Summary

Kvæg ovarie cortex vævskultur

Published: January 14, 2021
doi:

Summary

In vitro kultur af kvæg ovarie cortex og effekten af ernæringsmæssige trappe-trin kost på æggestokkene mikromiljø præsenteres. Ovarie cortex stykker blev kultiveret i syv dage og steroider, cytokiner, og follikel faser blev evalueret. Den Stair-Step kost behandling havde øget steroidogenese resulterer i follikel progression i kultur.

Abstract

Follikel udvikling fra ur til antral fase er en dynamisk proces inden for æggestokkene cortex, som omfatter endokrine og parakrine faktorer fra somatiske celler og cumulus celle-oocyt kommunikation. Lidt er kendt om æggestokkene mikromiljø og hvordan kytokiner og steroider produceret i det omgivende miljø påvirke follikel progression eller anholdelse. In vitro kultur æggestokkene cortex gør det muligt follikler til at udvikle sig i et normaliseret miljø, der forbliver understøttet af tilstødende stroma. Vores mål var at bestemme effekten af ernæringsmæssige Stair-Step kost på æggestokkene mikromiljø (follikel udvikling, steroid, og cytokin produktion) gennem in vitro kultur af kvæg ovarie cortex. For at opnå dette blev æggestokkene kortikale stykker fjernet fra kvier, der gennemgår to forskellige ernæringsmæssigt udviklede ordninger før puberteten: Kontrol (traditionel ernæringsudvikling) og Stair-Step (fodring og begrænsning under udvikling), der blev skåret i ca. 0,5-1 mm3 stykker. Disse stykker blev efterfølgende passeret gennem en række vasker og placeret på en vævskulturindsats, der er sat i et godt indeholdende Waymouths kulturmedium. Ovarie cortex blev kultiveret i 7 dage med daglige kulturmedier ændringer. Histologisk sektion blev udført for at bestemme follikel fase ændringer før og efter kulturen til at bestemme virkningerne af ernæring og virkningen af kultur uden yderligere behandling. Cortex kultur medium blev samlet over dage til at måle steroider, steroid metabolitter, og cytokiner. Der var tendenser til øget steroid hormoner i æggestokkene mikromiljø, der tillod follikel progression i Stair-Step versus Control æggestokkene cortex kulturer. Den ovarie cortex kultur teknik giver mulighed for en bedre forståelse af æggestokkene mikromiljø, og hvordan ændringer i endokrine sekretion kan påvirke follikel progression og vækst fra både in vivo og in vitro behandlinger. Denne kultur metode kan også vise sig gavnligt for at teste potentielle terapeutiske, der kan forbedre follikel progression hos kvinder til at fremme fertiliteten.

Introduction

Æggestokken cortex repræsenterer det ydre lag af æggestokken, hvor follikel udvikling forekommer1. Ursække, der oprindeligt blev arresteret under udvikling, vil blive aktiveret til at blive primære, sekundære og derefter antrale eller tertiære follikler baseret på parakrine og gonadotropinin input1,2,3,4. For bedre at forstå fysiologiske processer i æggestokken kan vævskultur bruges som en in vitro-model, hvilket giver mulighed for et kontrolleret miljø til at udføre eksperimenter. Mange undersøgelser har udnyttet æggestokkene væv kultur for forskning i assisteret reproduktiv teknologi, fertilitet bevarelse, og kræft i æggestokkene5,6,7. Ovarievævskultur har også fungeret som model for undersøgelse af reproduktive toksiner, der skader æggestokkenes sundhed og ætiologien af reproduktive lidelser som polycystisk ovarie syndrom (PCOS)8,9,10,11. Således gælder dette kultursystem for en bred vifte af specialiteter.

