Summary

जैविक ऊतक नमूनों के सीरियल ब्लॉक-फेस स्कैनिंग इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी (एसबीएफ-एसईएम)

Published: March 26, 2021
doi:

Summary

यह प्रोटोकॉल सीरियल ब्लॉक-फेस स्कैनिंग इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी (एसबीएफ-एसईएम), एक शक्तिशाली 3 डी इमेजिंग तकनीक का उपयोग करने के लिए एक नियमित विधि को रेखांकित करता है। एसबीएफ-एसईएम का सफल अनुप्रयोग उचित निर्धारण और ऊतक धुंधला तकनीकों पर टिका है, साथ ही इमेजिंग सेटिंग्स पर सावधानीपूर्वक विचार करना। इस प्रोटोकॉल में इस प्रक्रिया की संपूर्णता के लिए व्यावहारिक विचार शामिल हैं।

Abstract

धारावाहिक ब्लॉक-फेस स्कैनिंग इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी (एसबीएफ-एसईएम) सैकड़ों से हजारों धारावाहिक-पंजीकृत अल्ट्रास्ट्रक्चरल छवियों के संग्रह के लिए अनुमति देता है, जो ऊतक माइक्रोएनाटॉमी के अभूतपूर्व त्रि-आयामी दृश्य की पेशकश करता है। जबकि एसबीएफ-एसईएम ने हाल के वर्षों में उपयोग में घातीय वृद्धि देखी है, इस इमेजिंग मोडलि14 की सफलता के लिए उचित ऊतक तैयारी और इमेजिंग पैरामीटर जैसे तकनीकी पहलू सर्वोपरि हैं। यह इमेजिंग सिस्टम डिवाइस की स्वचालित प्रकृति से लाभान्वित होता है, जिससे एक ही दिन में सैकड़ों छवियों के स्वचालित संग्रह के साथ इमेजिंग प्रक्रिया के दौरान माइक्रोस्कोप को उपेक्षित छोड़ने की अनुमति होती है। हालांकि, उचित ऊतक तैयारी के बिना सेलुलर अल्ट्रास्ट्रक्चर को इस तरह से बदला जा सकता है कि गलत या भ्रामक निष्कर्ष निकाले जा सकते हैं। इसके अतिरिक्त, छवियों को राल-एम्बेडेड जैविक नमूने के ब्लॉक-फेस को स्कैन करके उत्पन्न किया जाता है और यह अक्सर चुनौतियों और विचारों को प्रस्तुत करता है जिन्हें संबोधित किया जाना चाहिए। इमेजिंग के दौरान ब्लॉक के भीतर इलेक्ट्रॉनों का संचय, जिसे “ऊतक चार्जिंग” के रूप में जाना जाता है, इसके विपरीत नुकसान और सेलुलर संरचना की सराहना करने में असमर्थता का कारण बन सकता है। इसके अलावा, जबकि इलेक्ट्रॉन बीम तीव्रता बढ़ाने/वोल्टेज या बीम स्कैनिंग गति कम छवि संकल्प में वृद्धि कर सकते हैं, यह भी राल ब्लॉक को नुकसान पहुंचाने और इमेजिंग श्रृंखला में बाद की छवियों को विकृत करने का दुर्भाग्यपूर्ण दुष्प्रभाव हो सकता है । यहां हम जैविक ऊतक नमूनों की तैयारी के लिए एक नियमित प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं जो सेलुलर अल्ट्रास्ट्रक्चर को संरक्षित करता है और ऊतक चार्जिंग को कम करता है। हम ऊतक ब्लॉक को न्यूनतम क्षति के साथ उच्च गुणवत्ता वाले धारावाहिक-छवियों के तेजी से अधिग्रहण के लिए इमेजिंग विचार भी प्रदान करते हैं।

