JoVE Journal > Medicine
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Results
Discussion
Disclosures
Acknowledgements
Materials
References
자동 번역
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
의학

Vruchtbaarheidsbehoud door oöcyt vitrificatie: klinische en laboratoriumperspectieven

Published: September 16, 2021
doi:
10.3791/61963
, , , , , , ,
1Clinica Valle Giulia,GeneraLife IVF

Summary

Oöcyt cryopreservatie wordt erkend door verschillende internationale wetenschappelijke verenigingen als de gouden standaard voor vruchtbaarheidsbehoud bij postpubertale vrouwen. De aangewezen klinische en laboratoriumstrategieën verzekeren maximumeffectiviteit, efficiency, en veiligheid van vruchtbaarheidsbehoudsbehandelingen.

Abstract

Het behoud van de vruchtbaarheid van vrouwen is cruciaal in een multifunctioneel gezondheidszorgsysteem dat zorgt voor de toekomstige kwaliteit van leven van patiënten. Oöcyt cryopreservatie wordt erkend door verschillende internationale wetenschappelijke verenigingen als de gouden standaard voor vruchtbaarheidsbehoud bij postpubertale vrouwen, voor zowel medische als niet-medische indicaties. De belangrijkste medische indicaties zijn oncologische ziekten, gynaecologische ziekten zoals ernstige endometriose, systemische ziekten die de eierstokreserve in gevaar brengen en genetische aandoeningen met voortijdige menopauze. Dit document beschrijft het gehele klinische en laboratoriumwerk van een behandeling van het vruchtbaarheidsbehoud door aanbevelingen voor objectieve en bewijsmateriaal-gebaseerde begeleiding te beschrijven. Bovendien richt het zich op de effectiviteit van de procedure en beschrijft het de meest geschikte strategieën om de ovariële reserve volledig te benutten en het aantal teruggewonnen oöcyten in de kortst mogelijke tijd te maximaliseren. De evaluatie van de ovariële reserve, de definitie van een ideaal stimulatieprotocol, evenals het ophalen van oöcyten, denudatie en vitrificatieprocedures zijn gedetailleerd, samen met benaderingen om hun effectiviteit, efficiëntie en veiligheid te maximaliseren.

Introduction

De ontwikkeling en implementatie van een efficiënt cryopreservatieprogramma voor menselijke oöcyten is een belangrijke doorbraak geweest in de reproductieve geneeskunde. Volgens recent bewijs is vitrificatie de meest effectieve strategie om cryopreserve metaphase II (MII) oöcyten te cryopreserve, omdat het resulteert in statistisch hogere overlevingspercentages in vergelijking met langzaam bevriezen, onafhankelijk van de patiëntenpopulatie (onvruchtbare patiënten of oöcytdonatieprogramma)1,2,3. De opmerkelijke verwezenlijkingen van oöcyt vitrification leidden de Praktijkcommissies van de Amerikaanse Maatschappij voor Reproductieve Geneeskunde (ASRM) en de Maatschappij voor Geassisteerde Reproductieve Technologie (SART) om deze techniek uit te spreken om het meest efficiënt voor electieve vruchtbaarheidsbehoud in postpubertal vrouwen, voor zowel medische als niet-medische aanwijzingen4,5,6uit te spreken . Medische indicaties voor vruchtbaarheidsbehoud omvatten (i) kanker en auto-immuunziekten die therapieën7 vereisen, zoals radiotherapie, cytotoxische chemotherapie en endocriene therapie (waarvan het schadelijke effect op de eierstokreserve geassocieerd is met de leeftijd van de moeder, evenals het type en de dosis van de behandeling); ii) eierstokaandoeningen waarvoor herhaalde of radicale chirurgie nodig is (zoals endometriose)8; en iii) genetische aandoeningen (bijv. X-fragile) of voortijdig eierstokfalen. Bovendien is vruchtbaarheidsbehoud een waardevolle optie geworden voor alle vrouwen die hun ouderlijke doelstelling om niet-medische redenen (ook bekend als sociale bevriezing) niet hebben bereikt.

