Summary

Eksponering for cigaretrøg hos mus ved hjælp af et inhalationssystem til hele kroppen

Published: October 22, 2020
doi:

Summary

Denne protokol demonstrerer undersøgelsen af de patofysiologiske virkninger af cigaretrøg (CS) med et helkropsinhalationssystem (WBI) (WBIS), der er bygget internt. Dette system kan udsætte dyr for CS under kontrollerede repeterbare betingelser for forskning i CS-medierede virkninger på lungeafysem og hæmatopoiesis.

Abstract

Tæt på 14% af voksne i USA blev rapporteret til at ryge cigaretter i 2018. Virkningerne af cigaretrøg (CS) på lunger og hjerte-kar-sygdomme er blevet undersøgt bredt, men virkningen af CS i andre væv og organer såsom blod og knoglemarv forbliver ufuldstændigt defineret. Det kan være uoverkommeligt dyrt at finde det rette system til at undersøge virkningerne af CS hos gnavere, og det kan kræve køb af kommercielt tilgængelige systemer. Således satte vi os for at opbygge et overkommeligt, pålideligt og alsidigt system til at studere de patologiske virkninger af CS hos mus. Denne helkrops inhalation eksponering system (WBIS) set-up efterligner vejrtrækning og puffing af cigaretter ved skiftevis eksponering for CS og ren luft. Her viser vi, at dette gør-det-selv (DIY) system fremkalder luftvejsbetændelse og lungeemfysem hos mus efter 4 måneders cigaretrøg eksponering. Virkningerne af helkropsinhalation (WBI) af CS på hæmatopoietiske stamceller og stamceller (HSC’er) i knoglemarven ved hjælp af dette apparat er også vist.

Introduction

Cigaretrygning er fortsat en af hovedårsagerne til sygdomme, der kan forebygges i USA på trods af det stadige fald i antallet af cigaretrygende voksne i de sidste 50-60 år1. Det er almindeligt kendt, at rygning er forbundet med flere sygdomme i lungerne og blodet, herunder kronisk obstruktiv lungesygdom (KOL), en gruppe sygdomme, der omfatter emfysem og kronisk bronkitis2,3,4. Ifølge Center for Disease Control (CDC) var KOL i 2014 den tredje hyppigste dødsårsag i USA med over 15 millioner amerikanere, der lider af denne sygdom5.

CS har også for nylig været forbundet med en højere risiko for at udvikle kloniske hæmatopoiesis (CH)6,7, en tilstand, hvor en enkelt hæmatopoietisk stamcelle uforholdsmæssigt producerer en stor procentdel af en persons perifere blod. Dette fund indikerer en potentiel sammenhæng mellem rygning og knoglemarvsfunktion. I betragtning af de udbredte og meget betydelige sundhedsmæssige konsekvenser af CS og i betragtning af, at murin modeller af sygdomme er en hjørnesten i fremskridt inden for biomedicinsk forskning, er det nyttigt at udvikle effektive og overkommelige systemer til model CS i mus.

Her giver vi en trin-for-trin guide til opbygning af et overkommeligt system til behandling og undersøgelse af in vivo virkninger af CS på lungeemfysem og knoglemarv homeostase. Samlingen af dette udstyr kræver ikke, at brugeren har specialiseret viden og giver derfor mulighed for DIY-samling.

Protocol

Alle de dyr, der er involveret i forsøgene og udviklingen af denne teknik, har været under vores dyrebrugsprotokol, der er godkendt af Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) og under Baylor College of Medicine og MD Anderson-institutioner, der er akkrediteret af Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care (AAALAC). 1. Opbygning af apparatet Montering af luftkompressoren med ventilsystemet. Tilslut flowmetre (to 15 L…

Representative Results

Et af de vigtigste kendetegn ved CS eksponering er emfysem, der er kendetegnet ved skader og ødelæggelse af luftsække (alveoler) i lungerne. Således fokuserede de første eksperimenter på DIY-systemets evne til at fremkalde emfysemiske ændringer i lungerne hos kvindelige mus ved gentagen helkropseksponering for CS. CS doseringsregimet blev valgt på baggrund af vores tidligerepublikationer,hvor vi brugte DIY-systemet, der er beskrevet her til behandling af mus med CS og studere den molekylære patofysiol…

