Summary

Analyse van vertaling in de zich ontwikkelende muishersenen met behulp van polysoomprofilering

Published: May 22, 2021
doi:

Summary

De ontwikkeling van het zoogdierbrein vereist een goede controle van genexpressie op het niveau van vertaling. Hier beschrijven we een polysoomprofileringssysteem met een eenvoudig te assembleren sucrose gradiëntvormings- en fractioneringsplatform om de translationele status van mRNAs in de zich ontwikkelende hersenen te beoordelen.

Abstract

De juiste ontwikkeling van het zoogdierbrein is afhankelijk van een fijne balans van neurale stamcelproliferatie en differentiatie in verschillende neurale celtypen. Deze balans wordt strak gecontroleerd door genexpressie die op meerdere niveaus is verfijnd, waaronder transcriptie, posttranscriptie en vertaling. In dit opzicht benadrukt een groeiende hoeveelheid bewijs een cruciale rol van translationele regulatie bij het coördineren van beslissingen over het lot van neurale stamcellen. Polysoomfractie is een krachtig hulpmiddel voor de beoordeling van de mRNA-translationele status op zowel globaal als individueel genniveau. Hier presenteren we een interne polysomale profileringspijplijn om de translationele efficiëntie in cellen van de zich ontwikkelende hersenschors van muizen te beoordelen. We beschrijven de protocollen voor sucrose gradiëntvoorbereiding, weefsellysis, ultracentrifugatie en fractioneringsgebaseerde analyse van de mRNA-translationele status.

Introduction

Tijdens de ontwikkeling van de hersenen van zoogdieren verspreiden neurale stamcellen zich en differentiëren ze om neuronen en glia1,2 te genereren. De verstoring van dit proces kan leiden tot veranderingen in de hersenstructuur en -functie, zoals te zien is bij veel neuroontwikkelingsstoornissen3,4. Het juiste gedrag van neurale stamcellen vereist de georkestreerde expressie van specifieke genen5. Hoewel de epigenetische en transcriptiecontrole van deze genen intensief is bestudeerd, suggereren recente bevindingen dat genregulatie op andere niveaus ook bijdraagt aan de coördinatie van neurale stamcelproliferatie en differentiatie6,7,8,9,10. Het aanpakken van de translationele controleprogramma’s zal dus ons begrip van de mechanismen die ten grondslag liggen aan de beslissing over het lot van neurale stamcellen en de ontwikkeling van de hersenen aanzienlijk bevorderen.

Drie hoofdtechnieken met verschillende sterktes zijn op grote schaal toegepast om de translationele status van mRNA te beoordelen, waaronder ribosoomprofilering, het vertalen van ribosoomaffiniteitszuivering (TRAP) en polysoomprofilering. Ribosoomprofilering maakt gebruik van RNA-sequencing om ribosoombeveiligde mRNA-fragmenten te bepalen, waardoor de globale analyse van het aantal en de locatie van het vertalen van ribosomen op elk transcript indirect de vertaalsnelheid kan afleiden door het te vergelijken met transcriptie overvloed11. TRAP maakt gebruik van epitoop-gelabelde ribosomale eiwitten om ribosoomgebonden mRNAs te vangen12. Aangezien de gelabelde ribosomale eiwitten kunnen worden uitgedrukt in specifieke celtypen met behulp van genetische benaderingen, maakt TRAP de analyse van vertaling op een celtypespecifieke manier mogelijk. Ter vergelijking, polysoomprofilering, waarbij sucrosedichtheidsgradiëntfractie wordt gebruikt om vrije en slecht vertaalde porties (lichtere monosomen) te scheiden van die welke actief worden vertaald door ribosomen (zwaardere polysomen), biedt een directe meting van de ribosoomdichtheid op mRNA13. Een voordeel van deze techniek is de veelzijdigheid om de vertaling van specifiek mRNA van belang te bestuderen, evenals genoombrede vertaalanalyse14.

In dit artikel beschrijven we een gedetailleerd protocol van polysomale profilering om de zich ontwikkelende hersenschors van muizen te analyseren. We gebruiken een zelfgeassembleerd systeem om sucrosedichtheidsgradiënten voor te bereiden en fracties te verzamelen voor downstreamtoepassingen. Het hier gepresenteerde protocol kan eenvoudig worden aangepast om andere soorten weefsels en organismen te analyseren.