Introduction

सीरियल ब्लॉक फेस स्कैनिंग इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी (एसबीएफ-एसईएम) को पहली बार १९८१ में Leighton द्वारा वर्णित किया गया था, जहां उन्होंने एक स्कैनिंग इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोप को एक इन-बिल्ट माइक्रोटॉम के साथ संवर्धित किया था जो राल में एम्बेडेड ऊतकों के पतले वर्गों को काट सकता है और छवि सकता है । दुर्भाग्य से, तकनीकी सीमाओं प्रवाहकीय नमूनों के लिए इसके उपयोग को प्रतिबंधित, जैसे जैविक ऊतक के रूप में गैर-प्रवाहकीय नमूने चार्जिंग (ऊतक नमूने के भीतर इलेक्ट्रॉन बिल्डअप)1के अस्वीकार्य स्तर जमा होते हैं। जबकि सुखाया कार्बन कम ऊतक चार्ज के साथ कटौती के बीच ब्लॉक-चेहरा कोटिंग, यह बहुत बढ़ी इमेजिंग अधिग्रहण समय और छवि भंडारण के रूप में एक समस्या बनी रही के रूप में समय पर कंप्यूटर प्रौद्योगिकी के लिए बड़ी फ़ाइल डिवाइस द्वारा बनाई गई आकार का प्रबंधन अपर्याप्त था । इस पद्धति को 2004 में डेंक और हॉर्स्टमैन द्वारा एक परिवर्तनीय दबाव कक्ष2से लैस एसबीएफ-एसईएम का उपयोग करके फिर से गौर किया गया था। यह इमेजिंग कक्ष जो नमूने के भीतर चार्ज कम कर देता है करने के लिए पानी वाष्प की शुरूआत के लिए अनुमति दी, गैर प्रवाहकीय नमूनों की इमेजिंग बनाने हालांकि छवि संकल्प की हानि के साथ व्यवहार्य । ऊतक तैयार करने और इमेजिंग विधियों में और सुधार अब उच्च वैक्यूम का उपयोग करके इमेजिंग की अनुमति देते हैं, और एसबीएफ-एसईएम इमेजिंग अब3,4, 5,6,7,8,9को नष्ट करने के लिए जल वाष्प पर निर्भर नहीं करता है। जबकि एसबीएफ-एसईएम ने हाल के वर्षों में उपयोग में घातीय वृद्धि देखी है, इस इमेजिंग मोडलि14 की सफलता के लिए उचित ऊतक तैयारी और इमेजिंग पैरामीटर जैसे तकनीकी पहलू सर्वोपरि हैं।

एसबीएफ-एसईएम हजारों सीरियल-पंजीकृत इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी छवियों के स्वचालित संग्रह के लिए अनुमति देता है, जिसमें प्लानर संकल्प 3-5 एनएम10,11के रूप में छोटा है। ऊतक, भारी धातुओं के साथ गर्भवती और राल में एम्बेडेड, एक स्कैनिंग इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोप (एसईएम) के भीतर रखा जाता है जिसमें हीरे के चाकू से लगे अल्ट्रामाइक्रोटोम होते हैं। एक सपाट सतह हीरे के चाकू से काटी जाती है, चाकू मुकर जाता है, और ब्लॉक की सतह को ऊतक अल्ट्रास्ट्रक्चर की छवि बनाने के लिए इलेक्ट्रॉन बीम के साथ एक रैस्टर पैटर्न में स्कैन किया जाता है। ब्लॉक तो जेड-धुरी, एक “जेड कदम के रूप में जाना जाता है में एक निर्दिष्ट राशि (जैसे, १०० एनएम) उठाया है, और एक नई सतह कटौती से पहले प्रक्रिया दोहराया है । इस तरह ऊतक को काटते ही छवियों का 3-आयामी (3डी) ब्लॉक तैयार किया जाता है। यह इमेजिंग सिस्टम डिवाइस की स्वचालित प्रकृति से आगे लाभ उठाता है, जिससे एक ही दिन में सैकड़ों छवियों के स्वचालित संग्रह के साथ इमेजिंग प्रक्रिया के दौरान माइक्रोस्कोप को उपेक्षित छोड़ने की अनुमति देता है।