Hos gnavere er hele foster- eller perinatale gonader blevet anvendt i reproduktive biologiforsøg12,13,14,15. Gonader fra større husdyr kan imidlertid ikke dyrkes som hele organer på grund af deres store størrelse og potentielle degeneration. Derfor skæres kvæg og ikke-human primat ovarie cortex i mindre stykker16,17,18. Mange undersøgelser har kultiveret små ovarie cortex stykker til at studere forskellige vækstfaktor (r) i ursækken indledning i husdyr og ikke-menneskelige primater1,17,18,19. Brugen af ovarie cortexkultur har også vist primordial follikelinitiering i mangel af serum til kvæg og primat kortikale stykker, der er kultiveret i 7 dage20. Yang og Fortune i 2006 behandlet føtal ovarie cortex kultur medium med en række testosteron doser over 10 dage og bemærkede, at 10-7 M koncentrationen af testosteron øget follikel rekruttering, overlevelse, og øget progression af tidlige fase follikler19. I 2007, ved hjælp af æggestokkene cortex kulturer fra kvæg fostre (5-8 måneders svangerskab), Yang og Fortune rapporterede en rolle for Vaskulære Endothelial Growth Factor A (VEGFA) i den primære til sekundære follikel overgang21. Desuden har vores laboratorium udnyttet æggestokkene cortex kulturer til at demonstrere, hvordan VEGFA isoforme (angiogen, antiangiogen, og en kombination) kan regulere forskellige signal transduktion veje gennem Kinase domæne receptor (KDR), som er den vigtigste signal transduktion receptor, VEGFA binder16. Disse oplysninger gav mulighed for en bedre forståelse af, hvordan forskellige VEGFA-isoformer påvirker signalvejene til at fremkalde follikel progression eller anholdelse. Samlet set, dyrkning af æggestokkene cortex stykker in vitro med forskellige steroider eller vækstfaktorer kan være en værdifuld analyse til at bestemme virkningerne på mekanismer, der regulerer folliculogenese. På samme måde kan dyr, der er udviklet på forskellige ernæringsmæssige regimer, have ændret ovariemikrvironments, som kan fremme eller hæmme folliculogenese, der påvirker kvinders reproduktive modenhed. Således er vores mål i det nuværende manuskript at rapportere kvæg cortex kultur teknik og afgøre, om der er forskelle i æggestokkene mikromiljø efter in vitro kultur af kvæg cortex fra kvier fodret enten Control eller Stair-Step kost indsamlet på 13 måneder som beskrevet tidligere16.

Derfor var vores næste skridt at bestemme det æggestokkene mikromiljø i disse kvier, der blev udviklet med forskellige ernæringsmæssige kostvaner. Vi evaluerede æggestokkene cortex fra kvier fodret med enten en Stair-Step eller Control kost. Kontrol kvier blev tilbudt en vedligeholdelse kost på 97,9 g / kg0,75 i 84 dage. Stair-Step-diæten blev indledt efter 8 måneder, der indeholdt en begrænset fodret kost på 67,4 g / kg0,75 i 84 dage. Efter de første 84 dage, mens Control kvier fortsatte med at modtage 97,9 g / kg0,75, blev Stair-Step oksekød kvier tilbudt 118,9 g / kg0,75 i yderligere 68 dage, hvorefter de blev ovariektomi ved 13 måneder16 for at studere ændringer i follikulære stadier og morfologi før og efter kultur. Vi har også analyseret for forskelle i steroider, steroid metabolitter, chemokines, og cytokiner udskilles i cortex medier. Steroider og andre metabolitter blev målt for at afgøre, om der var nogen direkte virkninger fra behandlinger udført in vivo og/eller in vitro på væv levedygtighed og produktivitet. Ændringer i æggestokkene mikromiljø før og efter kultur gav et øjebliksbillede af det endokrine miljø og folliculogenese forud for kultur, og hvordan kultur eller behandling under kultur påvirker follikel progression eller anholdelse.

