Summary

Oppnå kvalitet utvidet synsfelt ultralyd bilder av skjelettmuskulatur for å måle muskel fascicle lengde

Published: December 14, 2020
doi:

Summary

Denne studien beskriver hvordan du oppnår høykvalitets muskuloskeletale bilder ved hjelp av den utvidede synsfelt ultralyd (EFOV-US) metoden med det formål å lage muskelfascicle lengde tiltak. Vi bruker denne metoden på muskler med fascicles som strekker seg forbi synsfeltet til vanlige tradisjonelle ultralyd (T-US) sonder.

Abstract

Muskel fascicle lengde, som ofte måles in vivo ved hjelp av tradisjonell ultralyd, er en viktig parameter som definerer en muskel kraft genererer kapasitet. Imidlertid har over 90% av alle øvre lemmuskler og 85% av alle nedre lemmer muskler optimale fascicle lengder lenger enn synsfeltet til vanlige tradisjonelle ultralyd (T-US) sonder. En nyere, sjeldnere vedtatt metode kalt utvidet synsfelt ultralyd (EFOV-US) kan muliggjøre direkte måling av fascicles lenger enn synsfeltet til et enkelt T-US-bilde. Denne metoden, som automatisk passer sammen en sekvens av T-US-bilder fra en dynamisk skanning, har vist seg å være gyldig og pålitelig for å oppnå muskelfascicle lengder in vivo. Til tross for de mange skjelettmusklene med lange fascicles og gyldigheten av EFOV-US-metoden for å gjøre målinger av slike fascicles, har få publiserte studier brukt denne metoden. I denne studien demonstrerer vi både hvordan du implementerer EFOV-US-metoden for å oppnå muskuloskeletalbilder av høy kvalitet og hvordan du kvantifiserer fasciclelengder fra disse bildene. Vi forventer at denne demonstrasjonen vil oppmuntre til bruk av EFOV-US-metoden for å øke bassenget av muskler, både i sunne og svekkede populasjoner, som vi har in vivo muskelfascicle lengdedata for.

Introduction

Fascicle lengde er en viktig parameter for skjelettmuskulatur arkitektur, som generelt indikerer en muskel evne til å produsere force1,2. Spesielt gir en muskels fascicle lengde innsikt i det absolutte spekteret av lengder som en muskel kan generere aktiv kraft3,4. For eksempel, gitt to muskler med identiske verdier for alle isometriske kraftgenererende parametere (dvs. gjennomsnittlig sarcomere lengde, penneringsvinkel, fysiologisk tverrsnittsområde, sammentrekningstilstand, etc.) bortsett fra fascicle lengde, muskelen med lengre fascicles ville produsere sin toppkraft i lengre lengde og ville produsere kraft over et bredere spekter av lengder enn muskelen med kortere fascicles3 . Kvantifisering av muskelfascicle lengde er viktig for å forstå både sunn muskelfunksjon og endringer i en muskels kraftgenererende kapasitet, som kan oppstå som følge av endret muskelbruk (f.eks. immobilisering5,6, treningsintervensjon7,8,9, høy hæl iført10) eller en endring i muskelens miljø (f.eks. seneoverføringskirurgi11, lem distraksjon12 ). Målinger av muskelfascicle lengde ble opprinnelig oppnådd gjennom ex vivo kadaveriske eksperimenter som muliggjør direkte måling av dissekerte fascicles13,14,15,16. Den verdifulle informasjonen fra disse ex vivo-eksperimentene førte til interesse for å implementere in vivo-metoder17,18,19 for å ta opp spørsmål som ikke kunne besvares i kadaver; in vivo-metoder muliggjør kvantifisering av muskelparametere i innfødt tilstand så vel som ved forskjellige leddstillinger, forskjellige muskelkontraksjonstilstander, forskjellige laste- eller lossetilstander, og på tvers av populasjoner med forskjellige forhold (dvs. sunne / skadede, unge / gamle, etc.). Oftest er ultralyd metoden som brukes for å oppnå in vivo muskel fascicle lengder18,19,20; Det er raskere, billigere og enklere å implementere enn andre avbildningsteknikker, for eksempel diffusjons tensoravbildning (DTI)18,21.

