Detta protokoll detaljer en facile, en-pot syntes av manganoxid (MnO) nanopartiklar genom termisk nedbrytning av mangan(II) acetylacetonat i närvaro av oleylamine och dibenzyl ether. MnO nanopartiklar har använts i olika tillämpningar inklusive magnetisk resonanstomografi, biosensing, katalys, batterier och avloppsvatten behandling.
För biomedicinska tillämpningar har metalloxidnanopartiklar som järnoxid och manganoxid (MnO), använts som biosensorer och kontrastmedel vid magnetisk resonanstomografi (MRT). Medan järnoxid nanopartiklar ger konstant negativ kontrast på MRI över typiska experimentella tidsramar, genererar MnO omkopplingsbar positiv kontrast på MRI genom upplösning av MnO till Mn2 + vid lågt pH inom cellendosomes att ‘slå PÅ’ MRI kontrast. Detta protokoll beskriver en en-pot syntes av MnO nanopartiklar som bildas av termisk sönderdelning av mangan(II) acetylacetonat i oleylamine och dibenzyl eter. Även om det är enkelt att köra syntesen av MnO-nanopartiklar, kan den initiala experimentella uppställningen vara svår att reproducera om detaljerade instruktioner inte tillhandahålls. Således är glas och slangar församling först grundligt beskrivs för att tillåta andra utredare att enkelt reproducera installationen. Syntesmetoden innehåller en temperaturregulatorn för att uppnå automatiserad och exakt manipulering av den önskade temperaturprofilen, vilket kommer att påverka resulterande nanopartikelstorlek och kemi. Det termiska nedbrytningsprotokollet kan lätt anpassas för att generera andra nanopartiklar av metalloxid (t.ex. järnoxid) och för att inkludera alternativa organiska lösningsmedel och stabilisatorer (t.ex. oljesyra). Dessutom kan förhållandet mellan organiskt lösningsmedel och stabilisator ändras till ytterligare påverkan nanopartikel egenskaper, vilket visas häri. Syntetiserade MnO-nanopartiklar kännetecknas för morfologi, storlek, bulkkomposition och ytsammansättning genom transmissionselektronmikroskopi, röntgendiffraktion respektive Fourier-transform infraröd spektroskopi. Den MnO nanopartiklar syntetiseras genom denna metod kommer att vara hydrofoba och måste ytterligare manipuleras genom ligand utbyte, polymera inkapsling, eller lipid tak för att införliva hydrofila grupper för interaktion med biologiska vätskor och vävnader.
Metalloxid nanopartiklar besitter magnetiska, elektriska, och katalytiska egenskaper, som har tillämpats i bioimaging1,2,3, sensorteknik4,5, katalys6,7,8, energilagring9, och vattenrening10. Inom det biomedicinska fältet har nanopartiklar av järnoxid och nanopartiklar av manganoxid (MnO) bevisat bruk som kontrastmedel vid magnetisk resonanstomografi (MRT)1,2. Järnoxid nanopartiklar producera robust negativ kontrast på T2* MRI och är kraftfulla nog att visualisera enda märkta celler in vivo11,12,13; den negativa MR-signalen kan dock inte moduleras och förblir “ON” under hela varaktigheten av typiska experiment. På grund av endogent järn som finns i levern, benmärg, blod och mjälte, kan den negativa kontrasten som genereras från järnoxid nanopartiklar vara svårt att tolka. MNO nanopartiklar, å andra sidan, är lyhörda för en nedgång i pH. MR-signal för MnO nanopartiklar kan övergå från “OFF” till “ON” när nanopartiklarna är internaliserade inuti målcellens låga pH-endosomer och lysosomer som t ex en cancercell14,15,16,17,18,19. Den positiva kontrasten på T1 MRI produceras från upplösningen av MnO till Mn2 + vid låga pH är omisskännlig och kan förbättra cancer upptäckt specificitet genom att endast belysning upp på målplatsen inom en malign tumör. Kontroll över nanopartikelstorlek, morfologi och sammansättning är avgörande för att uppnå maximal MRI-signal från MnO nanopartiklar. Häri beskriver vi hur man syntetiserar och karakteriserar MnO nanopartiklar med hjälp av termisk nedbrytningsmetod och noterar olika strategier för finjustering av nanopartikelegenskaper genom att förändra variabler i syntesprocessen. Detta protokoll kan enkelt modifieras för att producera andra magnetiska nanopartiklar som järnoxid nanopartiklar.