Ongeacht de indicatie voor vruchtbaarheidsbehoud en volgens de belangrijkste internationale richtlijnen voor vruchtbaarheidsbehoud, moeten alle patiënten die bereid zijn hun oöcyten te vitriferen, passende begeleiding krijgen om te worden geïnformeerd over hun realistische kans op succes, de kosten, risico’s en beperkingen van de procedure9,10,11,12,13. Het belangrijkste is dat het duidelijk moet zijn dat het vitrificeren van een cohort MII-oöcyten geen zwangerschap garandeert, maar dat het een grotere kans van slagen biedt voor toekomstige in-vitrofertilisatiebehandeling (IVF), indien nodig14. In dit opzicht is de leeftijd van de vrouw op het moment van oöcyt vitrificatie zeker de belangrijkste beperkende factor15, aangezien gevorderde moederleeftijd (AMA; >35 jaar) de belangrijkste oorzaak is van vrouwelijke onvruchtbaarheid16. Naast een progressieve vermindering van de ovariële reserve, ama wordt geassocieerd met een aantasting van oöcyt competentie als gevolg van defecte fysiologische paden zoals metabolisme, epigenetische regulatie, celcyclus checkpoints, en meiotische segregatie17. Daarom hangt het redelijke aantal eieren tot vitrify voornamelijk af van de leeftijd van de moeder. Bij vrouwen jonger dan 36 jaar zijn ten minste 8-10 MII-oöcyten18 nodig om de kans op succes te maximaliseren. Over het algemeen geldt: hoe hoger het aantal verglaasde oöcyten, hoe groter de kans op succes. Daarom is het aanpassen van ovariële stimulatie op basis van ovariële reservemarkers zoals anti-Mülleriaanse hormoonspiegels (AMH) of antrale follikeltelling (AFC) cruciaal om de ovariële reserve in de kortst mogelijke tijd volledig te benutten.

De veiligheid van de gehele procedure is het andere belangrijke punt bij het inschrijven van patiënten voor vruchtbaarheidsbehoud. Clinici moeten de beste strategieën gebruiken om de risico’s te minimaliseren en (i)ovariële hyperstimulatiesyndroom (OHSS) te voorkomen door veilige benaderingen te gebruiken, zoals het gonadotrofine-releasing hormone (GnRH) antagonistprotocol gevolgd door een GnRH-agonist trigger19 en (ii) het afgelegen, maar mogelijk, risico op peritoneale bloedingen, letsel aan de bekkenstructuren (ureter, darm, appendix, zenuwen) of bekkeninfectie tijdens het ophalen van oöcyten. Ten slotte worden (iii) traditionele stimulatieschema’s geassocieerd met suprafysiologisch serumestradiol en worden daarom niet aanbevolen bij oestrogeengevoelige ziekten zoals borstkanker. Protocollen met aromataseremmers (zoals letrozol of tamoxifen) zijn in deze gevallen geschikter20,21. In de laboratoriumomgeving is het meest wijdverspreide protocol voor oöcyt vitrificatie nog steeds het protocol dat voor het eerst werd beschreven door Kuwayama en collega’s2,23, dat bestaat uit een stapsgewijze procedure waarbij cryoprotectiva (CPA’s) geleidelijk worden toegevoegd. In de eerste fase (evenwicht/uitdroging) worden oöcyten blootgesteld in een CPA-oplossing die 7,5% v/v ethyleenglycol en 7,5% v/v dimethylsulfoxide (DMSO) bevat, terwijl in de tweede fase oöcyten worden verplaatst naar een vitrificatieoplossing met 15% v/v ethyleenglycol en 15% v/v DMSO, plus 0,5 mol/L-sucrose. Na een korte incubatie in het medium vitrificatie kunnen de oöcyten in speciaal ontworpen, open cryodevicen worden geplaatst en uiteindelijk in vloeibare stikstof bij -196 °C worden gedompeld om tot gebruik te worden opgeslagen.

