo para su aplicación posterior a la secuenciación de ARN. Es importante destacar que la literatura reciente que compara la secuenciación de ARN de un solo núcleo (snRNA-seq) y la secuenciación de ARN de una sola célula (scRNA-seq) reveló que el snRNA-seq es comparable al scRNA-seq en la detección de tipos de células, y superior en cobertura celular para un tejido complejo como el cerebro11. Este protocolo combina un método de centrifugación de gradiente de densidad optimizado para tejidos adiposos por Rosen et al.12 con un paso de “limpieza” de núcleos con un clasificador de alta velocidad MoFlo XDP. Como se ve en los resultados representativos, un análisis de 7.500 núcleos individuales del tejido adiposo marrón interescapular del ratón identificó múltiples tipos de células dentro de adipocitos marrones aparentemente homogéneos. En general, este protocolo simple y robusto se puede aplicar para estudiar la organización a nivel de tejido de adipocitos y células residentes en adiposos, la identificación de genes marcadores específicos de subtipos y el fenotipado de desarrollo de ratones noqueantes/transgénicos selectivos de adiposo.

Protocol

El cuidado y la experimentación de animales se realizaron de acuerdo con los procedimientos aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales en el Colegio de Medicina Albert Einstein. 1. Preparación de la digestión tisular y tampones de la lesis Preparar el tampón de digestión tisular. Preparar 1 ml de tampón de digestión por cada gramo de tejido adiposo. Pesar 1,5 U/ml de colagenasa D y 2,4 U/ml disase II y añadir solución salina tampon…

Representative Results

Los núcleos de adipocitos no clasificados contienen desechos y dobletes que crean ruido y un alto fondo en la secuenciación de ARN de una sola célula aguas abajo. La estrategia representativa de la puerta FACS se muestra en la Figura 1. Los núcleos se seleccionaron primero en función de la dispersión hacia delante (FSC) y la dispersión lateral (SSC) (A), y luego, sólo se seleccionaron singlets en función de la combinación de anchura…

Discussion

Se presenta un método sencillo y robusto para aislar núcleos individuales y estudiar la heterogeneidad del tejido adiposo. En comparación con la secuenciación de ARN de tejido entero, este flujo de trabajo ofrece una visión imparcial de la heterogeneidad celular y marcadores específicos de la población. Esto es significativo e innovador para el avance de la biología adipocitos, el metabolismo molecular y la investigación de la obesidad.

Este protocolo está especialmente optimizado pa…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nos gustaría dar las gracias a David Reynolds del núcleo de Genómica Albert Einstein y Jinghang Zhang del Núcleo de Citometría de Flujo por el soporte técnico. Reconocemos el apoyo de los Institutos Nacionales de Salud (NIH) (DK110426) y las Subvenciones Piloto y de Viabilidad del Centro de Investigación de diabetes Einstein-Mount Sinai (DK020541) y del Centro de Investigación de La Obesidad de Nueva York (DK026687) (todos a K.S.). También nos gustaría agradecer a Albert Einstein Cancer Center (CA013330) por el apoyo básico.

Materials

autoMACS Rinsing Solution Miltenyi Biotec 130-091-222 PBS with EDTA; sterile-filtered
BSA Sigma A1595
CaCl2 Sigma 21115
Cell filter 100 μm Corning 431752
Cell filter 40μm Corning 431750
CellTrics (30 μm) Sysmex 04-004-2326
Collagenase D Roche 11088866001
Countess II FL Automated Cell Counter Invitrogen AMQAF1000
DAPI Sigma D9542
Dispase II Roche 4942078001
HEPES Sigma H4034
KCl Fisher P217-3
MACS SmartStrainers (30 µm) Miltenyi Biotec 130-098-458 Stackable filters
MgCl2 Sigma M1028
MoFloXDP Cell Sorter Beckman Coulter ML99030
NP-40 Sigma 74385
Protector RNase Inhibitor Roche 3335402001
Sucrose Fisher S5-3