जबकि एसबीएफ-एसईएम इमेजिंग मुख्य रूप से ब्लॉक-फेस की छवि बनाने के लिए बैकस्कैटर इलेक्ट्रॉनों का उपयोग करता है, इमेजिंग प्रक्रिया12के दौरान माध्यमिक इलेक्ट्रॉन उत्पन्न होते हैं। माध्यमिक इलेक्ट्रॉन बैकस्कैटर और प्राथमिक-बीम इलेक्ट्रॉनों के साथ जमा हो सकते हैं जो ब्लॉक से बच नहीं पाते हैं, और “ऊतक चार्जिंग” का उत्पादन करते हैं, जो ब्लॉक-फेस पर स्थानीयकृत इलेक्ट्रोस्टैटिक क्षेत्र का कारण बन सकता है। यह इलेक्ट्रॉन संचय छवि को विकृत कर सकता है या इलेक्ट्रॉनों को ब्लॉक से बाहर निकाल सकता है और बैकस्कैटर डिटेक्टर द्वारा एकत्र किए गए सिग्नल में योगदान दे सकता है, जिससे सिग्नल-टू-शोर अनुपात13कम हो जाता है। जबकि ऊतक चार्जिंग के स्तर को इलेक्ट्रॉन बीम वोल्टेज या तीव्रता को कम करके कम किया जा सकता है, या बीम निवास समय को कम कर सकता है, इसके परिणामस्वरूप सिग्नल-टू-शोर अनुपात14कम हो जाता है। जब कम वोल्टेज या तीव्रता के इलेक्ट्रॉन बीम का उपयोग किया जाता है, या बीम को केवल कम अवधि के लिए प्रत्येक पिक्सेल अंतरिक्ष के भीतर रहने की अनुमति दी जाती है, तो ऊतक से कम बैकस्कैटर इलेक्ट्रॉनों को बाहर निकाला जाता है और इलेक्ट्रॉन डिटेक्टर द्वारा कब्जा कर लिया जाता है जिसके परिणामस्वरूप एक कमजोर संकेत होता है। Denk और Horstmann चैंबर में पानी वाष्प शुरू करने से इस समस्या से निपटा, जिससे चैंबर में प्रभारी को कम करने और छवि संकल्प की कीमत पर ब्लॉक चेहरे पर । 10-100 पीए के एक कक्ष दबाव के साथ, इलेक्ट्रॉन बीम का एक हिस्सा छवि शोर और संकल्प की हानि में योगदान देता है, हालांकि यह नमूना कक्ष में आयनों का उत्पादन करता है जो नमूना ब्लॉक2के भीतर चार्ज को बेअसर करता है। नमूना ब्लॉक के भीतर चार्ज बेअसर करने के लिए हाल के तरीकों इमेजिंग के दौरान ब्लॉक-फेस पर नाइट्रोजन के फोकल गैस इंजेक्शन का उपयोग करें, या जांच-बीम-लदान ऊर्जा को कम करनेऔर6,7,15एकत्र किए गए सिग्नल को बढ़ाने के लिए एसबीएफ-एसईएम चरण में नकारात्मक वोल्टेज शुरू करें। ब्लॉक सतह पर चार्ज बिल्डअप को कम करने के लिए चरण पूर्वाग्रह, कक्ष दबाव या स्थानीयकृत नाइट्रोजन इंजेक्शन शुरू करने के बजाय, राल मिश्रण में कार्बन शुरू करके राल की चालकता को बढ़ाना भी संभव है, जो अधिक आक्रामक इमेजिंग सेटिंग्स16के लिए अनुमति देता है। निम्नलिखित सामान्य प्रोटोकॉल 2010 में प्रकाशित डियरिंक एट अल प्रोटोकॉल का अनुकूलन है और इसमें ऊतक ों की तैयारी और इमेजिंग पद्धतियों में संशोधन शामिल हैं जो हमने उच्च संकल्प छवि अधिग्रहण 3 , 17 , 18,19कोबनाए रखते हुए ऊतकचार्जिंगको कम करने के लिए उपयोगी पाया। जबकि ऊतक प्रसंस्करण और भारी धातु गर्भवती पर ध्यान केंद्रित पहले उल्लिखित प्रोटोकॉल, यह प्रोटोकॉल इमेजिंग, डेटा विश्लेषण और पुनर्निर्माण कार्यप्रवाह एसबीएफ-एसईएम अध्ययनों में निहित अंतर्दृष्टि प्रदान करता है। हमारी प्रयोगशाला में, इस प्रोटोकॉल को कॉर्निया और पूर्वकाल खंड संरचनाओं सहित विभिन्न ऊतकों पर सफलतापूर्वक और पुन: लागू किया गया है, पलक, लैक्रिमल और कठिन ग्रंथि, रेटिना और ऑप्टिक तंत्रिका, दिल, फेफड़े और वायुमार्ग, गुर्दे, जिगर, क्रेमास्टर मांसपेशी, और सेरेब्रल कॉर्टेक्स/मेडुला, और माउस, चूहा, खरगोश, गिनी सुअर, मछली, मोनोलेयर और स्तरीकृत सेल संस्कृतियों, सुअर, गैर मानव रहनुमा, साथ ही मानव20,21,22,23सहित प्रजातियों की एक किस्म में । जबकि छोटे परिवर्तन विशिष्ट ऊतकों और अनुप्रयोगों के लिए सार्थक हो सकते हैं, यह सामान्य प्रोटोकॉल हमारे कोर इमेजिंग सुविधा के संदर्भ में अत्यधिक प्रजनन योग्य और उपयोगी साबित हुआ है।

