Summary

En Syngeneic Murine Modell av Endometriosis ved hjelp av naturlig sykling mus

Published: November 24, 2020
doi:

Summary

Mange gnagermodeller av endometriosis er begrenset av teknisk kompleksitet, reproduserbarhet og / eller behov for immunkompromitterte dyr eller spesielle reportermus. Vi presenterer et forenklet system for lesjonsinduksjon ved hjelp av en eksperimentell mus med et uavhengig verifiserbart, objektivt poengsystem og uten krav om ovariektomi eller overlevelseskirurgi.

Abstract

Endometriosis er en ledende årsak til bekkensmerter og infertilitet. Det er definert av tilstedeværelsen av endometrial vev i ekstrauterine steder. Utviklingen av nye terapier og diagnostiske verktøy for endometriosis har delvis vært begrenset på grunn av utfordringer med å studere sykdommen. Utenfor primater, få pattedyr menstruerer, og ingen utvikler spontan endometriosis. Gnagermodeller er populære, men krever kunstig induksjon av endometriosis, med mange som bruker enten immunkompromitterte mus eller kirurgisk indusert sykdom. Nylig har det blitt gitt mer oppmerksomhet til modeller som involverer intraperitoneal injeksjon. Vi presenterer en murine modell av endometriosis som integrerer flere funksjoner av eksisterende endometriosis modeller i en ny, forenklet system som er avhengig av mikroskopisk kvantifisering i stedet for subjektiv gradering. I denne modellen utfører vi hormonell stimulering av donormus, intraperitoneal injeksjon, systematisk abdominal undersøkelse og vevshøsting, og histopologisk kvantifisering som kan utføres og verifiseres når som helst etter nekropsi. Denne modellen krever minimale ressurser og opplæring; krever ikke ekspertise fra laboratorieteknikere i murin overlevelse kirurgi eller i identifisering av brutto endometriotic lesjoner; kan brukes i immunkompromitterte, immunkompompente og/eller mutante mus; og skaper pålitelig endometriotiske lesjoner som er histologisk i samsvar med menneskelig endometriotisk sykdom.

Introduction

Endometriosis er en gåtefull sykdom i den kvinnelige reproduktive kanalen med betydelige økonomiske og helsemessige byrder på kvinner1,2. Etiologien til endometriosis er ikke helt forstått, og flere forklaringer er foreslått, inkludert coelomic metaplasi, embryonale Müllerian hviler, rekruttering av benmarg avledet stamceller, og retrograd menstruasjon3. Mens flere aspekter av disse foreslåtte mekanismene kan være involvert, og ingen enkelt forklaring kan redegjøre for alle former for sykdommen, er den ledende modellen for endometriosis patogenese retrograd menstruasjon. Retrograd menstruasjon er passasjen av menstruasjonsavløp gjennom egglederne og inn i bukhulen; det er anslått at 90% av menstruerende kvinner regelmessig gjennomgår retrograd menstruasjon4,5. Gitt dette vanlige fenomenet retrograd menstruasjon, hvorfor endometriosis utvikler seg bare i en undergruppe av kvinner er uklart5. For bedre å forstå etiologien til denne sykdommen, er direkte menneskelige studier ikke gjennomførbare og dyrestudier er berettiget.

Endometriosis er en utfordring både å behandle og studere. Utbredelse av sykdommen er ikke kjent, men anslått til å være 10%1. Mens noen avanserte typer endometriosis kan identifiseres nøyaktig gjennom ikke-invasiv avbildning, oppnås en definitiv diagnose bare gjennom histopatologiske analyser av kirurgisk oppnådde biopsiprøver; lesjoner som visuelt ser ut til å være syke, kan faktisk være fibrose eller arrdannelse fra andre årsaker6. Alvorlighetsgrad og omfang av sykdom samsvarer ikke med symptomatologi7.

Endometriosis lesjoner består av heterogene celletyper og populasjoner som samhandler på komplekse måter innenfor mikromiljøet, og begrenser derfor nytten av cellulære modeller8,9. In vivo-modeller eksisterer, men disse har iboende utfordringer og begrensninger10,11,12. Primatmodeller er ideelle, men er ofte ikke gjennomførbare13,14,15. Få ikke-primatpattedyr menstruerer og utvikler endometriosis spontant16. Gnagermodeller av endometriosis eksisterer, men hver har begrensninger17. Mange av disse modellene krever overlevelseskirurgi for å suturere eller implantere endometrial vev i donormottakerveggen eller tarmen, legge til teknisk kompleksitet, behov for anestesi og forvirrende immunfaktorer fra selve operasjonen18,19,20. I tillegg krever mange modeller ovariektomi og østrogentilskudd; mens du øker lesjonsutbyttet, legger dette til tid, utgifter og ytterligere overlevelseskirurgi. Intraperitoneale (IP) injeksjonsmodeller krever ikke anestesi eller overlevelseskirurgi, og disse modellene simulerer logisk retrograd menstruasjon bedre enn suturing modeller21,22,23. De fleste IP-modeller er imidlertid gjenstand for mer variasjon i lesjonsplassering på grunn av den tilfeldige spredningen av endometriefragmenter etter injeksjon og derfor til mer skjevhet i lesjonsidentifikasjon og måling.