Æggestokke blev indsamlet efter ovariektomi blev udført på US Meat Animal Research Center (USMARC) i henhold til deres IACUC procedurer fra Control and Stair-Step kvier på 13 måneder afalder 16, rengøres med steril fosfat buffer saltvand (PBS) vasker med 0,1% antibiotika til at fjerne blod og andre forurenende stoffer, trimmet overskydende væv, og transporteres til University of Nebraska-Lincoln (UNL) Reproduktiv fysiologi laboratorium UNL på 37 ° C23 . Ved UNL blev ovarie cortexstykker skåret i små firkantede stykker (~ 0,5-1 mm3; Figur 1) og dyrkes i 7 dage (figur 2). Histologi blev udført på cortex kultur dias før og efter kultur til at bestemme follikler fase16,24 (Figur 3 og Figur 4), og ekstracellulære matrix proteiner, der kan indikere fibrose (Picro-Sirus Red, PSR; Figur 5. Dette gjorde det muligt at fastslå virkningen af in vivo ernæringsmæssige regimer på follikel stadier og tilladt sammenligning af 7 dages ovarie cortex på follikel stadier og follikel progression. Gennem hele kulturen blev mediet indsamlet og ændret dagligt (ca. 70% af medierne blev indsamlet hver dag; 250 μL/brønd), således at enten daglige hormoner/cytokiner/chemokiner kan vurderes eller samles over dage for at opnå gennemsnitlige koncentrationer. Steroider såsom androstenedion (A4) og østrogen (E2) kan samles over 3 dage og vurderes gennem radioimmunoassay (RIA; Figur 6) og samlet over 4 dage pr. dyr og analyseret via højtydende flydende kromatografi-massespektrometri (HPLC-MS)24,25 ( tabel1). Cytokin arrays blev udnyttet til at vurdere cytokin og chemokin koncentrationer i æggestokkene cortex kultur medium26 (tabel 2). Realtid polymerase kædereaktion (RT-PCR) assay plader blev udført for at bestemme genekspression for specifikke signal transduktion veje som påvist tidligere16. Alle steroid, cytokin, follikel fase og histologiske markører giver et øjebliksbillede af æggestokkene mikromiljø og spor om evnen til at mikromiljøet til at fremme “normal” eller “unormal” folliculogenese.

Protocol

Æggestokkene blev fremstillet fra U. S. Meat Animal Research Center16. Som tidligere nævnt16, alle procedurer blev godkendt af U.S. Meat Animal Research Center (USMARC) Animal Care and Use Committee i overensstemmelse med vejledningen for pleje og brug af landbrugsdyr i landbrugsforskning og undervisning. Æggestokkene blev bragt til University of Nebraska-Lincoln Reproduktiv Laboratory, hvor de blev behandlet og kultiveret. 1. Forberedelse af p?…

Representative Results

Denne kvæg cortex kultur procedure kan bruges til at bestemme en bred vifte af hormon, cytokin, og histologi data fra små stykker af æggestokken. Farvning, såsom hæmatoxylin og eosin (H&E), kan bruges til at bestemme ovariemorfologi gennem follikel iscenesættelse16,23,31 ( Figur3). Kort sagt blev follikler klassificeret som ur, som er en oocyt omgivet af et enkelt lag af pladeagtige præ-granu…

Discussion

Fordelen ved in vitro ovarie cortex kultur, som beskrevet i dette manuskript, er, at folliklerne udvikler sig i et normaliseret miljø med tilstødende stroma omkring folliklerne. De somatiske celler og oocyt forbliver intakte, og der er passende celle-til-celle kommunikation som en in vivo-model. Vores laboratorium har konstateret, at en 7-dages kultur system giver repræsentative folliculogenese og steroidogenese data til behandling af æggestokkene cortex. Andre protokoller for ovarievævskultur har enten relativt kor…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskning blev støttet af National Institute of Food and Agriculture 2013-67015-20965 til ASC, University of Nebraska Food for Health Competitive Grants til ASC. Usa’s landbrugsministerium Hatch tilskud NEB26-202/W3112 Tiltrædelse # 1011127 til ASC, Hatch-NEB ANHL Tiltrædelse # 1002234 til ASC. Kvantitativ Life Sciences Initiative Summer Postdoctoral Scholar Support – COVID-19 Award for sommerstøtte til CMS.