Protocol

Al het diergebruik werd gecontroleerd door de Animal Care Committee van de Universiteit van Calgary. CD1-muizen die voor het experiment werden gebruikt, werden gekocht bij de commerciële leverancier. 1. Voorbereiding van oplossingen OPMERKING Om RNA-afbraak te voorkomen, moet u de werkbank en alle apparatuur met RNase-ontsmettingsoplossing spuiten. Voor het experiment worden RNase-vrije tips gebruikt. Alle oplossingen worden bereid in RNase-vrij water. Be…

Representative Results

Als demonstratie werd het corticale lysaat met 75 μg RNA (gepoold uit 8 embryo’s) gescheiden door de sacharosegradiënt in 12 fracties. Pieken van UV-absorptie bij 254 nm geïdentificeerde fracties die de 40S-subeenheid, 60S-subeenheid, 80S-monosomen en polysomen bevatten (figuur 4A). Analyse van breuken door westelijke vlek voor de grote ribosomale subeenheid, Rpl10 toonde zijn aanwezigheid in de 60S subeenheid (breuk 3), monosomen (breuk 4) en polysomen (fracties 5-12) (<strong class="xfi…

Discussion

Polysomale profilering is een veelgebruikte en krachtige techniek om de translationele status te beoordelen op zowel single gene als genoombrede niveaus14 . In dit rapport presenteren we een protocol van polysomenprofilering met behulp van een thuisgeassembleerd platform en de toepassing ervan om de zich ontwikkelende muisschors te analyseren. Dit kosteneffectieve platform is eenvoudig te monteren en genereert robuuste, reproduceerbare sacharosegradiënten en polysoomprofilering met hoge gevoeligh…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gefinancierd door een NSERC Discovery Grant (RGPIN/04246-2018 to G.Y.). G.Y. is een Canada Research Chair. S.K. werd gefinancierd door Mitacs Globalink Graduate Fellowship en ACHRI Graduate Student Scholarship.

Materials

1.5 mL RNA free microtubes Axygen MCT-150-C
10 cm dish Greiner-Bio 664160
1M MgCl2 Invitrogen AM9530G
21-23G needle BD 305193
2M KCl Invitrogen AM8640G
30 mL syringe BD 302832
Blunt end needle VWR 20068-781
Breadboard Thorlabs MB2530/M
Bromophenol blue Sigma 115-39-9
CD1 mouse Charles River Laboratory
Curved tip forceps Sigma #Z168785
Cycloheximide Sigma 66-81-9
Data acquisition software TracerDAQ Measurement Computing
Digital converter Measurement Computing USB-1208LS
Direct-zol RNA miniprep kit Zymo R2070
Dithiothreitol (DTT) Bio-basic 12-03-3483
DMSO Bioshop 67-68-5
Dumont No.5 forceps Sigma #F6521
Fraction collector Bio-Rad Model 2110
HBSS Wisent 311-513-CL
Linear stage actuator Rattmmotor CBX1605-100A
Luciferase control RNA Promega L4561
Maxima first strand cDNA synthesis kit Themo Fisher M1681
Miniature V-clamp Thorlabs VH1/M
Mini-series breadboard Thorlabs MSB7515/M
Mini-series optical post Thorlabs MS2R/M
Mini-series pedestal post holder base Thorlabs MBA1
NaCl Bio-basic 7647-14-5
Neurobasal media Gibco 21103-049
Ø12.7 mm aluminum post Thorlabs TRA150/M
Parafilm Bemis PM992
PerfeCTa SYBR green fastmix Quanta Bio CA101414-274
Phosphate buffered saline (PBS) Wisent 311-010-CL
Puromycin Bioshop 58-58-2
Right-angle clamp Thorlabs RA90/M
Right-angle Ø1/2" to Ø6 mm post clamp Thorlabs RA90TR/M
Rnase AWAY Molecular BioProducts 7002
RNase free tips Frogga Bio FT10, FT200, FT1000
RNase free water Wisent 809-115-CL
RNasin Promega N2111
Slim right-angle bracket Thorlabs AB90B/M
Small V-clamp Thorlabs VC1/M
Sodium deoxycholate Sigma 302-95-4
Stepper motor driver SongHe TB6600
Sucrose Bioshop 57501
SW 41 Ti rotor Beckman Coulter 331362
Syringe pump Harvard Apparatus 70-4500
Syringe pump Harvard Apparatus 70-4500
Triton-X-100 Bio-basic 9002-93-1
Trizol Thermofisher Scientific 15596018
Tube piercer Brandel BR-184
Ultracentrifuge Beckman Coulter L8-70M
Ultracentrifuge tubes Beckman Coulter 331372
UltraPure 1M Tris-HCl pH 7.5 Invitrogen 15567-027
UNO project super starter kit Elegoo EL-KIT-003
UV monitor Bio-Rad EM-1 Econo
Vertical bracket Thorlabs VB01A/M