Protocol

सभी जानवरों को विजन और नेत्र अनुसंधान में जानवरों के उपयोग के लिए विजन और नेत्र विज्ञान बयान में अनुसंधान के लिए एसोसिएशन में वर्णित दिशा निर्देशों के अनुसार संभाला गया और ऑप्टोमेट्री पशु हैंडलिंग द?…

Representative Results

माउस कॉर्नियायह प्रोटोकॉल माउस कॉर्निया के लिए बड़े पैमाने पर लागू किया गया है। एसबीएफ-एसईएम इमेजिंग का उपयोग करके इलास्टिन-फ्री माइक्रोफाइब्रिल बंडलों (ईएफएमबी) के नेटवर्क को वयस्क माउस कॉ?…

Discussion

इस तरीके कागज का उद्देश्य ऊतक तैयारी और इमेजिंग पद्धति है कि हमारी प्रयोगशाला मज़बूती से उच्च संकल्प धारावाहिक इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी छवियों पर कब्जा करने की अनुमति दी है पर प्रकाश डाला है, और महत?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम डॉ सैम हैलोन, एवलिन ब्राउन, और मार्गरेट गोंडो उनके उत्कृष्ट तकनीकी सहायता के लिए शुक्रिया अदा करना चाहते हैं । इस शोध को राष्ट्रीय स्वास्थ्य संस्थान (एनआईएच) आर01 ईवाई-018239 और पी 30 EY007551 (राष्ट्रीय नेत्र संस्थान) द्वारा भाग में, लायन फाउंडेशन फॉर दृष्टि द्वारा और एनआईएच 1R15 एचडी084262-01 (राष्ट्रीय बाल स्वास्थ्य और मानव विकास संस्थान) द्वारा भाग में समर्थित किया गया था।