MnO nanopartiklar har framställts av en mängd olika tekniker inklusive termisk sönderdelning20,21,22,23,24,25, hydro/solvothermal26,27,28,29, exfolining 30,31,32,33,34, permanganates minskning35,36,37,38, och adsorption-oxidation39,40,41,42. Termisk nedbrytning är den mest använda tekniken som innebär upplösning av mangan prekursorer, organiska lösningsmedel, och stabiliserande medel vid höga temperaturer (180 – 360 °C) under förekomst av en inert gasformig atmosfär för att bilda MnO nanopartiklar43. Av alla dessa tekniker är termisk nedbrytning den överlägsna metoden för att generera en mängd olika MnO nanokristaller av ren fas (MnO, Mn3O4 och Mn2O3) med en smal storleksfördelning. Dess mångsidighet markeras genom förmågan att tätt kontrollera nanopartikelstorlek, morfologi och sammansättning genom att ändra reaktionstid44,45,46, temperatur44,47,48,49, typer/förhållanden av reaktanter20,45,47,48,50 och inert gas47,48,4550 används. De viktigaste begränsningarna i denna metod är kravet på höga temperaturer, den syrefria atmosfären, och den hydrofoba beläggningen av de syntetiserade nanopartiklarna, vilket kräver ytterligare modifiering med polymerer, lipider eller andra ligander för att öka lösligheten för biologiska tillämpningar14,51,52,53.
Förutom termisk nedbrytning, hydro/solvothermal metoden är den enda andra teknik som kan producera en mängd olika MnO faser inklusive MnO, Mn3O4, och MnO2; alla andra strategier bildar endast MnO2-produkter. Under hydro/solvothermal syntes, prekursorer som Mn(II) stearate54,55 och Mn(II) acetat27 värms upp till mellan 120-200 °C under flera timmar för att uppnå nanopartiklar med en smal storlek fördelning; dock krävs specialiserade reaktionskärl och reaktioner utförs vid höga tryck. Däremot innebär exfoliering strategin behandling av en skiktad eller bulk material för att främja dissociation i 2D enda skikt. Dess största fördel är att producera MnO2 nanosheets, men syntesprocessen är lång kräver flera dagar och den resulterande storleken på arken är svår att kontrollera. Alternativt kan permanganat som KMnO4 reagera med reduktionsmedel som oljesyra56,57, grafenoxid58 eller poly(allylaminhydroklorid)59 för att skapa MnO2 nanopartiklar. Användning av KMnO4 underlättar nanopartikelbildning vid rumstemperatur under några minuter till timmar inom vattenhaltiga förhållanden43. Tyvärr gör den snabba syntesen och nanopartikeltillväxten det utmanande att finstyra resulterande nanopartikelstorlek. MnO2 nanopartiklar kan också syntetiseras med hjälp av adsorption-oxidation som innebär att Mn2+ joner adsorberas och oxideras till MnO2 av syre under grundläggande förhållanden. Denna metod kommer att producera små MnO2 nanopartiklar med en smal storleksfördelning vid rumstemperatur under flera timmar i vattenhaltiga medier; emellertid villkorar kravet för adsorption av Mn2+ joner och alkali begränsar dess utbredda applikation43.