Her presenterer vi en murine modell av endometriosis som integrerer flere funksjoner i eksisterende endometriosis modeller i en ny, forenklet og effektivt system som er avhengig av mikroskopisk kvantifisering i stedet for subjektiv gradering.

Protocol

MERK: Bruken av dyr i denne studien ble godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) ved Cleveland Clinic Lerner Research Institute. Alle offentlig tilgjengelige standarder for dyrepleie og bruk ble utført etter retningslinjer fra National Institutes of Health. Denne prosedyren bruker aseptiske teknikker. Petri-parabolen er steril. PBS/saltvann som brukes er steril. De kirurgiske instrumentene for nekropsi og vev disseksjon steriliseres via autoklav. Vi bruker 70% EtOH på instrumentene mellom dyresa…

Representative Results

For et første konseptbeviseksperiment ble donor endometrium fra RFP-mus injisert i wildtype mottakermus. H&E-farging avslørte histopatologisk bekreftelse på klassisk arkitektur av endometriosis lesjon (Figur 3A). Fluorescerende mikroskopi bekreftet at den aktuelle observerte lesjonen stammer fra donoren (figur 3B). Det andre eksperimentet ble utført ved hjelp av 10 wildtype C57BL/6J donorer og 10 mottakere. Ytterligere 5 mottakere…

Discussion

Vår studie viser at endometriosis kan på en pålitelig måte induseres hos mus uten å kreve bruk av ovariectomy og / eller overlevelse kirurgi, og at ektopiske endometrial lesjoner kan identifiseres og kvantifiseres ved hjelp av en standardisert undersøkelse av magen og histopologisk analyse.

Mange murine studier av endometriosis utnytte kirurgisk indusert endometriosis der donor endometrium er s…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil takke medlemmene av Reizes-laboratoriet for deres kritiske gjennomgang og innsikt under utarbeidelsen av manuskriptet, samt Imaging and Histology-kjernene ved Lerner Research Institute for deres hjelp til datainnsamling og dataanalyse. Dette arbeidet ble støttet gjennom en intern bevilgning gjennom Forskningsprogramkomiteen ved Cleveland Clinic og av et eksternt tilskudd gjennom Society for Reproductive Investigation og Bayer. Forskning i Reizes Laboratory er også finansiert gjennom VeloSano Bike to Cure, Center of Research Excellence in Gynecologic Cancer, og gjennom Laura J. Fogarty Endowed Chair for Uterine Cancer Research. Cleveland Clinic eier opphavsrettstillatelsen for figur 1 og figur 2.

Materials

Supplies for injecting PMSG into donor mouse
1 mL Tuberculin syringe with 27G needle Fisher Scientific 14-826-87
Pregnant mare serum gonadotropin Sigma-Aldrich 9002-70-4
Supplies for necropsy of donor mouse and tissue processing
6” serrated forceps, curved tip Electron Microscopy Sciences 72993-6C
70% ethanol solution Pharmco 33000HPLCCS4L 70% solution dilute ethyl acetate 200 proof
Analytical balance Mettler Toledo ME54TE
Carbon dioxide TriGas Supplier
Dissecting tray Fisher Scientific S14000
No. 10 disposable scalpel Fisher Scientific NC9999403
Scissors, curved Electron Microscopy Sciences 72941
Scissors, straight Electron Microscopy Sciences 72940
Stereo microscope Leica Microsystems Leica SE 4 For tissue dissection
Sterile phosphate buffered saline (PBS) Institutional core facility supplies
Surgical instrument sterilization tray Electron Microscopy Sciences 66112-02
Tissue culture dishes Fisher Scientific 08-772E
Weighing dishes Fisher Scientific 02-202-103
Supplies for injecting into recipient mouse
1 cc syringe BD Biosciences 301025
18 G needle Fisher Scientific 148265d
200 uL pipette tip Fisher Scientific 02-707-422
Double distilled water Institutional core facility supplies
Latex bulb Fisher Scientific 03-448-21
Micro cover glass slip VWR 48366-067
Microscope slide Fisher Scientific 12-544-7
Standard light microscope Leica Microsystems DM IL For evaluating vaginal cytology smears
Supplies for harvesting tissue from recipient mouse
10% Buffered formalin Fisher Scientific SF100-4
Biopsy foam pads Fisher Scientific 22-038-222
Precision Digital Calipers Electron Microscopy Sciences 62065-40
Processing/embedding cassettes Fisher Scientific 22-272416