Utvidet synsfelt ultralyd (EFOV-US) har vist seg å være en gyldig og pålitelig metode for måling av muskelfascicle lengde in vivo. Mens det vanligvis implementeres, har tradisjonell ultralyd (T-US) et synsfelt som er begrenset av ultralydtransduserens matriselengde (vanligvis mellom 4 og 6 cm, selv om det er sonder som strekker seg til 10 cm10)18,20. For å overvinne denne begrensningen utviklet Weng et al. en EFOV-US-teknologi som automatisk får et sammensatt, todimensjonalt “panorama” bilde (opptil 60 cm langt) fra en dynamisk, utvidet avstandsskanning22. Bildet er laget ved å passe sammen, i sanntid, en sekvens av tradisjonelle, B-modus ultralydbilder når svingeren dynamisk skanner gjenstanden av interesse. Fordi sekvensielle T-US-bilder har store overlappende områder, kan de små forskjellene fra ett bilde til det neste brukes til å beregne sondebevegelsen uten bruk av eksterne bevegelsessensorer. Når sondebevegelsen mellom to påfølgende bilder er beregnet, slås det “gjeldende” bildet sammen suksessivt med de foregående bildene. EFOV-US-metoden tillater direkte måling av lange, buede muskelfascicles og har vist seg å være pålitelig på tvers av muskler, studier og sonografer23,24,25 og gyldig for både flate og buede overflater23,26.

Implementering av ultralyd for å måle muskelfascicle lengde in vivo er ikke trivielt. I motsetning til andre avbildningsteknikker som involverer mer automatiserte protokoller (dvs. MR, CT), er ultralyd avhengig av sonografferdigheter og anatomisk kunnskap27,28. Det er bekymring for at sonde feiljustering med fascicle flyet kan forårsake betydelig feil i fascicle tiltak. En studie viser liten forskjell (i gjennomsnitt < 3 mm) i mål på fascicle lengde tatt ved hjelp av ultralyd og DTI MR, men viser også at målepresisjonen er lav (standardavvik av forskjell ~ 12 mm)29. Likevel har det vist seg at en nybegynner sonograf, med praksis og veiledning fra en erfaren sonograf, kan få gyldige meaures ved hjelp av EFOV-US23. Det bør derfor arbeides for å demonstrere passende protokoller for å redusere menneskelig feil og forbedre nøyaktigheten av målinger oppnådd ved hjelp av EFOV-US. Til syvende og sist kan utvikling og deling av passende protokoller utvide antall eksperimenter og laboratorier som kan reprodusere fascicle lengdedata fra litteraturen eller få nye data i muskler som ennå ikke er studert in vivo.

I denne protokollen demonstrerer vi hvordan du implementerer EFOV-US-metoden for å oppnå høykvalitets muskuloskeletale bilder som kan brukes til å kvantifisere muskelfascicle lengde. Spesielt adresserer vi (a) samle EFOV-US bilder av en enkelt øvre lem og en enkelt nedre lem muskel (b) bestemme, i sanntid, “kvalitet” av EFOV-US bildet, og (c) kvantifisere muskel arkitektur parametere offline. Vi gir denne detaljerte guiden for å oppmuntre til vedtakelse av EFOV-US-metoden for å skaffe muskelfascicle lengde data i muskler som har gått unstudied in vivo på grunn av deres lange fascicles.

Protocol

Northwestern University’s Institutional Review Board (IRB) godkjente prosedyrene i denne studien. Alle deltakere som var påmeldt dette arbeidet ga informert samtykke før protokollen ble startet nedenfor.MERK: Det spesifikke ultralydsystemet som ble brukt i denne studien hadde EFOV-US evner og ble vedtatt fordi vi var i stand til å gjennomgå detaljer om og gyldighetsvurderinger for algoritmen i den vitenskapelige litteraturen22,26; flere andre systemer med…

Representative Results

Utvidet synsfelt ultralyd (EFOV-US) ble implementert for å få bilder fra det lange hodet på biceps brachii og tibialis fremre hos 4 friske frivillige (tabell 1). Figur 1 viser hvilke EFOV-US-bilder av begge musklene som er avbildet i denne representative bildeøkten, og fremhever viktige aspekter ved hvert bilde, for eksempel muskelaponeurose, sentral sene, fasciclebane osv. Etter at bildebehandlingsøkten var over, ble 3 kvalitativt “gode” bilder (fi…

Discussion

Kritiske trinn i protokollen.