References

  1. Götz, M., Huttner, W. B. The cell biology of neurogenesis. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 6, 777-788 (2005).
  2. Guillemot, F. Spatial and temporal specification of neural fates by transcription factor codes. Development. 134, 3771-3780 (2007).
  3. Fiddes, I. T., et al. Human-Specific NOTCH2NL Genes Affect Notch Signaling and Cortical Neurogenesis. Cell. 173, 1356-1369 (2018).
  4. Lennox, A. L., et al. Pathogenic DDX3X mutations impair RNA metabolism and neurogenesis during fetal cortical development. Neuron. 106, 404-420 (2020).
  5. Martynoga, B., Drechsel, D., Guillemot, F. Molecular control of neurogenesis: A view from the mammalian cerebral cortex. Cold Spring Harbor Perspective Biology. 4 (10), 008359 (2012).
  6. Amadei, G., et al. A Smaug2-based translational repression complex determines the balance between precursor maintenance versus differentiation during mammalian neurogenesis. Journal of Neurosci. 35, 15666-15681 (2015).
  7. Yang, G., Smibert, C. A., Kaplan, D. R., Miller, F. D. An eIF4E1/4E-T complex determines the genesis of neurons from precursors by translationally repressing a proneurogenic transcription program. Neuron. 84, 723-739 (2014).
  8. Yang, G., et al. A Glo1-Methylglyoxal pathway that is perturbed in maternal diabetes regulates embryonic and adult neural stem cell pools in murine offspring. Cell Reports. 17, 1022-1036 (2016).
  9. Kraushar, M. L., et al. Temporally defined neocortical translation and polysome assembly are determined by the RNA-binding protein Hu antigen R. Proceedings of the National Academy of Science U. S. A. 111, 3815-3824 (2014).
  10. Rodrigues, D. C., et al. Methylglyoxal couples metabolic and translational control of Notch signalling in mammalian neural stem cells. Nature Communications. 11, 2018 (2020).
  11. Iwasaki, S., Ingolia, N. T. The growing toolbox for protein synthesis studies. Trends in Biochemical Sciences. 42, 612-624 (2017).
  12. Chekulaeva, M., Landthaler, M. Eyes on translation. Molecular Cell. 63, 918-925 (2016).
  13. Faye, M. D., Graber, T. E., Holcik, M. Assessment of Selective mRNA Translation in Mammalian Cells by Polysome Profiling. Journal of Visualized Experiments. (92), e52295 (2014).
  14. Chassé, H., Boulben, S., Costache, V., Cormier, P., Morales, J. Analysis of translation using polysome profiling. Nucleic Acids Research. 45, 15 (2017).
  15. Schneider-Poetsch, T., et al. Inhibition of eukaryotic translation elongation by cycloheximide and lactimidomycin. Nature Chemical Biology. 6, 209-217 (2010).
  16. Kraushar, M. L., et al. Thalamic WNT3 secretion spatiotemporally regulates the neocortical ribosome signature and mRNA translation to specify neocortical cell subtypes. Journal of Neuroscience: Official Journal of Society of Neuroscience. 35, 10911-10926 (2015).
  17. Gandin, V., et al. Polysome fractionation and analysis of mammalian translatomes on a genome-wide scale. Journal of Visualized Experiments. (7), e51455 (2014).
check_url/kr/62088?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kedia, S., Erickson, S. L., Yang, G. Analysis of Translation in the Developing Mouse Brain using Polysome Profiling. J. Vis. Exp. (171), e62088, doi:10.3791/62088 (2021).

View Video