References

  1. Zondervan, K. T., Becker, C. M., Missmer, S. A. Endometriosis. England Journal of Medicine. 382 (13), 1244-1256 (2020).
  2. Schwartz, K., Llarena, N. C., Rehmer, J. M., Richards, E. G., Falcone, T. The role of pharmacotherapy in the treatment of endometriosis across the lifespan. Expert Opinion on Pharmacotherapy. 21 (8), 893-903 (2020).
  3. Giudice, L. C. Clinical practice. Endometriosis. New England Journal of Medicine. 362 (25), 2389-2398 (2010).
  4. D’Hooghe, T. M., Debrock, S. Endometriosis, retrograde menstruation and peritoneal inflammation in women and in baboons. Human Reproduction Update. 8 (1), 84-88 (2002).
  5. Ahn, S. H., et al. Pathophysiology and immune dysfunction in endometriosis. BioMed Research International. 2015, (2015).
  6. Falcone, T., Flyckt, R. Clinical management of endometriosis. Obstetrics and Gynecology. 131 (3), 557-571 (2018).
  7. Vercellini, P., et al. Association between endometriosis stage, lesion type, patient characteristics and severity of pelvic pain symptoms: a multivariate analysis of over 1000 patients. Human Reproduction. 22 (1), 266-271 (2007).
  8. Bulun, S. E., et al. Endometriosis. Endocrine Reviews. 40 (4), 1048-1079 (2019).
  9. Brueggmann, D., et al. Novel three-dimensional in vitro models of ovarian endometriosis. Journal of Ovarian Research. 7, 17 (2014).
  10. Dodds, K. N., Beckett, E. A. H., Evans, S. F., Hutchinson, M. R. Lesion development is modulated by the natural estrous cycle and mouse strain in a minimally invasive model of endometriosis. Biology of Reproduction. 97 (6), 810-821 (2017).
  11. Martinez, J., Bisbal, V., Marin, N., Cano, A., Gómez, R. Noninvasive monitoring of lesion size in a heterologous mouse model of endometriosis. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (144), (2019).
  12. Pelch, K. E., Sharpe-Timms, K. L., Nagel, S. C. Mouse model of surgically-induced endometriosis by auto-transplantation of uterine tissue. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (59), e3396 (2012).
  13. Nishimoto-Kakiuchi, A., et al. Spontaneous endometriosis in cynomolgus monkeys as a clinically relevant experimental model. Human Reproduction. 33 (7), 1228-1236 (2018).
  14. Nair, H. B., et al. An efficient model of human endometriosis by induced unopposed estrogenicity in baboons. Oncotarget. 7 (10), 10857-10869 (2016).
  15. Laganà, A. S., et al. Translational animal models for endometriosis research: a long and windy road. Annals of Translational Medicine. 6 (22), 431 (2018).
  16. Bellofiore, N., et al. First evidence of a menstruating rodent: the spiny mouse (Acomys cahirinus). Amercian Journal of Obstetrics and Gynecology. 216 (1), 1-11 (2017).
  17. Bruner-Tran, K. L., Mokshagundam, S., Herington, J. L., Ding, T., Osteen, K. G. Rodent models of experimental endometriosis: identifying mechanisms of disease and therapeutic targets. Current Women’s Health Reviews. 14 (2), 173-188 (2018).
  18. Bilotas, M. A., et al. Interplay between endometriosis and pregnancy in a mouse model. PloS One. 10 (4), 0124900 (2015).
  19. Peterse, D., et al. Of mice and women: a laparoscopic mouse model for endometriosis. Journal of Minimally Invasive Gynecology. 25 (4), 578-579 (2018).
  20. Richards, E. G., et al. KLF11 is an epigenetic mediator of DRD2/dopaminergic signaling in endometriosis. Reproductive Sciences. 224 (8), 1129-1138 (2017).
  21. Jones, R. L., Lang, S. A., Kendziorski, J. A., Greene, A. D., Burns, K. A. Use of a Mouse Model of Experimentally Induced Endometriosis to Evaluate and Compare the Effects of Bisphenol A and Bisphenol AF Exposure. Environmental Health Perspectives. 126 (12), 127004 (2018).
  22. Greaves, E., et al. A novel mouse model of endometriosis mimics human phenotype and reveals insights into the inflammatory contribution of shed endometrium. The American Journal of Pathology. 184 (7), 1930-1939 (2014).
  23. Nothnick, W. B., Graham, A., Holbert, J., Weiss, M. J. miR-451 deficiency is associated with altered endometrial fibrinogen alpha chain expression and reduced endometriotic implant establishment in an experimental mouse model. PloS One. 9 (6), 100336 (2014).
check_url/kr/61960?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Richards, E. G., Rehmer, J. M., Mathes, M. A., Esakov, E. L., Braley, C., Joehlin-Price, A., Chiesa-Vottero, A., Reizes, O. A Syngeneic Murine Model of Endometriosis using Naturally Cycling Mice. J. Vis. Exp. (165), e61960, doi:10.3791/61960 (2020).

View Video