Summary

Визуализация и анализ поражений всей аорты с масляным красным O-окрашиванием в мышиной модели гиперлипидемии аневризмы

Published: May 02, 2022
doi:

Summary

Этот протокол обеспечивает пошаговую процедуру анализа атеросклеротической нагрузки у мышей. Исследователи могут использовать этот протокол для сравнения обилия, местоположения и размера атеросклеротических поражений у разных животных.

Abstract

Аполипопротеин Е (Apoe) – или низкоплотные липопротеиновые рецепторы (Ldlr) – гиперлипидемические мыши являются двумя наиболее часто используемыми моделями для исследований атеросклероза. Они используются для изучения влияния различных генетических факторов и различных типов клеток на формирование атеросклеротического поражения, а также для проверки разработки новых методов лечения. Выделение, иссечение всей аорты и количественная оценка атеросклеротических поражений, окрашенных Oil Red O, являются основными морфометрическими методами, используемыми для оценки атеросклеротической нагрузки. Целью этого протокола является описание оптимизированного, пошагового хирургического метода рассечения, перфьюзирования-фиксации, выделения, окрашивания, изображения и анализа атеросклеротических поражений у аорты мышей с Oil Red O. Поскольку атеросклеротические поражения могут образовываться в любом месте всего дерева аорты, этот метод окрашивания всей аорты Oil Red O имеет преимущество оценки липидных бляшек во всей аорте и всех ветвях у одной мыши. В дополнение к окрашиванию Oil Red O, свежеизолированная цельная аорта может быть использована для различных экспериментов in vitro и in vivo и изоляции клеток.

Introduction

Ишемическая болезнь сердца, ведущая причина смертности в США, обычно вызвана атеросклерозом, процессом, который приводит к накоплению бляшек внутри артериальных стенок1. Склонные к гиперлипидемии мыши с дефицитом apoe- и Ldlr занимают центральное место в исследованиях атеросклероза и его осложнений и разработке методов лечения2,3,4,5. Количественная оценка атеросклеротических поражений от аорты лица является важным анализом конечных точек для оценки влияния генетических манипуляций на различные типы клеток. Это также помогает изучать новые методы лечения, предназначенные для воздействия на инициацию, прогрессирование и регрессию атеросклеротического заболевания. Атеросклеротические поражения могут образовываться в любом месте аорты и ее ветвей (т.е. брахиоцефальных, сонных и подключичных артерий в грудной клетке, а также почечных, общих подвздошных и бедренных артерий ниже диафрагмы)6. Всесторонняя оценка бремени атеросклероза и соответствующая терапия требуют оценки бремени болезней в разных местах, что часто упускается из виду.

Этот протокол описывает, как выполнить комплексный анализ атеросклеротических поражений, начиная с нераскрытой всей аорты и заканчивая подготовкой лица, на одной мыши. Неоткрытое окрашивание всей аорты Oil Red O позволяет быстро и качественно оценить липидные бляшки во всей аорте и ее ветвях, а подготовка лица обеспечивает количественную оценку распространения атеросклеротического поражения в аорте мыши.

Метод использует 8-недельных мышей с гладкомышечной клеточной специфической делецией TGFβR2 на гиперлипидемическом фоне Apoe-/- (MYH11-CreERT2; Tgfbr2f/f;mT/mGf/f; Апоэ-/-; далее именуемые TGFβR2iSMC-Apoe mice) и пометные apoe-/- контрольные элементы (MYH11-CreERT2;mT/mGf/f; Апоэ-/-; далее именуемые обезьянами Apoe-/-mice). Животные содержатся в течение 16 недель на диете с высоким содержанием холестерина и высоким содержанием жиров (ГХГФД) в качестве материалов исследования7. В конце исследования неоткрытые целые аорты окрашиваются и визуализируются (включая все основные ветви) Oil Red O для качественной оценки липидных бляшек. Аорта разрезается с помощью препарата для лица, и все атеросклеротические поражения визуализируются и количественно оцениваются. Этот протокол может быть использован для изучения развития атеросклеротического поражения в моделях мышей с гиперлипидемией Apoe-/- или Ldlr-/- и распространен на общие приложения сосудистой биологии, связанные с аортой.

Protocol

Мыши mT/mG (инвентарный No 007676) и Apoe-/- (stock No 002052) были приобретены в лаборатории Джексона. Мыши Myh11-CreERT2 были подарком от Стефана Офферманнса (доступны в лаборатории Джексона в качестве запаса No 019079). Tgfbr2fl/fl мышей были получены от Гарольда Л. Мозеса (Университет Вандербил?…

Representative Results

В этом протоколе атеросклеротические поражения у мышей TGFβR2iSMC-Apoe анализировали через 4 месяца на диете ГХГФ7. В дополнение к обширному атеросклерозу, у этих мышей развились как грудные, так и брюшные аневризмы аорты, как сообщалось ранее. По сравнению с мышами Apoe-/-</su…

Discussion

Мыши с дефицитом аполипопротеина Е (Apoe) и рецептора липопротеинов низкой плотности (Ldlr) полезны для изучения развития и лечения атеросклероза. Исследователи могут оценить влияние генетики и терапевтических манипуляций на начало, прогрессирование и регрессию заболеваний, свя…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана, в частности, микрогрантом Объединенного биологического консорциума, предоставленным в рамках гранта NIH P30AR070253 (P.-Y.C.) и HL135582 (M.S.). Мы благодарны Р. Уэбберу и Л. Куну за содержание мышей, использованных в этом исследовании.