Discussion

Her giver vi de oplysninger, der kræves til opførelse af et apparat til WBIS af mus til CS. Efter installation af systemet er det afgørende vigtigt, at efterforskerne kalibrerer systemet baseret på den leverede dosis nikotin eller cotinin hos dyr. Apparatet indeholder en timer og trykmålere, der kan bruges til at justere cigaret puff volumen, puff frekvens, kombineret røg eksponering periode, og hvile intervaller, at dyrene modtager mellem hver cigaret. Desuden kan det faktiske antal cigaretter, der indgives daglig…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

AR, XH, og PE blev støttet af NIH tilskud R01HL140398 og en Gilson Longenbaugh Foundation tilskud. DEMM og KK blev støttet af NIH-tilskuddene R01HL136333 og R01HL134880 (KYK) og et tilskud fra Helis Medical Research Foundation. DEMM er også støttet af Howard Hughes Medical Institute (HHMI) Gilliam Fellowship for Advanced Study. PE er også støttet af Uddannelse i Precision Environmental Health Sciences NIEHS T32 ES027801 Fellowship Program. JC og MF støttes af Tobaksforskningsfonde fra Institut for Epigenetik og Molekylær Carcinogenese og af Center for Epigenetik (Scholar Award til MF) på MD Anderson. FK og YZ støttes af NIH-tilskud R01 ES029442-01 og R01 AI135803-01 samt VA Merit-tilskud CX000104. Dette projekt blev støttet af Cytometry and Cell Sorting Core på Baylor College of Medicine med støtte fra CPRIT Core Facility Support Award (CPRIT-RP180672), NIH (CA125123 og RR024574) og bistand fra Joel M. Sederstrom.

Materials

1 in fastener Lowes 756990
1/4 in Barbed Y connector VWR 89093-282
1/4 in straight tubing connector VWR 62866-378
1/8 hex nipple Lowes 877221
1/8 in threaded coupling fitting Lowes 877208
1/8 in threaded male adapter nipple fitting Lowes 877243
10/32 (M) threaded straight connector Bimba EB60
3/4 in 90-degree elbow CPVC fitting Lowes 22643
3/4 in chlorinated polyvinyl chloride (CPVC) pipe Lowes 23814
3/4 in CPVC cap Lowes 23773
3/4 in CPVC Drip irrigation female adapter Lowes 194629
3/4 in diameter CPVC male adapter Lowes 23766
8.5 L airtight container with lid (11.25in x 7.75in x 6 in) Komax N/A Listed as "Komax Biokips Large Bread Box | (280-oz) Large Storage Container"
Glass drain tube (1.75 in diameter x 8 in length) KIMAX 6500
Isonic Solenoid Valves Bimba V2A02-AW1
Marlboro Red 100's Marlboro N/A
Oxygen swivel barbed connector Global Medical Solutions RES002
Panasonic Timer LT4H-W Panasonic LT4HW Item was built-in the valve controller by Shepherd Controls & Associates
Pressure regulator Allied Electronics and Automation 70600552 Also listed as "Norgren R07-100-RGKA"
Rubber stopper # 1 (one hole) VWR 59581-163
Rubber stopper # 8.5 (one hole) VWR 59581-389
Scireq inExpose system Scireq and Emka Technologies N/A Commercial system used for comparison with our DIY WBIS
Straight barbed fitting (8mm opening) VWR 10028-872
Thread Sealant tape Lowes 1184243
Threaded port adaptor Bimba P1SA1
Timeter Aridyne 2000 Medical Air Compressor MFI Medical AHC-TE20
Timeter flowmeter Allied Healthcare Products 15006-03YP2 Also listed as "Puritan Air Meter"
Valve Control system Shepherd Controls and Associates N/A Company custom designed the valve control system for this model.
Vinyl pipes Vitality Medical RES3007