Materials

1/16 x 3/8 Aluminum Rivets Industrial Rivet & Fastener Co. 6N37RFLAP/1100 Used as specimen pins.
2.5mm Flathead Screwdriver Wiha Quality Tools 27225
Acetone Electron Microscopy Sciences RT 10000 Used to dilute silver paint.
Aspartic Acid Sigma-Aldrich A8949
Calcium Chloride FisherScientific C79-500
Conductive Silver Paint Ted Pella 16062
Denton Desk-II Vacuum Sputtering Device equipped with standard gold foil target Denton Vacuum N/A This is the gold-sputtering device used by the authors, alternates are acceptable.
Double-edged Razors Fisher Scientific 50-949-411
Embed 812 Electron Microscopy Sciences 14120
Gatan 3View2 mounted in a Tescan Mira3 Field emission SEM Gatan & Tescan N/A This is the SBF-SEM device used by the authors, alternates are acceptable.
Glass Shell Vials, 0.5 DRAM (1.8 ml) Electron Microscopy Sciences 72630-05
Gluteraldehyde Electron Microscopy Sciences 16320
Gorilla Super Glue – Impact Tough NA NA Refered to as cyanoacrylate glue in text.
Ketjen Black HM Royal EC-600JD Refered to as carbon black in text.
KOH FisherScientific 18-605-593
Lead Nitrate Fisher Scientific L62-100
Microwave Pelco BioWave Pro This is the microwave used by the authors, alternates are acceptable.
Osmium Tetroxide Sigma-Aldrich 201030
Potassium Ferrocyanide Sigma-Aldrich P9387
Silicone Embedding Mold Ted Pella 10504
Sodium Cacodylate Trihydrate Electron Microscopy Sciences 12300
Samco Transfer Pipette ThermoFisher Scientific 202 Used to make specimen pin storage tubes.
Swiss Pattern Needle Files Electron Microscopy Sciences 62115
Thiocarbohydrazide Sigma-Aldrich 223220
Uranyl Acetate Polysciences, Inc. 21447-25
Reconstruction Software
Amira Software Thermo Scientific N/A Used to create the reconstructions found in figures 5-7 and 9.
Fiji (Fiji is Just ImageJ) ImageJ.net N/A TrakEM2 can be added to Fiji to asist in manual segmentation.
Microscopy Image Browser (MIB) University of Helsinki, Institute of Biotechnology N/A
Reconstuct Software Neural Systems Lab N/A
SuRVoS Workbench Diamond Light Source & The University of Nottingham N/A
SyGlass IstoVisio, Inc. N/A Allows for reconstruction in virtual reality and histogram-based reconstruction methods.