Hier is het gehele klinische en laboratoriumwerk van een vruchtbaarheidsbehoudsbehandeling beschreven door (i) aanbevelingen voor objectieve en evidence-based counseling, (ii) gericht op de kosteneffectiviteit van de procedure, en (iii) het beschrijven van de meest geschikte strategieën om de ovariële reserve volledig te benutten en het aantal teruggewonnen oöcyten in de kortst mogelijke tijd te maximaliseren. De evaluatie van de ovariële reserve, de definitie van een ideaal stimulatieprotocol, evenals het ophalen van oöcyten, denudatie en vitrificatieprocedures zullen worden gedetailleerd, samen met benaderingen om hun effectiviteit, efficiëntie en veiligheid te maximaliseren. Aangezien er andere protocollen of aanpassingen van dit protocol in de literatuur bestaan, zijn de representatieve resultaten en de discussiesecties van dit manuscript alleen van toepassing op deze procedure.

Protocol

1. Work-up en klinische counseling OPMERKING: In het geval van patiënten die om oncologische redenen vruchtbaarheidsbehoud nodig hebben, zorg er dan voor dat er geen wachtlijst is voor het plannen van overleg en dat de afspraak zo snel mogelijk wordt verstrekt. Bekijk de medische geschiedenis en eerdere documentatie en beoordeel de algemene gezondheidstoestand van de patiënt. Noteer alle informatie (inclusief de toestemming van de oncoloog om eierstokstimulatie te onderga…

Representative Results

Overzicht van het vruchtbaarheidsbehoudsprogramma in het centrum Over een periode van 12 jaar (2008-2020) ondergingen 285 vrouwen ten minste één oöcytterugwinning die de vitrificatie van het hele cohort van verzamelde volwassen eieren met zich meebracht. De meeste van deze vrouwen (n =250) ondergingen een enkele retrieval, en 35 ondergingen meerdere retrievals. De redenen voor het ophalen van oöcyten voor eier vitrificatie zijn samengevat in 4 categorieën: medisch (behalv…

Discussion

Klinische overwegingen

Hoewel de opkomende strategieën, zoals ovariële weefsel cryopreservatie en in vitro rijping zijn onderzocht, is oöcyt vitrification na COS de gouden standaardtechniek voor vruchtbaarheidsbehoud. In dit scenario moet het aantal teruggewonnen oöcyten en cryopreserved in de kortst mogelijke tijd worden gemaximaliseerd, omdat de meeste kankerpatiënten slechts baat kunnen hebben bij één eierstokcyclus voordat ze met hun kankerbehandeling(en) moeten be…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Geen