Det er noen få kritiske komponenter for å oppnå EFOV-US-bilder av høy kvalitet som gir gyldige og pålitelige fascicle lengdemål. For det første, som angitt i metode 1.1.2, er det viktig at sonografen tar seg tid til å bli kjent med anatomien til muskelen som blir avbildet, så vel som omkringliggende muskler, bein og andre bløtvevsstrukturer. Dette vil forbedre sonografens evne til å avbilde riktig muskel og avgjøre om flere bilder fang…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gjerne takke Vikram Darbhe og Patrick Franks for deres eksperimentelle veiledning. Dette arbeidet støttes av National Science Foundation Graduate Research Fellowship Program under Grant No. DGE-1324585 samt NIH R01D084009 og F31AR076920. Eventuelle meninger, funn og konklusjoner eller anbefalinger uttrykt i dette materialet er forfatternes og gjenspeiler ikke nødvendigvis synspunktene til National Science Foundation eller NIH.

Materials

14L5 linear transducers Siemens 10789396
Acuson S2000 Ultrasound System Siemens 10032746
Adjustable chair (Biodex System) Biodex Medical Systems System Pro 4
Skin Marker Medium Tip SportSafe n/a Multi-color 4 Pack recommended
Ultrasound Gel – Standard 8 Ounce Non-Sterile Fragrance Free Glacial Tint MediChoice, Owens &Minor M500812