References

  1. Leighton, S. B. SEM images of block faces, cut by a miniature microtome within the SEM – a technical note. Scanning Electron Microscopy. , 73-76 (1981).
  2. Denk, W., Horstmann, H. Serial block-face scanning electron microscopy to reconstruct three-dimensional tissue nanostructure. PLOS Biology. 2 (11), 329 (2004).
  3. He, Q., Hsueh, M., Zhang, G., Joy, D. C., Leapman, R. D. Biological serial block face scanning electron microscopy at improved z-resolution based on Monte Carlo model. Scientific Reports. 8 (1), 12985 (2018).
  4. Zankel, A., Wagner, J., Poelt, P. Serial sectioning methods for 3D investigations in materials science. Micron. 62, 66-78 (2014).
  5. Titze, B., Genoud, C. Volume scanning electron microscopy for imaging biological ultrastructure. Biology of the Cell. 108 (11), 307-323 (2016).
  6. Ohta, K., et al. Beam deceleration for block-face scanning electron microscopy of embedded biological tissue. Micron. 43 (5), 612-620 (2012).
  7. Bouwer, J. C., et al. Deceleration of probe beam by stage bias potential improves resolution of serial block-face scanning electron microscopic images. Advanced Structural and Chemical Imaging. 2 (1), 11 (2017).
  8. Kizilyaprak, C., Longo, G., Daraspe, J., Humbel, B. M. Investigation of resins suitable for the preparation of biological sample for 3-D electron microscopy. Journal of Structural Biology. 189 (2), 135-146 (2015).
  9. Kittelmann, M., Hawes, C., Hughes, L. Serial block face scanning electron microscopy and the reconstruction of plant cell membrane systems. Journal of Microscopy. 263 (2), 200-211 (2016).
  10. Biazik, J., Vihinen, H., Anwar, T., Jokitalo, E., Eskelinen, E. L. The versatile electron microscope: an ultrastructural overview of autophagy. Methods. 75, 44-53 (2015).
  11. Peddie, C. J., Collinson, L. M. Exploring the third dimension: Volume electron microscopy comes of age. Micron. 61, 9-19 (2014).
  12. Piňos, J., Mikmeková, &. #. 3. 5. 2. ;., Frank, L. About the information depth of backscattered electron imaging. Journal of Microscopy. 266 (3), 335-342 (2017).
  13. Smith, D., Starborg, T. Serial block face scanning electron microscopy in cell biology: Applications and technology. Tissue Cell. 57, 111-122 (2019).
  14. Goggin, P., et al. Development of protocols for the first serial block-face scanning electron microscopy (SBF SEM) studies of bone tissue. Bone. 131, 115107 (2020).
  15. Deerinck, T. J., et al. High-performance serial block-face SEM of nonconductive biological samples enabled by focal gas injection-based charge compensation. Journal of Microscopy. 270 (2), 142-149 (2018).
  16. Nguyen, H. B., et al. Conductive resins improve charging and resolution of acquired images in electron microscopic volume imaging. Scientific Reports. 6, 23721 (2016).
  17. Deerinck, T. J., Bushong, E. A., Thor, A., Ellisman, M. H. NCMIR methods for 3D EM: a new protocol for preparation of biological specimens for serial block face scanning electron microscopy. National Center for Microscopy and Imaging Research. 6 (8), (2010).
  18. Deerinck, T. J., et al. Enhancing Serial Block-Face Scanning Electron Microscopy to Enable High Resolution 3-D Nanohistology of Cells and Tissues. Microscopy and Microanalysis. 16, 1138-1139 (2010).
  19. Kubota, Y. New developments in electron microscopy for serial image acquisition of neuronal profiles. Microscopy (Oxf). 64 (1), 27-36 (2015).
  20. Courson, J. A., et al. Serial block-face scanning electron microscopy: A provocative technique to define 3-dimensional ultrastructure of microvascular thrombosis. Thrombosis Research. 196, 519-522 (2020).
  21. Courson, J. A., et al. Serial block-face scanning electron microscopy reveals neuronal-epithelial cell fusion in the mouse cornea. PLoS One. 14 (11), 0224434 (2019).
  22. Lafontant, P. J., et al. Cardiac Myocyte Diversity and a Fibroblast Network in the Junctional Region of the Zebrafish Heart Revealed by Transmission and Serial Block-Face Scanning Electron Microscopy. PLoS One. 8 (8), 72388 (2013).
  23. Hanlon, S. D., Behzad, A. R., Sakai, L. Y., Burns, A. R. Corneal stroma microfibrils. Experimental Eye Research. 132, 198-207 (2015).
  24. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. Journal of Visualized Experiments. (65), e3564 (2012).