Materials

Collection
Equipment
Hot plate IVF TECH
Lab Markers Sigma Aldrich
Laminar Flow Hood IVF TECH Grade A air flow
Stereomicroscope Leica Leica M80
Thermometer
Test tube Warmer
Tri-gas incubator Panasonic MCO-5M-PE 02/CO2
Vacuum Pump Cook K-MAR-5200
Consumables
CSCM (Continuos single culture complete) medium Fujifilm Irvine Scientific 90165 IVF culture medium supplemented with HSA
Mineral Oil for embryo culture Fujifilm Irvine Scientific 9305
Ovum Aspiration Needle (Single lumen) Cook K-OSN-1730-B-60
Primaria Dish Corning 353803 Corning Primaria Dish 100×20 mm style standard cell culture dish
Round- bottom tubes Falcon 352001 Falcon 14ml Round Bottom Polystyrene Test tube with snap cap
Round- bottom tubes Falcon 352003 Oocyte collection tubes/ Falcon 5ml 12×75 Round Bottom Polipropilene Test tube with snap cap
Rubber Bulb Sigma Aldrich Z111589-12EA
Sterile glass Pasteur pipettes Hunter Scientific PPB150-100PL Pipette Pasteur Cotonate, 150mm, MEA e CE
Denudation
Equipment
CO2 incubator Eppendorf Galaxy 14S
Flexipet adjustable handle set Cook G18674 Stripper  holder
Gilson Pipetman Gilson 66003 p20
k-System Incubator Coopersurgical G210Invicell
Lab Markers Sigma Aldrich
Laminar Flow Hood IVF TECH Grade A air flow
Stereomicroscope Leica Leica M80
Consumables
Biopur epTIPS Rack Eppendorf 30075331 Micropipettes epTIPS Biopur 2-200 µl
Human Serum Albumin thermoFisher Scietific 9988
Hyaluronidase Fujifilm Irvine Scientific 90101 80 IU/mL of hyaluronidase enzyme in HEPES-buffered HTF
IVF culture dish (60 x 15mm) Corning 353802 Corning Primaria Falcon Dish 60X15mm TC Primaria standard cell culture dish
IVF dish 4-well plate with sliding lid ThermoFisher Scietific 176740 Multidishes 4 wells (Nunc)
IVF One well dish Falcon 353653 Falcon 60 x 15 mm TC treated center-well IVF
Mineral Oil for embryo culture Fujifilm Irvine Scientific 9305
Modified HTF Medium Fujifilm Irvine Scientific 90126 HEPES-Buffered medium
Rubber Bulb Sigma Aldrich Z111589-12EA 1 mL for pasteur pipettes
Sterile glass Pasteur pipettes Hunter Scientific PPB150-100PL Pipette Pasteur Cotonate, 150 mm, MEA e CE
stripping pipette  tips (140 µm) Cook K-FPIP-1140-10BS-6 PIPETTE FLEXIPETS PER DENUDING
stripping pipette tips (130 µm ) Cook K-FPIP-1130-10BS-7 PIPETTE FLEXIPETS PER DENUDING
stripping pipette tips (170 µm) Cook K-FPIP-1170-10BS-5 PIPETTE FLEXIPETS PER DENUDING
Vitrification
Equipment
Electronic Timer
Flexipet adjustable handle set Cook G18674 Stripper  holder
Gilson Pipetman Gilson F123601 p200
Lab Markers Sigma Aldrich
Laminar Flow Hood IVF TECH Grade A air flow
Stainless Container for Cooling Rack Kitazato Liquid nitrogen container for vitrification
Stereomicroscope Leica Leica M80
Consumables
Biopur epTIPS Rack Eppendorf 30075331 Micropipettes epTIPS Biopur 2-200 µL
Human Serum Albumin Fujifilm Irvine Scientific 9988
IVF culture dish (60 x 15 mm) Corning 353802 Corning Primaria Falcon Dish 60 x 15 mm TC Primaria standard cell culture dish
IVF dish 6-well Oosafe OOPW-SW02 OOSAFE 6 WELL DISH WITH STRAW HOLDER
Modified HTF Medium Fujifilm Irvine Scientific 90126 HEPES-Buffered medium
stripping pipette tips (170 µm) Cook K-FPIP-1170-10BS-5 PIPETTE FLEXIPETS PER DENUDING
Vitrification Freeze kit Fujifilm Irvine Scientific 90133-so 2 Vials of ES (Equilibration Solution, 2 x 1 mL) and 2 Vials of VS (Vitrification Solution, 2 x 1 mL)
Vitrifit Coopersurgical Origio 42782001A VitriFit  Box
Warming
Equipment
Electronic Timer
Flexipet adjustable handle set Cook G18674 Stripper  holder
Gilson Pipetman Gilson F123601 p200
k-System Incubator Coopersurgical G210Invicell
Lab Markers Sigma Aldrich
Laminar Flow Hood IVF TECH Grade A air flow
Stainless Container for Cooling Rack Kitazato Liquid nitrogen container for vitrification
Stereomicroscope Leica Leica M80
Consumables
Biopur epTIPS Rack Eppendorf 30075331 Micropipettes epTIPS Biopur 2-200 µL