References

  1. Gans, C., Bock, W. J. The functional significance of muscle architecture: a theoretical analysis. Advances in Anatomy, Embryology and Cell Biology. 38, 115-142 (1965).
  2. Gans, C. Fiber architecture and muscle function. Exercise and Sports Sciences Reviews. 10, 160-207 (1982).
  3. Lieber, R. L., Fridén, J. Functional and clinical significance of skeletal muscle architecture. Muscle & Nerve. 23 (11), 1647-1666 (2000).
  4. Zajac, F. E. Muscle and tendon: properties, models, scaling, and application to biomechanics and motor control. Critical Reviews in Biomedical Engineering. 17 (4), 359-411 (1989).
  5. Williams, P. E., Goldspink, G. The effect of immobilization on the longitudinal growth of striated muscle fibres. Journal of Anatomy. 116 (1), 45 (1973).
  6. Williams, P. E., Goldspink, G. Changes in sarcomere length and physiological properties in immobilized muscle. Journal of Anatomy. 127 (3), 459-468 (1978).
  7. Blazevich, A. J., Cannavan, D., Coleman, D. R., Horne, S. Influence of concentric and eccentric resistance training on architectural adaptation in human quadriceps muscles. Journal of Applied Physiology. 103 (5), 1565-1575 (2007).
  8. Seymore, K. D., Domire, Z. J., DeVita, P., Rider, P. M., Kulas, A. S. The effect of Nordic hamstring strength training on muscle architecture, stiffness, and strength. European Journal of Applied Physiology. 117 (5), 943-953 (2017).
  9. Franchi, M. V., et al. Architectural, functional and molecular responses to concentric and eccentric loading in human skeletal muscle. Acta Physiologica. 210 (3), 642-654 (2014).
  10. Csapo, R., Maganaris, C. N., Seynnes, O. R., Narici, M. V. On muscle, tendon and high heels. The Journal of Experimental Biology. 213 (15), 2582-2588 (2010).
  11. Takahashi, M., Ward, S. R., Marchuk, L. L., Frank, C. B., Lieber, R. L. Asynchronous muscle and tendon adaptation after surgical tensioning procedures. Journal of Bone and Joint Surgery. 92 (3), 664-674 (2010).
  12. Boakes, J. L., Foran, J., Ward, S. R., Lieber, R. L. Case Report: Muscle Adaptation by Serial Sarcomere Addition 1 Year after Femoral Lengthening. Clinical Orthopaedics and Related Research. 456, 250-253 (2007).
  13. Cutts, A., Alexander, R. M., Ker, R. F. Ratios of cross-sectional areas of muscles and their tendons in a healthy human forearm. Journal of Anatomy. 176, 133-137 (1991).
  14. Lieber, R. L., Friden, J. Functional and clinical significance of skeletal muscle architecture. Muscle Nerve. 23, 1647-1666 (2000).
  15. Lieber, R. L., Fazeli, B. M., Botte, M. J. Architecture of Selected Wrist Flexor and Extensor Muscles. Journal of Hand Surgery-American. 15 (2), 244-250 (1990).
  16. Brand, P. W., Beach, R. B., Thompson, D. E. Relative tension and potential excursion of muscles in the forearm and hand. Journal of Hand Surgery. 6 (3), (1981).
  17. Fukunaga, T., Kawakami, Y., Kuno, S., Funato, K., Fukashiro, S. Muscle architecture and function in humans. Journal of Biomechanics. 30 (5), 457-463 (1997).
  18. Kwah, L. K., Pinto, R. Z., Diong, J., Herbert, R. D. Reliability and validity of ultrasound measurements of muscle fascicle length and pennation in humans: a systematic review. Journal of Applied Physiology. 114, 761-769 (2013).
  19. Lieber, R. L., Ward, S. R. Skeletal muscle design to meet functional demands. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 366 (1570), 1466-1476 (2011).
  20. Franchi, M. V., et al. Muscle architecture assessment: strengths, shortcomings and new frontiers of in vivo imaging techniques. Ultrasound in Medicine & Biology. 44 (12), 2492-2504 (2018).
  21. Cronin, N. J., Lichtwark, G. The use of ultrasound to study muscle-tendon function in human posture and locomotion. Gait & posture. 37 (3), 305-312 (2013).
  22. Weng, L., et al. US extended-field-of-view imaging technology. Radiology. 203 (3), 877-880 (1997).
  23. Adkins, A. N., Franks, P. F., Murray, W. M. Demonstration of extended field-of-view ultrasound’s potential to increase the pool of muscles for which in vivo fascicle length is measurable. Journal of Biomechanics. 63, 179-185 (2017).
  24. Noorkoiv, M., Stavnsbo, A., Aagaard, P., Blazevich, A. J. In vivo assessment of muscle fascicle length by extended field-of-view ultrasonography. Journal of Applied Physiology. , (2010).
  25. Nelson, C. M., Dewald, J. P. A., Murray, W. M. In vivo measurements of biceps brachii and triceps brachii fascicle lengths using extended field-of-view ultrasound. Journal of Biomechanics. 49, 1948-1952 (2016).
  26. Fornage, B. D., Atkinson, E. N., Nock, L. F., Jones, P. H. US with extended field of view: Phantom-tested accuracy of distance measurements. Radiology. 214, 579-584 (2000).
  27. Bénard, M. R., Becher, J. G., Harlaar, J., Huijing, P. A., Jaspers, R. T. Anatomical information is needed in ultrasound imaging of muscle to avoid potentially substantial errors in measurement of muscle geometry. Muscle & Nerve. 39 (5), 652-665 (2009).
  28. Pinto, A., et al. Sources of error in emergency ultrasonography. Critical Ultrasound Journal. 5 (1), 1 (2013).
  29. Bolsterlee, B., Veeger, H. E. J., van der Helm, F. C. T., Gandevia, S. C., Herbert, R. D. Comparison of measurements of medial gastrocnemius architectural parameters from ultrasound and diffusion tensor images. Journal of Biomechanics. 48 (6), 1133-1140 (2015).
  30. VanHooren, B., Teratsias, P., Hodson-Tole, E. F. Ultrasound imaging to assess skeletal muscle architecture during movements: a systematic review of methods, reliability, and challenges. Journal of Applied Physiology. 128 (4), 978-999 (2020).