  25. Davenport, A. T., Grant, K. A., Szeliga, K. T., Friedman, D. P., Daunais, J. B. Standardized method for the harvest of nonhuman primate tissue optimized for multiple modes of analyses. Cell Tissue Bank. 15 (1), 99-110 (2014).
  26. Schuster, A., et al. An isolated perfused pig heart model for the development, validation and translation of novel cardiovascular magnetic resonance techniques. Journal of Cardiovascular Magnetic Resonance. 12 (1), 53 (2010).
  27. Hanlon, S. D., Patel, N. B., Burns, A. R. Assessment of postnatal corneal development in the C57BL/6 mouse using spectral domain optical coherence tomography and microwave-assisted histology. Experimental Eye Research. 93 (4), 363-370 (2011).
  28. Longiéras, N., Sebban, M., Palmas, P., Rivaton, A., Gardette, J. L. Multiscale approach to investigate the radiochemical degradation of epoxy resins under high-energy electron-beam irradiation. Journal of Polymer Science Part A: Polymer Chemistry. 44 (2), 865-887 (2006).
  29. Hashimoto, T., Thompson, G. E., Zhou, X., Withers, P. J. 3D imaging by serial block face scanning electron microscopy for materials science using ultramicrotomy. Ultramicroscopy. 163, 6-18 (2016).
  30. Rouquette, J., et al. Revealing the high-resolution three-dimensional network of chromatin and interchromatin space: A novel electron-microscopic approach to reconstructing nuclear architecture. Chromosome Research. 17 (6), 801 (2009).
  31. Briggman, K. L., Helmstaedter, M., Denk, W. Wiring specificity in the direction-selectivity circuit of the retina. Nature. 471 (7337), 183-188 (2011).
  32. Katoh, K. Microwave-Assisted Tissue Preparation for Rapid Fixation, Decalcification, Antigen Retrieval, Cryosectioning, and Immunostaining. International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 2016, 7076910 (2016).
  33. Login, G. R., Dvorak, A. M. A review of rapid microwave fixation technology: its expanding niche in morphologic studies. Scanning. 15 (2), 58-66 (1993).
  34. Jamur, M. C., Faraco, C. D., Lunardi, L. O., Siraganian, R. P., Oliver, C. Microwave fixation improves antigenicity of glutaraldehyde-sensitive antigens while preserving ultrastructural detail. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 43 (3), 307-311 (1995).
  35. Leong, A. S., Sormunen, R. T. Microwave procedures for electron microscopy and resin-embedded sections. Micron. 29 (5), 397-409 (1998).
  36. Willingham, M. C., Rutherford, A. V. The use of osmium-thiocarbohydrazide-osmium (OTO) and ferrocyanide-reduced osmium methods to enhance membrane contrast and preservation in cultured cells. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 32 (4), 455-460 (1984).
  37. Khan, A. A., Riemersma, J. C., Booij, H. L. The reactions of osmium tetroxide with lipids and other compounds. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 9, 560-563 (1961).
  38. Belazi, D., Solé-Domènech, S., Johansson, B., Schalling, M., Sjövall, P. Chemical analysis of osmium tetroxide staining in adipose tissue using imaging ToF-SIMS. Histochemistry and Cell Biology. 132 (1), 105-115 (2009).
  39. Rivlin, P. K., Raymond, P. A. Use of osmium tetroxide-potassium ferricyanide in reconstructing cells from serial ultrathin sections. Journal of Neuroscience Methods. 20 (1), 23-33 (1987).
  40. Aguas, A. P. The use of osmium tetroxide-potassium ferrocyanide as an extracellular tracer in electron microscopy. Stain Technology. 57 (2), 69-73 (1982).
  41. Seligman, A. M., Wasserkrug, H. L., Hanker, J. S. A new staining method (OTO) for enhancing contrast of lipid–containing membranes and droplets in osmium tetroxide–fixed tissue with osmiophilic thiocarbohydrazide(TCH). Journal of Cell Biology. 30 (2), 424-432 (1966).
  42. Watson, M. L. Staining of tissue sections for electron microscopy with heavy metals. II. Application of solutions containing lead and barium. Journal of Biophysical and Biochemical Cytology. 4 (6), 727-730 (1958).
  43. Zhou, W., Apkarian, R., Wang, Z., Joy, D. Fundamentals of Scanning Electron Microscopy. Scanning Microscopy in Nanotechnology. , 1-40 (2006).
  44. Tapia, J. C., et al. High-contrast en bloc staining of neuronal tissue for field emission scanning electron microscopy. Nature Protocols. 7 (2), 193-206 (2012).