References

  1. Cypess, A. M., et al. Identification and importance of brown adipose tissue in adult humans. The New England Journal of Medicine. 360 (15), 1509-1517 (2009).
  2. van Marken Lichtenbelt, W. D., et al. Cold-activated brown adipose tissue in healthy men. The New England Journal of Medicine. 360 (15), 1500-1508 (2009).
  3. Virtanen, K. A., et al. Functional brown adipose tissue in healthy adults. The New England Journal of Medicine. 360 (15), 1518-1525 (2009).
  4. Nedergaard, J., Bengtsson, T., Cannon, B. Unexpected evidence for active brown adipose tissue in adult humans. American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. 293 (2), E444-E452 (2007).
  5. Saito, M., et al. High incidence of metabolically active brown adipose tissue in healthy adult humans: effects of cold exposure and adiposity. Diabetes. 58 (7), 1526-1531 (2009).
  6. Yoneshiro, T., et al. Recruited brown adipose tissue as an antiobesity agent in humans. The Journal of Clinical Investigation. 123 (8), 3404-3408 (2013).
  7. Cypess, A. M., et al. Activation of human brown adipose tissue by a β3-adrenergic receptor agonist. Cell Metabolism. 21 (1), 33-38 (2015).
  8. Song, A., et al. Low- and high-thermogenic brown adipocyte subpopulations coexist in murine adipose tissue. The Journal of Clinical Investigation. 130 (1), 247-257 (2020).
  9. Cinti, S., et al. CL316,243 and cold stress induce heterogeneous expression of UCP1 mRNA and protein in rodent brown adipocytes. The Journal of Histochemistry and Cytochemistry: Official Journal of the Histochemistry Society. 50 (1), 21-31 (2002).
  10. Chen, Y., et al. Thermal stress induces glycolytic beige fat formation via a myogenic state. Nature. 565 (7738), 180-185 (2019).
  11. Bakken, T. E., et al. Single-nucleus and single-cell transcriptomes compared in matched cortical cell types. PloS One. 13 (12), e0209648 (2018).
  12. Roh, H. C., et al. Simultaneous Transcriptional and Epigenomic Profiling from Specific Cell Types within Heterogeneous Tissues In Vivo. Cell Reports. 18 (4), 1048-1061 (2017).
  13. Aune, U. L., Ruiz, L., Kajimura, S. Isolation and differentiation of stromal vascular cells to beige/brite cells. Journal of Visualized Experiments. (73), e50191 (2013).
  14. Zheng, G. X. Y., et al. Massively parallel digital transcriptional profiling of single cells. Nature Communications. 8, 14049 (2017).
  15. Pollen, A. A., et al. Low-coverage single-cell mRNA sequencing reveals cellular heterogeneity and activated signaling pathways in developing cerebral cortex. Nature Biotechnology. 32 (10), 1053-1058 (2014).
  16. Hayashi, T., et al. Single-cell full-length total RNA sequencing uncovers dynamics of recursive splicing and enhancer RNAs. Nature Communications. 9 (1), 619 (2018).
  17. Satpathy, A. T., et al. Massively parallel single-cell chromatin landscapes of human immune cell development and intratumoral T cell exhaustion. Nature Biotechnology. 37 (8), 925-936 (2019).
  18. Stoeckius, M., et al. Simultaneous epitope and transcriptome measurement in single cells. Nature Methods. 14 (9), 865-868 (2017).
  19. Peterson, V. M., et al. Multiplexed quantification of proteins and transcripts in single cells. Nature Biotechnology. 35 (10), 936-939 (2017).
  20. Gaublomme, J. T., et al. Nuclei multiplexing with barcoded antibodies for single-nucleus genomics. Nature Communications. 10 (1), 2907 (2019).
check_url/kr/61230?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Benitez, G. J., Shinoda, K. Isolation of Adipose Tissue Nuclei for Single-Cell Genomic Applications. J. Vis. Exp. (160), e61230, doi:10.3791/61230 (2020).

View Video