  31. Pimenta, R., Blazavich, A. J., Frietas, S. R. Biceps Femoris Long-Head Architecture Assessed Using Different Sonographic Techniques. Medicine & Science in Sports & Exercise. 50 (12), 2584-2594 (2018).
  32. Adkins, A. N., Franks, P. W., Murray, W. M. Demonstration of extended field-of-view ultrasound’s potential to increase the pool of muscles for which in vivo fascicle length is measurable. Journal of Biomechanics. 63, 179-185 (2017).
  33. Norkin, C. C., White, J. D. . Measurement Of Joint Motion: A Guide To Goniometry. 5th edn. , (2016).
  34. Wu, G., et al. ISB recommendation on definitions of joint coordinate system of various joints for the reporting of human joint motion–part I: ankle, hip, and spine. International Society of Biomechanics. Journal of Biomechanics. 35 (4), 543-548 (2002).
  35. Wu, G., et al. ISB recommendation on definitions of joint coordinate systems of various joints for the reporting of human joint motion–Part II: shoulder, elbow, wrist and hand. Journal of Biomechanics. 38 (5), 981-992 (2005).
  36. Franchi, M. V., Fitze, D. P., Raiteri, B. J., Hahn, D., Spörri, J. Ultrasound-derived biceps femoris long-head fascicle length: extrapolation pitfalls. Medicine and Science in Sports and Exercise. 52 (1), 233-243 (2020).
  37. Freitas, S. R., Marmeleira, J., Valamatos, M. J., Blazevich, A., Mil-Homens, P. Ultrasonographic Measurement of the Biceps Femoris Long-Head Muscle Architecture. Journal of Ultrasound in Medicine. 37 (4), 977-986 (2018).
  38. Nelson, C. M., Murray, W. M., Dewald, J. P. A. Motor Impairment-Related Alterations in Biceps and Triceps Brachii Fascicle Lengths in Chronic Hemiparetic Stroke. Neurorehabilitation and Neural Repair. 32 (9), 799-809 (2018).
  39. Alonso-Fernandez, D., Docampo-Blanco, P., Martinez-Fernandez, J. Changes in muscle architecture of biceps femoris induced by eccentric strength training with nordic hamstring exercise. Scandinavian Journal of Medicine & Science in Sports. 28 (1), 88-94 (2018).
  40. Herbert, R. D., et al. In vivo passive mechanical behaviour of muscle fascicles and tendons in human gastrocnemius muscle-tendon units. The Journal of Physiology. 589 (21), 5257-5267 (2011).
  41. Jakubowski, K. L., Terman, A., Santana, R. V. C., Lee, S. S. M. Passive material properties of stroke-impaired plantarflexor and dorsiflexor muscles. Clinical Biomechanics. 49, 48-55 (2017).
  42. Ward, S. R., Eng, C. M., Smallwood, L. H., Lieber, R. L. Are Current Measurements of Lower Extremity Muscle Architecture Accurate. Clinical Orthopaedics and Related Research. 467 (4), 1074-1082 (2009).
  43. Pillen, S., van Alfen, N. Skeletal muscle ultrasound. Neurological Research. 33 (10), 1016-1024 (2011).
  44. Scott, J. M., et al. Panoramic ultrasound: a novel and valid tool for monitoring change in muscle mass. Journal of Cachexia, Sarcopenia and Muscle. 8 (3), 475-481 (2017).
  45. Silbernagel, K. G., Shelley, K., Powell, S., Varrecchia, S. Extended field of view ultrasound imaging to evaluate Achilles tendon length and thickness: a reliability and validity study. Muscles, Ligaments and Tendons Journal. 6 (1), 104 (2016).
  46. Lichtwark, G. A., Bougoulias, K., Wilson, A. M. Muscle fascicle and series elastic element length changes along the length of the human gastrocnemius during walking and running. Journal of Biomechanics. 40 (1), 157-164 (2007).
  47. Farris, D. J., Sawicki, G. S. Human medial gastrocnemius force-velocity behavior shifts with locomotion speed and gait. Proceedings of the National Academy of Sciences. 109 (3), 977-982 (2012).
  48. Bolsterlee, B., Gandevia, S. C., Herbert, R. D. Effect of Transducer Orientation on Errors in Ultrasound Image-Based Measurements of Human Medial Gastrocnemius Muscle Fascicle Length and Pennation. PLoS ONE. 11 (6), (2016).
  49. Adkins, A. N., Dewald, J. P. A., Garmirian, L., Nelson, C. M., et al. Serial sarcomere number is substantially decreased within the paretic biceps brachii in chronic hemiparetic stroke. bioRxiv. , (2020).
  50. Pang, B. S., Ying, M. Sonographic measurement of Achilles tendons in asymptomatic subjects. Journal of Ultrasound in Medicine. 25 (10), 1291-1296 (2006).
  51. Ryan, E. D., et al. Test-retest reliability and the minimal detectable change for achilles tendon length: a panoramic ultrasound assessment. Ultrasound in Medicine & Biology. 39 (12), 2488-2491 (2013).
  52. Noorkoiv, M., Nosaka, K., Blazevich, A. J. Assessment of quadriceps muscle cross-sectional area by ultrasound extended-field-of-view imaging. European Journal of Applied Physiology. 109 (4), 631-639 (2010).
  53. Franchi, M. V., Fitze, D. P., Hanimann, J., Sarto, F., Spörri, J. Panoramic ultrasound vs. MRI for the assessment of hamstrings cross-sectional area and volume in a large athletic cohort. Scientific Reports. 10 (1), 14144 (2020).
  54. Yerli, H., Eksioglu, S. Y. Extended Field-of-View Sonography: Evaluation of the Superficial Lesions. Canadian Association of Radiologists Journal. 60 (1), 35-39 (2009).
  55. Kim, S. H., Choi, B. I., Kim, K. W., Lee, K. H., Han, J. K. Extended Field-of-View Sonography. Journal of Ultrasound in Medicine. 22 (4), 385-394 (2003).
check_url/kr/61765?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Adkins, A. N., Murray, W. M. Obtaining Quality Extended Field-of-View Ultrasound Images of Skeletal Muscle to Measure Muscle Fascicle Length. J. Vis. Exp. (166), e61765, doi:10.3791/61765 (2020).

View Video