Forfatterne vil gerne udvide deres påskønnelse til Dr. Robert Cushman, US Meat Animal Research Center, Clay Center, NE at takke ham for at give æggestokkene i en tidligere publikation, som derefter blev brugt i det nuværende papir som et proof of concept i validering af denne teknik.

Materials

#11 Scapel Blade Swann-Morton  303 Scaple Blade
#21 Scapel Blade Swann-Morton  307 Scaple Blade
500mL Bottle Top Filter Corning 430514 Bottle Top Filter 0.22 µm pore for filtering medium
AbsoluteIDQ Sterol17 Assay Biocrates Sterol17 Kit Samples are sent off to Biocrates and steroid panels are run and results are returned 
Androstenedione Double Antibody RIA Kit MPBio 7109202 RIA to determine androstenedione from culture medium
Belgium A4 Assay Kit  DIA Source  KIP0451 RIA to determine androstenedione from culture medium
Bovine Cytokine Array Q3 RayBiotech QAB-CYT-3-1 Cytokine kit to determine cytokines from culture medium
cellSens Software Standard 1.3 Olympus 7790 Imaging Software
Insulin-Transferrin-Selenium-X Gibco ThermoFisher Scientific 5150056 Addative to the culture medium
Leibovitz's L-15 Medium Gibco ThermoFisher Scientific 4130039 Used for tissue washing on clean bench, and in the biosafety cabniet 
Microscope  Olympus SZX16 Disection microscope used for imaging tissue culture pieces 
Microscope Camera  Olympus DP71 Microscope cameraused for imaging tissue culture pieces 
Millicell Cell Culture Inserts 0.4µm, 12,mm Diameter Millipore Sigma PICM01250 Inserts that allow the tissue to rest against the medium without being submerged in it
Multiwell 24 well plate Falcon 353047 Plate used to hold meduim, inserts, and tissues
Petri dish 60 x 15 mm Falcon 351007 Petri dish used for washing steps prior to culture
Phosphate-Buffered Saline (PBS 1X) Corning 21-040-CV Used for tissue washing
SAS Version 9.3 SAS Institute  9.3 TS1M2 Statistical analysis software 
Thomas Stadie-Riggs Tissue Slicer Thomas Scientific 6727C10 Tissue slicer for preperation of thin uniform sections of fresh tissue
Waymouth MB 752/1 Medium Sigma-Aldrich W1625 Medium used for tissue cultures