  45. Buchacker, T., et al. Assessment of the Alveolar Capillary Network in the Postnatal Mouse Lung in 3D Using Serial Block-Face Scanning Electron Microscopy. Frontiers in Physiology. 10, 1357 (2019).
  46. Keeling, E., et al. 3D-Reconstructed Retinal Pigment Epithelial Cells Provide Insights into the Anatomy of the Outer Retina. International Journal of Molecular Sciences. 21 (21), (2020).
  47. Shang, P., et al. Chronic Alcohol Exposure Induces Aberrant Mitochondrial Morphology and Inhibits Respiratory Capacity in the Medial Prefrontal Cortex of Mice. Frontiers in Neuroscience. 14, 561173 (2020).
  48. Pfeifer, C. R., et al. Quantitative analysis of mouse pancreatic islet architecture by serial block-face SEM. Journal of Structural Biology. 189 (1), 44-52 (2015).
  49. Wilke, S. A., et al. Deconstructing complexity: serial block-face electron microscopic analysis of the hippocampal mossy fiber synapse. Journal of Neuroscience. 33 (2), 507-522 (2013).
  50. Cocks, E., Taggart, M., Rind, F. C., White, K. A guide to analysis and reconstruction of serial block face scanning electron microscopy data. Journal of Microscopy. 270 (2), 217-234 (2018).
  51. Borrett, S., Hughes, L. Reporting methods for processing and analysis of data from serial block face scanning electron microscopy. Journal of Microscopy. 263 (1), 3-9 (2016).
  52. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  53. Rueden, C. T., et al. ImageJ2: ImageJ for the next generation of scientific image data. BMC Bioinformatics. 18 (1), 529 (2017).
  54. Fiala, J. C. Reconstruct: a free editor for serial section microscopy. Journal of Microscopy. 218, 52-61 (2005).
  55. Pidhorskyi, S., Morehead, M., Jones, Q., Spirou, G., Doretto, G. syGlass: interactive exploration of multidimensional images using virtual reality Head-mounted displays. arXiv . , (2018).
  56. Cardona, A., et al. TrakEM2 software for neural circuit reconstruction. PLoS One. 7 (6), 38011 (2012).
  57. Belevich, I., Joensuu, M., Kumar, D., Vihinen, H., Jokitalo, E. Microscopy Image Browser: A Platform for Segmentation and Analysis of Multidimensional Datasets. PLOS Biology. 14 (1), 1002340 (2016).
  58. Luengo, I., et al. SuRVoS: Super-Region Volume Segmentation workbench. Journal of Structural Biology. 198 (1), 43-53 (2017).
  59. Anderson, H. R., Stitt, A. W., Gardiner, T. A., Archer, D. B. Estimation of the surface area and volume of the retinal capillary basement membrane using the stereologic method of vertical sections. Analytical & Quantitative Cytology & Histology. 16 (4), 253-260 (1994).
  60. Gibbons, C. H., Illigens, B. M., Wang, N., Freeman, R. Quantification of sweat gland innervation: a clinical-pathologic correlation. Neurology. 72 (17), 1479-1486 (2009).
  61. Knust, J., Ochs, M., Gundersen, H. J., Nyengaard, J. R. Stereological estimates of alveolar number and size and capillary length and surface area in mice lungs. Anat Rec. 292 (1), 113-122 (2009).
  62. Mahon, G. J., et al. Chloroquine causes lysosomal dysfunction in neural retina and RPE: implications for retinopathy. Current Eye Research. 28 (4), 277-284 (2004).
  63. Michel, R. P., Cruz-Orive, L. M. Application of the Cavalieri principle and vertical sections method to lung: estimation of volume and pleural surface area. Journal of Microscopy. 150, 117-136 (1988).
  64. Weibel, E. R. Stereological methods in cell biology: where are we–where are we going. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 29 (9), 1043-1052 (1981).
  65. Schmitz, C., Hof, P. R. Design-based stereology in neuroscience. 신경과학. 130 (4), 813-831 (2005).
  66. Kristiansen, S. L., Nyengaard, J. R. Digital stereology in neuropathology. Apmis. 120 (4), 327-340 (2012).
  67. Howard, C. V., Reed, M. G. . Unbiased Stereology. 2nd edn. , (2005).
  68. Reith, A., Mayhew, T. M. . Stereology and Morphometry in Electron Microscopy: Problems and Solutions. , (1988).
  69. Mouton, P. R. . Principles and practices of unbiased stereology: an introduction for bioscientists. , (2002).
check_url/kr/62045?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Courson, J. A., Landry, P. T., Do, T., Spehlmann, E., Lafontant, P. J., Patel, N., Rumbaut, R. E., Burns, A. R. Serial Block-Face Scanning Electron Microscopy (SBF-SEM) of Biological Tissue Samples. J. Vis. Exp. (169), e62045, doi:10.3791/62045 (2021).

View Video