Av de MnO nanopartikel syntes metoder som diskuteras, termisk sönderdelning är den mest mångsidiga att generera olika monodisperse ren fas nanokristaller med kontroll över nanopartikelstorlek, form och sammansättning utan att kräva specialiserade syntes fartyg. I detta manuskript beskriver vi hur man syntetiseraR MnO-nanopartiklar genom termisk nedbrytning vid 280 °C med hjälp av mangan(II) acetylacetonat (Mn(II) ACAC) som källa till Mn2+ joner, oleylamine (OA) som reduktionsmedel och stabilisator och dibenzyleter (DE) som lösningsmedel under en kväveatmosfär. Glas och slang setup för nanopartikelsyntes förklaras i detalj. En fördel med tekniken är införandet av en temperaturregulator, termoelementsond och värmemanteln för att möjliggöra exakt kontroll över uppvärmningshastigheten, topptemperaturen och reaktionstiderna vid varje temperatur för att finjustera nanopartikelstorlek och sammansättning. Häri visar vi hur nanopartikelstorlek också kan manipuleras genom att ändra förhållandet mellan OA och DE. Dessutom visar vi hur man förbereder nanopartikelprover och mäter nanopartikelstorlek, bulkkomposition och ytsammansättning med hjälp av transmissionselektronmikroskopi (TEM), röntgendiffraktion (XRD) respektive Fourier-transform infraröd spektroskopi (FTIR). Ytterligare vägledning ingår om hur man analyserar de insamlade bilderna och spektra från varje instrument. För att generera enhetligt formade MnO-nanopartiklar måste en stabilisator och ett adekvat kväveflöde finnas; XRD- och TEM-resultat visas för icke-önskvärda produkter som bildas i avsaknad av OA och under lågt kväveflöde. I avsnittet Diskussion belyser vi avgörande steg i protokollet, mätvärden för att bestämma framgångsrik nanopartikelsyntes, ytterligare variation av dekompositionsprotokollet för att modifiera nanopartikelegenskaper (storlek, morfologi och sammansättning), felsökning och begränsningar av metoden samt tillämpningar av MnO-nanopartiklar som kontrastmedel för biomedicinsk avbildning.
Protokollet häri beskriver en facile, one-pot syntes av MnO nanopartiklar med hjälp av Mn(II) ACAC, DE, och OA. Mn(II) ACAC utnyttjas som utgångsmaterialet för att ge en källa till Mn2+ för MnO nanopartikelbildning. Utgångsmaterialet kan enkelt substitueras för att möjliggöra produktion av andra metalloxid nanopartiklar. Till exempel när järn(III) ACAC tillämpas, fe3O4 nanopartiklar kan genereras med hjälp av samma nanopartikel syntes utrustning och protokoll<sup class="xref…
The authors have nothing to disclose.
Detta arbete stöddes av WVU Chemical and Biomedical Engineering Department startup funds (M.F.B.). Författarna vill tacka Dr Marcela Redigolo för vägledning om rutnät förberedelse och bildfångst av nanopartiklar med TEM, Dr Qiang Wang för stöd om utvärdering av XRD och FTIR spektra, Dr John Zondlo och Hunter Snoderly för programmering och integrera temperaturen controller i nanopartikel syntes protokoll, James Hall för hans hjälp i montering av nanopartikelsyntesen setup , Alexander Pueschel och Jenna Vito för medhjälp i kvantifiering av MnO-nanopartikeldiametrar från TEM-bilder, och WVU Shared Research Facility för användning av TEM, XRD och FTIR.