CSCM (Continuos single culture complete) medium Fujifilm Irvine Scientific 90165 IVF culture medium supplemented with HSA
IVF culture dish (60 x 15 mm) Corning 353802 Corning Primaria Falcon Dish 60X15mm TC Primaria standard cell culture dish
IVF dish 4-well plate with sliding lid ThermoFisher Scietific 176740 Multidishes 4 wells (Nunc)
IVF dish 6-well Oosafe OOPW-SW02 OOSAFE® 6 WELL DISH WITH STRAW HOLDER
Mineral Oil for embryo culture Fujifilm Irvine Scientific 9305
SAtripping pipette tips (300µm) Cook K-FPIP-1300-10BS-5 PIPETTE FLEXIPETS PER DENUDING
Vitrification Thaw kit Fujifilm Irvine Scientific 90137-so 4 Vials of TS (Thawing Solution, 4 x 2 mL) + 1 Vial of DS (Dilution Solution, 1 x 2 mL) +1 Vial of WS (Washing Solution, 1 x 2 mL)
DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Cobo, A., Diaz, C. Clinical application of oocyte vitrification: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Fertility and Sterility. 96 (2), 277-285 (2011).
  2. Rienzi, L., et al. Oocyte, embryo and blastocyst cryopreservation in ART: systematic review and meta-analysis comparing slow-freezing versus vitrification to produce evidence for the development of global guidance. Human Reproduction Update. 23 (2), 139-155 (2017).
  3. Nagy, Z. P., Anderson, R. E., Feinberg, E. C., Hayward, B., Mahony, M. C. The Human Oocyte Preservation Experience (HOPE) Registry: evaluation of cryopreservation techniques and oocyte source on outcomes. Reproductive Biology and Endocrinology. 15 (1), (2017).
  4. Practice Committees of American Society for Reproductive, M., & Society for Assisted Reproductive, T. Mature oocyte cryopreservation: a guideline. Fertility and Sterility. 99 (1), 37-43 (2013).
  5. Lee, S. J., et al. American Society of Clinical Oncology recommendations on fertility preservation in cancer patients. Journal of Clinical Oncology. 24 (18), 2917-2931 (2006).
  6. Nakayama, K., Ueno, N. T. American Society of Clinical Oncology recommendations on fertility preservation should be implemented regardless of disease status or previous treatments. Journal of Clinical Oncology. 24 (33), 5334-5335 (2006).
  7. Martinez, F. Update on fertility preservation from the Barcelona International Society for Fertility Preservation-ESHRE-ASRM 2015 expert meeting: indications, results and future perspectives. Human Reproduction. 32 (9), 1802-1811 (2017).
  8. Lantsberg, D., Fernando, S., Cohen, Y., Rombauts, L. The role of fertility preservation in women with endometriosis: a systematic review. Journal of Minimally Invasive Gynecology. 27 (2), 362-372 (2020).
  9. Anderson, R. A., et al. Cancer treatment and gonadal function: experimental and established strategies for fertility preservation in children and young adults. Lancet Diabetes & Endocrinology. 3 (7), 556-567 (2015).
  10. Lambertini, M., et al. Cancer and fertility preservation: international recommendations from an expert meeting. BMC Medicine. 14, 1 (2016).
  11. Kim, S. J., Kim, S. K., Lee, J. R., Suh, C. S., Kim, S. H. Oocyte cryopreservation for fertility preservation in women with ovarian endometriosis. Reproductive Biomedicine Online. 40 (6), 827-834 (2020).
  12. Loren, A. W., et al. Fertility preservation for patients with cancer: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline update. Journal of Clinical Oncology. 31 (19), 2500-2510 (2013).
  13. Peccatori, F. A., et al. Cancer, pregnancy and fertility: ESMO Clinical Practice Guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Annals of Oncology. 24, 160-170 (2013).
  14. Dondorp, W. J., De Wert, G. M. Fertility preservation for healthy women: ethical aspects. Human Reproduction. 24 (8), 1779-1785 (2009).
  15. Cil, A. P., Bang, H., Oktay, K. Age-specific probability of live birth with oocyte cryopreservation: an individual patient data meta-analysis. Fertilility and Steriityl. 100 (2), 492-499 (2013).