Materials

1.5 mL Eppendorf tube DENVILLE C2170
10 mL syringe BD 302995
16% Formaldehyde Polysciences 18814-10
70% ethanol VWR RC2546.70-5 To clean the dissection tools
Black dissection wax CR Scientific C3541
Corn oil Sigma C8267 Solvent for Tamoxifen
DNeasy Blood & Tissue kit QIAGEN 69506 To isolate DNA from mouse ear
Dulbecco’s Phosphate-buffered saline (1X DPBS), pH 7.4 Gibco 14190-144
Fine scissors Fine Science Tools 14059-11 To cut the mouse skin and open the ribcage
Fisherbrand Economy Plain Glass Microscope Slides Fisher Scientific 12-550-A3
High cholesterol high fat diet Research Diets D12108 To induce atherosclerosis
Imaging software National Institutes of Health Image J Aortic lesion quantification
Isopropanol VWR JT9079-5
Kimwipes Fisher Scientific 06-666A To clean the glass microscope slides
McPherson-Vannas Micro Dissecting Spring Scissors ROBOZ RS-5602 To separate the heart and the aorta and to cut open the aorta and aorta branches
Microscope control software Olympus DP Controller For aorta imaging
Minutien pins Fine Science Tools 26002-10
Needle-25G BD 305124
NonWoven Sponge McKesson 94442000
Oil Red O Sigma O-0625 To stain the atherosclerosis lesions
Pall Acrodisc Sterile Syringe Filters with Super Membrane VWR 28143-312 To filter working Oil Red O solution
Spring Scissors Fine Science Tools 15021-15 To dissect and clean the aorta
Statistical software GraphPad Prism 8 Statical analysis
Stereomicroscope Nikon SMZ1000 For aorta dissection
Stereomicroscope Olympus SZX16 For aorta imaging
Tamoxifen Sigma T5648 To induce Cre-loxP recombination
Tissue-Tek O.C.T Compound, Sakura Finetek VWR 25608-930
Tweezer Style 4 Electron Microscopy Sciences 0302-4-PO To cut the mouse skin and open the ribcage
Tweezer Style 5 Electron Microscopy Sciences 0302-5-PO To dissect and clean the aorta

References

  1. Lusis, A. J. Atherosclerosis. Nature. 407, 233-241 (2000).
  2. Emini Veseli, B., et al. Animal models of atherosclerosis. European Journal of Pharmacology. 816, 3-13 (2017).
  3. Plump, A. S., et al. Severe hypercholesterolemia and atherosclerosis in apolipoprotein E-deficient mice created by homologous recombination in ES cells. Cell. 71, 343-353 (1992).
  4. Zhang, S. H., Reddick, R. L., Piedrahita, J. A., Maeda, N. Spontaneous hypercholesterolemia and arterial lesions in mice lacking apolipoprotein E. Science. 258, 468-471 (1992).
  5. Ishibashi, S., et al. Hypercholesterolemia in low density lipoprotein receptor knockout mice and its reversal by adenovirus-mediated gene delivery. Journal of Clinical Investigation. 92, 883-893 (1993).
  6. Nakashima, Y., Plump, A. S., Raines, E. W., Breslow, J. L., Ross, R. ApoE-deficient mice develop lesions of all phases of atherosclerosis throughout the arterial tree. Arteriosclerosis Thrombosis. 14, 133-140 (1994).
  7. Chen, P. Y., et al. Smooth muscle cell reprogramming in aortic aneurysms. Cell Stem Cell. 26, 542-557 (2020).
  8. Andres-Manzano, M. J., Andres, V., Dorado, B. Oil Red O and Hematoxylin and Eosin Staining for Quantification of Atherosclerosis Burden in Mouse Aorta and Aortic Root. Methods in Molecular Biology. 1339, 85-99 (2015).
  9. Chen, P. Y., et al. Endothelial TGF-beta signalling drives vascular inflammation and atherosclerosis. Nature Metabolism. 1, 912-926 (2019).
  10. Mehlem, A., Hagberg, C. E., Muhl, L., Eriksson, U., Falkevall, A. Imaging of neutral lipids by oil red O for analyzing the metabolic status in health and disease. Nature Protocols. 8, 1149-1154 (2013).
  11. Ferruzzi, J., Madziva, D., Caulk, A. W., Tellides, G., Humphrey, J. D. Compromised mechanical homeostasis in arterial aging and associated cardiovascular consequences. Biomechanics and Modeling Mechanobiology. 17, 1281-1295 (2018).

Play Video

Cite This Article
Chen, P., Qin, L., Simons, M. Imaging and Analysis of Oil Red O-Stained Whole Aorta Lesions in an Aneurysm Hyperlipidemia Mouse Model. J. Vis. Exp. (183), e61277, doi:10.3791/61277 (2022).

View Video