Chemicals and Gases | |||
Benzyl ether (DE) | Acros Organics | AC14840-0010 | Concentration: 99%, 1 L |
Drierite | W. A. Hammond Drierite Co. LTD | 23001 | Drierite 8 mesh, 1 lb |
Ethanol | Decon Laboratories | 2701 | 200 proof, 4 x 3.7 L |
Hexane | Macron Fine Chemicals | 5189-08 | Concentration: ≥98.5%, 4 L |
Hydrochloric acid | VWR | BDH3030-2.5LPC | Concentration: 36.5 – 38.0 % ACS, 2.5 L |
Manganese (II) acetyl acetonate (Mn(II)ACAC) | Sigma Aldrich | 245763-100G | 100 g |
Nitrogen gas tank | Airgas | NI R300 | Research 5.7 grade nitrogen, size 300 cylinder |
Nitrogen regulator | Airgas | Y11244D580-AG | Single stage brass 0-100 psi analytical cylinder regulator CGA-580 with needle outlet |
Oleylamine (OA) | Sigma Aldrich | O7805-500G | Concentration: 70%, technical grade, 500 g |
Silicone oil | Beantown Chemical | 221590-100G | 100 g |
Equipment | |||
Centrifuge | Beckman-Coulter | Avanti J-E | JA-20 fixed-angle aluminum rotor, 8 x 50 mL, 48,400 x g |
Hemisphere mantle | Ace Glass Inc. | 12035-17 | 115 V, 270 W, 500 mL, temperature up to 450 °C |
Hot plate stirrer | VWR | 97042-642 | 120 V, 1000 W, 8.3 A, ceramic top |
Temperature controller | Yokogawa Electric Corporation | UP351 | |
Temperature probe | Omega | KMQXL-040G-12 | Immersion probe, temperature up to 1335 °C |
Vacuum oven | Fisher Scientific | 282A | 120 V, 1800 W, temperature up to 280 °C |
Vortex mixer | Fisher Scientific | 02-215-365 | 120 V, 50/60 Hz, 150 W |
Water bath sonicator | Fisher Scientific | FS30H | Ultrasonic power 130 W, 3.7 L tank |
Tools and Materials | |||
Dumont tweezer | Electron Microscopy Sciences | 72703D | Style 5/45, Dumoxel, 109 mm, for picking up TEM grids |
Dumont reverse tweezer | Ted Pella | 5748 | Style N2a, 118 mm, NM-SS, self-closing, holding TEM grids in place for sample preparation |
Mortar and pestle | Amazon | BS0007 | BIPEE agate mortar and pestle, 70 X 60 X 15 mm labware |
Nalgene™ Oak Ridge tubes | ThermoFisher Scientific | 3139-0050 | Polypropylene copolymer, 50,000 x g, 50 mL, pack of 10 |
Scintillation vials | Fisher Scientific | 03-337-4 | 20 mL vials with white caps, case of 500 |
TEM grids | Ted Pella | 01813-F | Carbon Type-B, 300 mesh, copper, pack of 50 |
Glassware Setup | |||
4-neck round bottom flask | Chemglass Life Sciences | CG-1534-01 | 24/40 joint, 500 mL, #7 chem thread for thermometers |
6-port vacuum manifold | Chemglass Life Sciences | CG-4430-02 | 480 nm, 6 ports, 4 mm PTFE stopcocks |
Adapter | Chemglass Life Sciences | CG-1014-01 | 24/40 inner joint, 90° |
Condenser | Chemglass Life Sciences | CG-1216-03 | 24/40 joint, 365 mm, 250 mm jacket length |
Drierite 26800 drying column | Cole-Parmer | EW-07193-00 | 200 L/hr, 90 psi |
Funnel | Chemglass Life Sciences | CG-1720-L-02 | 24/40 joint, 100 powder funnel, 195 mm OAL |
Interlocked worm gear hose clamp | Grainger | 16P292 | 1/2" wide stainless steel clamp, 3/8" to 7/8" diameter, to secure condenser tubing, 10 pack |
Keck clips | Kemtech America Inc | CS002440 | 24/40 joint |
Metal claw clamp | Fisher Scientific | 05-769-7Q | 22cm, three-prong extension clamps |
Metal claw clamp holder | Fisher Scientific | 05-754Q | Clamp regular holder |
Mineral oil bubbler | Kemtech America Inc | B257040 | 185 mm |
Rotovap trap | Chemglass Life Sciences | CG-1319-02 | 24/40 joints, 100 mL, self washing rotary evaporator |
Rubber stopper | Chemglass Life Sciences | CG-3022-98 | 24/40 joints, red rubber |
Tubing for air/water | McMaster-Carr | 6516T21 | Clear Tygon PVC for air/water, B-44-3, 1/4" ID, 1/16" wall, 25 ft |
Tubing for air/water | McMaster-Carr | 6516T26 | Clear Tygon PVC for air/water, B-44-3, 3/8" ID, 1/16" wall, 25 ft |
Tubing for chemicals | McMaster-Carr | 5155T34 | Clear Tygon PVC for chemicals, E-3603, 3/8" ID, 1/16" wall, 50 ft |
Analysis Programs | |||
XRD analysis program | Malvern Panalytical | N/A | X'Pert HighScore Plus |
FTIR analysis program | Varian, Inc. | N/A | Varian Resolutions Pro |