  16. Ubaldi, F. M., et al. Advanced maternal age in IVF: still a challenge? The present and the future of its treatment. Frontiers in Endocrinology. 10, 94 (2019).
  17. Cimadomo, D., et al. Impact of maternal age on oocyte and embryo competence. Frontiers in Endocrinology. 9, 327 (2018).
  18. Cobo, A., et al. Oocyte vitrification as an efficient option for elective fertility preservation. Fertility and Sterility. 105 (3), 755-764 (2016).
  19. Devroey, P., Polyzos, N. P., Blockeel, C. An OHSS-Free Clinic by segmentation of IVF treatment. Human Reproduction. 26 (10), 2593-2597 (2011).
  20. Sonigo, C., et al. Impact of letrozole supplementation during ovarian stimulation for fertility preservation in breast cancer patients. European Journal of Obstetrics & Gynecology and Reproductive Biology X. 4, 100049 (2019).
  21. Marklund, A., et al. Efficacy and safety of controlled ovarian stimulation using GnRH antagonist protocols for emergency fertility preservation in young women with breast cancer-a prospective nationwide Swedish multicenter study. Human Reproduction. 35 (4), 929-938 (2020).
  22. Kuwayama, M. Highly efficient vitrification for cryopreservation of human oocytes and embryos: the Cryotop method. Theriogenology. 67 (1), 73-80 (2007).
  23. Kuwayama, M., Vajta, G., Kato, O., Leibo, S. P. Highly efficient vitrification method for cryopreservation of human oocytes. Reproductive Biomedicine Online. 11 (3), 300-308 (2005).
  24. Bosch, E., et al. ESHRE guideline: ovarian stimulation for IVF/ICSI(dagger). Human Reproduction Open. 2020 (2), (2020).
  25. ESHRE Working Group on Ultrasound in ART. Recommendations for good practice in ultrasound: oocyte pick up(dagger). Human Reproduction Open. 2019 (4), 025 (2019).
  26. Rienzi, L., et al. Failure mode and effects analysis of witnessing protocols for ensuring traceability during IVF. Reproductive Biomedicine Online. 31 (4), 516-522 (2015).
  27. Mazzilli, R., et al. Effect of the male factor on the clinical outcome of intracytoplasmic sperm injection combined with preimplantation aneuploidy testing: observational longitudinal cohort study of 1,219 consecutive cycles. Fertility and Sterility. 108 (6), 961-972 (2017).
  28. Polyzos, N. P., et al. Cumulative live birth rates according to the number of oocytes retrieved after the first ovarian stimulation for in vitro fertilization/intracytoplasmic sperm injection: a multicenter multinational analysis including approximately 15,000 women. Fertility and Steriityl. 110 (4), 661-670 (2018).
  29. Alteri, A., Pisaturo, V., Nogueira, D., D’Angelo, A. Elective egg freezing without medical indications. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 98 (5), 647-652 (2019).
  30. Mesen, T. B., Mersereau, J. E., Kane, J. B., Steiner, A. Z. Optimal timing for elective egg freezing. Fertility and Steriityl. 103 (6), 1551-1556 (2015).
  31. Doyle, J. O., et al. Successful elective and medically indicated oocyte vitrification and warming for autologous in vitro fertilization, with predicted birth probabilities for fertility preservation according to number of cryopreserved oocytes and age at retrieval. Fertility and Sterility. 105 (2), 459-466 (2016).
  32. Rienzi, L., et al. Significance of metaphase II human oocyte morphology on ICSI outcome. Fertility and Sterility. 90 (5), 1692-1700 (2008).
  33. Ubaldi, F. M., et al. Reduction of multiple pregnancies in the advanced maternal age population after implementation of an elective single embryo transfer policy coupled with enhanced embryo selection: pre- and post-intervention study. Human Reproduction. 30 (9), 2097-2106 (2015).
  34. Cakmak, H., Katz, A., Cedars, M. I., Rosen, M. P. Effective method for emergency fertility preservation: random-start controlled ovarian stimulation. Fertility and Sterility. 100 (6), 1673-1680 (2013).
  35. Moravek, M. B., et al. Long-term outcomes in cancer patients who did or did not pursue fertility preservation. Fertility and Sterility. 109 (2), 349-355 (2018).