References

  1. Braw-Tal, R., Yossefi, S. Studies in vivo and in vitro on the initiation of follicle growth in the bovine ovary. Journal of Reproduction and Fertility. 109, 165-171 (1997).
  2. Nilsson anEdson, M. A., Nagaraja, A. K., Matzuk, M. M. The mammalian ovary from genesis to revelation. Endocrine Reviews. 30 (6), 624-712 (2009).
  3. Fortune, J. E., Cushman, R. A., Wahl, C. M., Kito, S. The primordial to primary follicle transition. Molecular and Cellular Endocrinology. 163, 53-60 (2000).
  4. Ireland, J. J. Control of follicular growth and development. Journal of Reproduction and Fertility. 34, 39-54 (1987).
  5. Higuchi, C. M., Maeda, Y., Horiuchi, T., Yamazaki, Y. A simplified method for three-dimensional (3-D) ovarian tissue culture yielding oocytes competent to produce full-term offspring in mice. PLoS One. 10 (11), e0143114 (2015).
  6. Ramezani, M., Salehnia, M., Jafarabadi, M. Short term culture of vitrified human ovarian cortical tissue to assess the cryopreservation outcome: molecular and morphological analysis. Journal of Reproduction & Infertility. 18 (1), 162-171 (2017).
  7. McLaughlin, M., Telfer, E. Oocyte development in bovine primordial follicles is promoted by activin and FSH within a two-step serum-free culture system. Reproduction. 139 (6), 971-978 (2010).
  8. Stefansdottir, A., Fowler, P. A., Powles-Glover, N., Anderson, R. A., Spears, N. Use of ovary culture techniques in reproductive toxicology. Reproductive Toxicology. 49, 117-135 (2014).
  9. Bromfield, J. J., Sheldon, I. M. Lipopolysaccharide reduces the primordial follicle pool in the bovine ovarian cortex ex vivo and in the murine ovary in vivo. Biology of Reproduction. 88 (4), 1-9 (2013).
  10. Franks, S., Stark, J., Hardy, K. Follicle dynamics and anovulation in polycystic ovary syndrome. Humane Reproduction Update. 14 (4), 367-378 (2008).
  11. Desmeules, P., Devine, P. J. Characterizing the ovotoxicity of cyclophosphamide metabolites on cultured mouse ovaries. Toxicological Sciences. 90 (2), 500-509 (2006).
  12. Bott, R. C., McFee, R. M., Clopton, D. T., Toombs, C., Cupp, A. S. Vascular endothelial growth factor and kinase domain region receptor are involved in both seminiferous cord formation and vascular development during testis morphogenesis in the rat. Biology of Reproduction. 75, 56-67 (2006).
  13. Baltes-Breitwisch, M. M., et al. Neutralization of vascular endothelial growth factor antiangiogenic isoforms or administration of proangiogenic isoforms stimulates vascular development in the rat testis. Reproduction. 140 (2), 319-329 (2010).
  14. McFee, R. M., et al. Inhibition of vascular endothelial growth factor receptor signal transduction blocks follicle progression but does not necessarily disrupt vascular development in perinatal rat ovaries. Biology of Reproduction. 81, 966-977 (2009).
  15. Artac, R. A., et al. Neutralization of vascular endothelial growth factor antiangiogenic isoforms is more effective than treatment with proangiogenic isoforms in stimulating vascular development and follicle progression in the perinatal rat ovary. Biology of Reproduction. 81, 978-988 (2009).
  16. Abedal-Majed, M. A., et al. Vascular endothelial growth factor A isoforms modulate follicle development in peripbertal heifers independent of diet through diverse signal transduction pathways. Biology of Reproduction. 102 (3), 680-692 (2020).
  17. Wandji, S. A., Srsen, V., Voss, A. K., Eppig, J. J., Fortune, J. E. Initiation in vitro of bovine primordial follicles. Biology of Reproduction. 55, 942-948 (1996).
  18. Wandji, S. A., Srsen, V., Nathanielsz, P. W., Eppig, J. J., Fortune, J. E. Initiation of growth of baboon primordial follicles in vitro. Human Reproduction. 12 (9), 1993-2001 (1993).
  19. Yang, M. Y., Fortune, J. E. Testosterone stimulates the primary to secondary follicle transition in bovine follicles in vitro. Biology of Reproduction. 75, 924-932 (2006).
  20. Fortune, J. E., Kito, S., Wandji, S. A., Srsen, V. Activation of bovine and baboon primordial follicles in vitro. Theriogenology. 49, 441-449 (1998).
  21. Yang, M. Y., Fortune, J. E. Vascular endothelial growth factor stimulates the primary to secondary follicle transition in bovine follicles in vitro. Molecular Reproduction and Development. 74, 1095-1104 (2007).
