Een open vaatvensterbenadering met behulp van fluorescerende tracers biedt voldoende resolutie voor cochleaire bloedstroom (CoBF) -meting. De methode vergemakkelijkt de studie van structurele en functionele veranderingen in CoBF bij muizen onder normale en pathologische omstandigheden.
Transductie van geluid is metabolisch veeleisend en de normale functie van de microvasculatuur in de laterale wand is van cruciaal belang voor het behoud van endocochleaire potentiaal, ionentransport en vloeistofbalans. Verschillende vormen van gehoorstoornissen worden gemeld met abnormale microcirculatie in het slakkenhuis. Onderzoek naar hoe cochleaire bloedstroom (CoBF) pathologie de gehoorfunctie beïnvloedt, is een uitdaging vanwege het gebrek aan haalbare ondervragingsmethoden en de moeilijkheid om toegang te krijgen tot het binnenoor. Een open vaatvenster in de laterale cochleaire wand, gecombineerd met fluorescentie intravitale microscopie, is gebruikt voor het bestuderen van CoBF-veranderingen in vivo, maar meestal bij cavia’s en pas onlangs bij de muis. Dit artikel en de bijbehorende video beschrijven de open vaatvenstermethode voor het visualiseren van de bloedstroom in het slakkenhuis van de muis. Details omvatten 1) bereiding van de fluorescerend gelabelde bloedcelsuspensie van muizen; 2) constructie van een open vaatvenster voor intravitale microscopie in een verdoofde muis, en 3) meting van de bloedstroomsnelheid en -volume met behulp van een offline opname van de beeldvorming. De methode wordt gepresenteerd in videoformaat om te laten zien hoe de open vensterbenadering in de muis kan worden gebruikt om structurele en functionele veranderingen in de cochleaire microcirculatie onder normale en pathologische omstandigheden te onderzoeken.
De normale functie van de microcirculatie in de laterale cochleaire wand (bestaande uit de meerderheid van de haarvaten in het spiraalvormige ligament en de stria vascularis) is van cruciaal belang voor het behoud van de gehoorfunctie1. Abnormale CoBF is betrokken bij de pathofysiologie van veel binnenooraandoeningen, waaronder lawaai-geïnduceerd gehoorverlies, oorhydrops en presbycusis 2,3,4,5,6,7,8,9. Visualisatie van intravitale CoBF zal een beter begrip mogelijk maken van de verbanden tussen gehoorfunctie en cochleaire vasculaire pathologie.
Hoewel de complexiteit en locatie van het slakkenhuis in het temporale bot directe visualisatie en meting van CoBF uitsluit, zijn er verschillende methoden ontwikkeld voor de beoordeling van CoBF, waaronder laser-doppler flowmetrie (LDF)10,11,12, magnetische resonantie beeldvorming (MRI)13, fluorescentie intravitale microscopie (FIVM)14, fluorescentiemicro-endoscopie (FME)15, endoscopische laser spikkelcontrast beeldvorming (LSCI)16 , en benaderingen op basis van de injectie van gelabelde markers en radioactief gelabelde microsferen in de bloedbaan (optische microangiografie, OMAG)17,18,19,20. Geen van deze methoden heeft echter absolute real-time tracking van veranderingen in CoBF in vivo mogelijk gemaakt, met uitzondering van FIVM. FIVM, in combinatie met een vessel-window in de laterale cochleaire wand, is een aanpak die bij cavia’s onder verschillende experimentele omstandigheden door verschillende laboratoria is gebruikt en gevalideerd 14,21,22.
Een FIVM-methode werd met succes ontwikkeld voor het bestuderen van de structurele en functionele veranderingen in de cochleaire microcirculatie bij muizen met behulp van fluoresceïne-isothiocyanaat (FITC)-dextran als contrastmiddel en een fluorescentiekleurstof – ofwel DiO (3, 3 ′-dioctadecyloxacarbocyanineperchloraat, groen) of Dil (1,1-dioctadecyl-3,3,3-tetramethylindocarbocyanineperchloraat, rood) – voor het vooraf labelen van bloedcellen, het visualiseren van bloedvaten en het volgen van de bloedstroomsnelheid. In deze studie is het protocol van deze methode beschreven voor het afbeelden en kwantificeren van veranderingen in CoBF bij muizen onder normale en pathologische omstandigheden (zoals na blootstelling aan lawaai). Deze techniek geeft de onderzoeker de tools die nodig zijn om de onderliggende mechanismen van CoBF met betrekking tot gehoordisfunctie en pathologie in de stria vascularis te onderzoeken, vooral wanneer toegepast in combinatie met direct beschikbare transgene muismodellen.
Dit artikel laat zien hoe haarvaten in de cochleaire laterale wand (en in de stria vascularis) van een muismodel kunnen worden gevisualiseerd met fluorofooretikettering in een open vaatvenstervoorbereiding onder een FIVM-systeem. Muismodel wordt veel gebruikt en heeft de voorkeur als zoogdiermodel voor het onderzoeken van de menselijke gezondheid en ziekte. Het hier beschreven protocol is een haalbare benadering voor het afbeelden en onderzoeken van CoBF in de zijwand van de muis (met name in de stria vascularis) met beh…
The authors have nothing to disclose.
Dit onderzoek werd ondersteund door NIH/NIDCD R21 DC016157 (X.Shi), NIH/NIDCD R01 DC015781 (X.Shi), NIH/NIDCD R01-DC010844 (X.Shi) en Medical Research Foundation van Oregon Health and Science University (OHSU) (X.Shi).
0.9% Sodium Chloride | Hospira | NDC 0409-1966-02 | 0.6 mL (for 1 mL) |
1,1′-Dioctadecyl-3,3,3′,3′-tetramethylindocarbocyanine perchlorate | Sigma Aldrich | 468495 | 20 µM |
3,3′-Dioctadecyloxacarbocyanine perchlorateDio (3,3′-Dioctadecyloxacarbocyanine perchlorate | Sigma Aldrich | D4292 | 20 µM |
CODA Monitor system | Kent scientific | CODA Monitor, for monitoring blood pressure and heartbeat | |
Coverslip | Fisher Scientific | 12-542A | |
DC Temperature Controller | FHC | 40-90-8D | |
Fiji/ImageJ | NIH | Measurement of vessel diameter | |
FITC-dextran (2000 kDa) | Sigma Aldrich | FD2000s | 40 mg/mL |
Heparin Sodium Injection, USP MDV | Mylan | NDC 67457-374-12 | 5000 USP units/mL |
Katathesia (100 mg/mL) | Henry Schein | NDC 11695-0702-1 | 0.2 mL (for 1 mL) |
Microscope Objective | Mitutoyo | 378-823-5 | Model: M Plan Apo NIR 10x |
ORCA-ER Camera | Hamamatsu | Model: C4742-80-12AG | |
PBS | Gibco | 2085387 | |
Xyzaine (100 mg/ml, 5x diluted for use ) | Lloyd | LPFL04821 | 0.2 mL (for 1 mL) |
Zoom Stereo Microscope | Olympus | Model: SZ61, fluorescent microscope |