  36. Vaiarelli, A., Venturella, R., Vizziello, D., Bulletti, F., Ubaldi, F. M. Dual ovarian stimulation and random start in assisted reproductive technologies: from ovarian biology to clinical application. Current Opinion in Obstetrics and Gynecology. 29 (3), 153-159 (2017).
  37. Vaiarelli, A., Cimadomo, D., Ubaldi, N., Rienzi, L., Ubaldi, F. M. What is new in the management of poor ovarian response in IVF. Current Opinion in Obstetrics and Gynecology. 30 (3), 155-162 (2018).
  38. Venturella, R., et al. State of the art and emerging drug therapies for female infertility. Gynecological Endocrinology. 35 (10), 835-841 (2019).
  39. Venturella, R., et al. A modern approach to the management of candidates for assisted reproductive technology procedures. Minerva Ginecologica. 70 (1), 69-83 (2018).
  40. Ferreiro, E., de Uralde, B. L., Abreu, R., Garcia-Velasco, J. A., Munoz, E. Aromatase inhibitors for ovarian stimulation in patients with breast cancer. Current Drug Targets. 21 (9), 910-921 (2020).
  41. Oktay, K., et al. Letrozole reduces estrogen and gonadotropin exposure in women with breast cancer undergoing ovarian stimulation before chemotherapy. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 91 (10), 3885-3890 (2006).
  42. Meirow, D., et al. Tamoxifen co-administration during controlled ovarian hyperstimulation for in vitro fertilization in breast cancer patients increases the safety of fertility-preservation treatment strategies. Fertility and Steriity. 102 (2), 488-495 (2014).
  43. Friedler, S., Koc, O., Gidoni, Y., Raziel, A., Ron-El, R. Ovarian response to stimulation for fertility preservation in women with malignant disease: a systematic review and meta-analysis. Fertility and Steriity. 97 (1), 125-133 (2012).
  44. Tsampras, N., Gould, D., Fitzgerald, C. T. Double ovarian stimulation (DuoStim) protocol for fertility preservation in female oncology patients. Human Fertility. 20 (4), 248-253 (2017).
  45. Vaiarelli, A., et al. Double stimulation in the same ovarian cycle (DuoStim) to maximize the number of oocytes retrieved from poor prognosis patients: a multicenter experience and SWOT analysis. Frontiers in Endocrinology. 9, 317 (2018).
  46. Cimadomo, D., et al. Luteal phase anovulatory follicles result in the production of competent oocytes: intra-patient paired case-control study comparing follicular versus luteal phase stimulations in the same ovarian cycle. Human Reproduction. 33 (8), 1442-1448 (2018).
  47. Rienzi, L., Ubaldi, F. M. Oocyte versus embryo cryopreservation for fertility preservation in cancer patients: guaranteeing a women’s autonomy. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 32 (8), 1195-1196 (2015).
  48. Oktay, K., Harvey, B. E., Loren, A. W. Fertility preservation in patients with cancer: ASCO clinical practice guideline update summary. JCO Oncology Practice. 14 (6), 381-385 (2018).
  49. Iussig, B., et al. A brief history of oocyte cryopreservation: Arguments and facts. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 98 (5), 550-558 (2019).
  50. Best, B. P. Cryoprotectant toxicity: facts, issues, and questions. Rejuvenation Research. 18 (5), 422-436 (2015).
  51. Fuller, B., Paynter, S. Fundamentals of cryobiology in reproductive medicine. Reproductive Biomedicine Online. 9 (6), 680-691 (2004).
  52. Konc, J., Kanyo, K., Kriston, R., Somoskoi, B., Cseh, S. Cryopreservation of embryos and oocytes in human assisted reproduction. BioMed Research International. 2014, 307268 (2014).
  53. Erstad, B. L. Osmolality and osmolarity: narrowing the terminology gap. Pharmacotherapy. 23 (9), 1085-1086 (2003).
  54. Sunde, A., et al. Time to take human embryo culture seriously. Human Reproduction. 31 (10), 2174-2182 (2016).