  22. Barberino, R. S., Silva, J. R. V., Figueiredo, J. R., Matos, M. H. T. Transport of domestic and wild animal ovaries: a review of the effects of medium, temperature, and periods of storage on follicular viability. Biopreservation and Biobanking. 17 (1), 84-90 (2019).
  23. Summers, A. F., et al. Altered theca and cumulus oocyte complex gene expression, follicular arrest and reduced fertility in cows with dominant follicle follicular fluid androgen excess. PLoS One. 9 (10), e110683 (2014).
  24. Koal, T., Schmiederer, D., Pham-Tuan, H., Rohring, C., Rauh, M. Standardized LC-MS/MS based steroid hormone profile analysis. The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. 129, 129-138 (2012).
  25. Poole, R. K., Brown, A. R., Pore, M. H., Pickworth, C. L., Poole, D. H. Effects of endophyte-infected tall fescue seed and protein supplementation on stocker steers: II. Adaptive and innate immune function. Journal of Animal Science. 97 (10), 4160-4170 (2019).
  26. Laronda, M., et al. Alginate encapsulation supports the growth and differentiation of human primordial follicles within ovarian cortical tissue. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 31 (8), 1013-1028 (2014).
  27. Silber, S. J., et al. A series of monozygotic twins discordant for ovarian failure: ovary transplantation (cortical versus microvascular) and cryopreservation. Human Reproduction. 23 (7), 1531-1537 (2008).
  28. Wiedemann, C., Zahmel, J., Jewgenow, K. Short-term culture of ovarian cortex pieces to assess the cryopreservation outcome in wild fields for genome conservation. BMC Veterinary Research. 9 (37), (2013).
  29. Baufeld, A., Vanselow, J. Increasing cell plating density mimics an early post-LH stage in cultured bovine granulosa cells. Cell and Tissue Research. 354 (3), 869-880 (2013).
  30. Shimizu, T., Miyamoto, A. Progesterone induces the expression of vascular endothelial growth factor (VEGF) 120 and Flk-1, its receptor, in bovine granulosa cells. Animal Reproduction Science. 102 (3-4), 228-237 (2007).
  31. Tepekoy, F., Akkoyunlu, G. The effect of FSH and activin A on Akt and MAPK1/3 phosphorylation in cultured bovine ovarian cortical strips. Journal of Ovarian Research. 9 (13), 1-9 (2016).
  32. Beck, K., Singh, J., Arshud Dar, M., Anzar, M. Short-term culture of adult bovine ovarian tissues: chorioallantoic membrane (CAM) vs. traditional in vitro culture systems. Reproductive Biology and Endocrinology. 16 (1), 21 (2018).
  33. Eppig, J. J. Oocyte control of ovarian follicular development and function in mammals. Reproduction. 122 (6), 829-838 (2001).
  34. Paczkowski, M., Silva, E., Schoolcraft, W. B., Krisher, R. L. Comparative importance of fatty acid beta-oxidation to nuclear maturation, gene expression, and glucose metabolism in mouse, bovine, and porcine cumulus oocyte complexes. Biology of Reproduction. 88 (5), 1-11 (2013).
  35. Raffel, N., et al. Is ovarian tissue transport at supra-zero temperatures compared to body temperature optimal for follicle survival?. In Vivo. 34 (2), 533-541 (2020).
  36. Duncan, F., et al. Ovarian tissue transport to expand access to fertility preservation: from animals to clinical practice. Reproduction (Cambridge, England). 152 (6), R201-R210 (2016).
  37. Liebenthron, J., et al. Overnight ovarian tissue transportation for centralized cryobanking: a feasible option. Reproductive BioMedicine Online. 38 (5), 740-749 (2019).
  38. Mohammed, B. T., Donadeu, F. X. Bovine granulosa cell culture. Epithelial Cell Culture: Methods and Protocols. , 79-87 (2018).
  39. Langbeen, A., et al. Effects of neutral red assisted viability assessment on the cryotolerance of isolated bovine preantral follicles. Journal of Assisted Reproduction Genetics. 31, 1727-1736 (2014).
  40. Higuchi, C. M., Maeda, Y., Horiuchi, T., Yamazaki, Y. A simplified method for three-dimensional (3-D) ovarian tissue culture yielding oocytes competent to produce full-term offspring in mice. PLoS One. 10 (11), e0143114 (2015).
  41. Yang, M. Y., Fortune, J. E. Changes in the transcriptome of bovine ovarian cortex during follicle activation in vitro. Physiological Genomics. 47, 600-611 (2015).
check_url/kr/61668?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sutton, C. M., Springman, S. A., Abedal-Majed, M. A., Cupp, A. S. Bovine Ovarian Cortex Tissue Culture. J. Vis. Exp. (167), e61668, doi:10.3791/61668 (2021).

View Video