References

  1. Current Cigarette Smoking Among Adults in the United States. Center for Disease Control and Prevention Available from: https://www.cdc.gov/tobacco/data_statistics/fact_sheets/adult_data/cig_smoking/index.htm (2018)
  2. Salvi, S. Tobacco smoking and evironmental risk factors for chronic obstructive pulmonary disease. Clinics in Chest Medicine. 35, 17-27 (2014).
  3. Sunyer, J., et al. Longitudinal relation between smoking and white blood cells. American Journal of Epidemiology. 144, 734-741 (1996).
  4. Freedman, D. S., Flanders, D., Barboriak, J. J., Malarcher, A. M., Gates, L. Cigarette smoking and leukocyte subpopulations in men. Annals of Epidemiology. 6, 299-306 (1996).
  5. Chronic Obstructive Pulmonary Disease (COPD). Center for Disease Control and Prevention Available from: https://www.cdc.gov/copd/basics-about.html (2019)
  6. Genovese, G., et al. Clonal hematopoiesis and blood-cancer risk inferred from blood DNA sequence. New England Journal of Medicine. , (2014).
  7. Steensma, D. P. Clinical implications of clonal hematopoiesis. Mayo Clinic Proceedings. 93, 1122-1130 (2018).
  8. Tobacco. Federal Trade Comission Available from: https://www.ftc.gov/tips-advice/business-center/selected-industries/tobacco (2020)
  9. 3R4F Cigarettes. University of Kentucky – College of Agriculture Food and Environment Available from: https://ctrp.uky.edu/products/gallery/Reference (2020)
  10. Shan, M., et al. Cigarette smoke induction of osteopontin (SPP1) mediates T H 17 inflammation in human and experimental emphysema. Science Translational Medicine. 4, 1-10 (2012).
  11. Yuan, X., et al. Activation of C3a receptor is required in cigarette smoke-mediated emphysema. Nature Mucosal Immunology. 8, 874-885 (2014).
  12. Yuan, X., et al. Cigarette smoke – induced reduction of C1q promotes emphysema. JCI Insight. 4, 1-17 (2019).
  13. Shan, M., et al. Agonistic induction of PPAR g reverses cigarette smoke – induced emphysema Find the latest version: Agonistic induction of PPAR γ reverses cigarette smoke – induced emphysema. Journal of Clinical Investigation. 124, 1371-1381 (2014).
  14. Hong, M. J., et al. Protective role of gd T cells in cigarette smoke and influenza infection. Nature Mucosal Immunology. 11, 834-908 (2018).
  15. Kim, M., et al. Cigarette smoke induces intestinal inflammation via a Th17 cell-neutrophil axis. Frontiers in Immunology. 10, 1-11 (2019).
  16. Lu, W., et al. The microRNA miR-22 inhibits the histone deacetylase HDAC4 to promote T H 17 cell – dependent emphysema. Nature Immunology. 16, 1185-1194 (2015).
  17. Hendrix, A. Y., Kheradmand, F. . The Role of Matrix Metalloproteinases in Development, Repair, and Destruction of the Lungs. Progress in Molecular Biology and Translational Science. 148, (2017).
  18. Siggins, R. W., Hossain, F., Rehman, T., Melvan, J. N., Welsh, D. A. Cigarette smoke alters the hematopoietic stem cell niche. Med Sci. 2, 37-50 (2014).
  19. Kheradmand, F., You, R., Gu, B. H., Corry, D. B. Cigarette smoke and DNA cleavage promote lung inflammation and emphysema. Transactions of the American Clinical and Climatological Association. 128, 222-233 (2017).
  20. Ha, M. A., et al. Menthol attenuates respiratory irritation and elevates blood cotinine in cigarette smoke exposed mice. PLoS ONE. , 1-16 (2015).
  21. Moreno-Gonzalez, I., Estrada, L. D., Sanchez-Mejias, E., Soto, C. Smoking exacerbates amyloid pathology in a mouse model of Alzheimer’s disease. Nature Communications. 4, 1-10 (2013).
  22. Madison, M. C., et al. Electronic cigarettes disrupt lung lipid homeostasis and innate immunity independent of nicotine. Journal of Clinical Investigation. 129, 4290-4304 (2019).
check_url/kr/61793?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Morales-Mantilla, D. E., Huang, X., Erice, P., Porter, P., Zhang, Y., Figueroa, M., Chandra, J., King, K. Y., Kheradmand, F., Rodríguez, A. Cigarette Smoke Exposure in Mice using a Whole-Body Inhalation System. J. Vis. Exp. (164), e61793, doi:10.3791/61793 (2020).

View Video