  55. Swain, J. E., Cabrera, L., Xu, X., Smith, G. D. Microdrop preparation factors influence culture-media osmolality, which can impair mouse embryo preimplantation development. Reproductive Biomedicine Online. 24 (2), 142-147 (2012).
  56. Wale, P. L., Gardner, D. K. The effects of chemical and physical factors on mammalian embryo culture and their importance for the practice of assisted human reproduction. Human Reproduction Update. 22 (1), 2-22 (2016).
  57. Seki, S., Mazur, P. The dominance of warming rate over cooling rate in the survival of mouse oocytes subjected to a vitrification procedure. Cryobiology. 59 (1), 75-82 (2009).
  58. Karlsson, J. O. A theoretical model of intracellular devitrification. Cryobiology. 42 (3), 154-169 (2001).
  59. Jin, B., et al. Equilibrium vitrification of mouse embryos. Biololgy of Reproduction. 82 (2), 444-450 (2010).
  60. Mazur, P. Equilibrium, quasi-equilibrium, and nonequilibrium freezing of mammalian embryos. Cell Biophysics. 17 (1), 53-92 (1990).
  61. Parmegiani, L., et al. “Universal Warming” protocol for vitrified oocytes to streamline cell exchange for transnational donation programs: a multi-center study. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 37 (6), 1379-1385 (2020).
  62. Vajta, G., Rienzi, L., Ubaldi, F. M. Open versus closed systems for vitrification of human oocytes and embryos. Reproductive Biomedicine Online. 30 (4), 325-333 (2015).
  63. Cai, H., et al. Open versus closed vitrification system of human oocytes and embryos: a systematic review and meta-analysis of embryologic and clinical outcomes. Reproductive Biology & Endocrinology. 16 (1), 123 (2018).
  64. Parmegiani, L., et al. Sterilization of liquid nitrogen with ultraviolet irradiation for safe vitrification of human oocytes or embryos. Fertility and Sterility. 94 (4), 1525-1528 (2010).
  65. Parmegiani, L., et al. Efficiency of aseptic open vitrification and hermetical cryostorage of human oocytes. Reproductive Biomedicine Online. 23 (4), 505-512 (2011).
  66. Cobo, A., et al. Storage of human oocytes in the vapor phase of nitrogen. Fertility and Sterility. 94 (5), 1903-1907 (2010).
  67. Eum, J. H., et al. Long-term liquid nitrogen vapor storage of mouse embryos cryopreserved using vitrification or slow cooling. Fertility and Sterility. 91 (5), 1928-1932 (2009).
  68. Fabozzi, G., et al. Which key performance indicators are most effective in evaluating and managing an in vitro fertilization laboratory. Fertility and Sterility. 114 (1), 9-15 (2020).
  69. Dessolle, L., et al. Learning curve of vitrification assessed by cumulative summation test for learning curve (LC-CUSUM). Fertility and Sterility. 92 (3), 943-945 (2009).
  70. Alpha Scientists In Reproductive Medicine. The Alpha consensus meeting on cryopreservation key performance indicators and benchmarks: proceedings of an expert meeting. Reproductive Biomedicine Online. 25 (2), 146-167 (2012).
  71. Edgar, D. H., Gook, D. A. A critical appraisal of cryopreservation (slow cooling versus vitrification) of human oocytes and embryos. Human Reproduction Update. 18 (5), 536-554 (2012).
  72. Edgar, D. H., Archer, J., Bourne, H. The application and impact of cryopreservation of early cleavage stage embryos in assisted reproduction. Human Fertility. 8 (4), 225-230 (2005).

Tags

Keywords: Oocyte VitrificationFertility PreservationCryopreservationOocyte WarmingIVFCryoprotectantsEquilibration SolutionVitrification SolutionCryo DeviceHEPES Buffer MediumHuman Serum AlbuminStripper PipetteCentral Well IVF Dish
check_url/kr/61963?article_type=t

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Cite This Article
Maggiulli, R., Vaiarelli, A., Cimadomo, D., Giancani, A., Tacconi, L., Fabozzi, G., Ubaldi, F. M., Rienzi, L. Fertility Preservation Through Oocyte Vitrification: Clinical and Laboratory Perspectives. J. Vis. Exp. (175), e61963, doi:10.3791/61963 (2021).
Download Citation
Reprints and Permissions

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image