Summary

सारकोमेरे फ्लोरोसेंट-टैग किए गए सारकोमेरे प्रोटीन का उपयोग करके प्लुरिपोटेंट स्टेम सेल-व्युत्पन्न कार्डियोमायोसाइट्स का छोटा होना।

Published: March 03, 2021
doi:

Summary

इस विधि का उपयोग फ्लोरोसेंट-टैग किए गए सारकोमेरे प्रोटीन के साथ प्लुरिपोटेंट स्टेम सेल-व्युत्पन्न कार्डियोमायोसाइट्स का उपयोग करके सारकोमेरे छोटा करने के लिए किया जा सकता है।

Abstract

Pluripotent स्टेम सेल-व्युत्पन्न कार्डियोमायोसाइट्स (पीएससी-सीएम) दोनों भ्रूण और प्रेरित pluripotent स्टेम (ES/iPS) कोशिकाओं से उत्पादित किया जा सकता है । ये कोशिकाएं हृदय रोग मॉडलिंग के लिए आशाजनक स्रोत प्रदान करती हैं। कार्डियोमायोपैथी के लिए, सारकोमेरे छोटा करना मानक शारीरिक आकलन में से एक है जिसका उपयोग वयस्क कार्डियोमायोसाइट्स के साथ उनकी बीमारी फेनोटाइप की जांच करने के लिए किया जाता है। हालांकि, उपलब्ध तरीके पीएससी-सीएम की संकुचन का आकलन करने के लिए उपयुक्त नहीं हैं, क्योंकि इन कोशिकाओं ने अविकसित साकोमर हैं जो चरण-विपरीत माइक्रोस्कोपी के तहत अदृश्य हैं । इस मुद्दे को हल करने और पीएससी-सीएम के साथ सारकोमेरे छोटा करने के लिए, फ्लोरोसेंट-टैग किए गए सारकोमेरे प्रोटीन और फ्लोरोसेंट लाइव-इमेजिंग का उपयोग किया गया था। पतली जेड-लाइन और एक एम-लाइन क्रमशः दोनों सिरों और एक सारकोमेरे के केंद्र में रहते हैं। जेड-लाइन प्रोटीन-α-ऐक्टिनिन (ACTN2), Telethonin (TCAP), और ऐक्टिन से जुड़े लिम प्रोटीन (PDLIM3)-और एक एम लाइन प्रोटीन-Myomesin-2 (Myom2)-फ्लोरोसेंट प्रोटीन के साथ टैग किया गया । इन टैग किए गए प्रोटीन को एंडोजेनस एलील्स से नॉक-इन या एडेनो-संबद्ध वायरस (एएवी) से व्यक्त किया जा सकता है। यहां, हम कार्डियोमायोसाइट्स के लिए माउस और मानव pluripotent स्टेम कोशिकाओं में अंतर करने के लिए, AAVs का उत्पादन करने के लिए, और प्रदर्शन और लाइव इमेजिंग का विश्लेषण करने के लिए तरीकों का परिचय । हम पीएससी-सीएम की एक पैटर्न वाली संस्कृति के लिए पॉलीडिमिथाइलसिलोक्सेन (पीडीएमएस) टिकटों के उत्पादन के तरीकों का भी वर्णन करते हैं, जो फ्लोरोसेंट-टैग किए गए प्रोटीन के साथ सारकोमेरे छोटा करने के विश्लेषण की सुविधा प्रदान करता है। सारकोमेरे छोटा का आकलन करने के लिए, बीटिंग कोशिकाओं की समय-चूक छवियों को विद्युत उत्तेजना (0.5-1 हर्ट्ज) के तहत एक उच्च फ्रेमरेट (50-100 फ्रेम प्रति सेकंड) पर दर्ज किया गया था। सेल संकुचन के दौरान सारकोमेरे लंबाई का विश्लेषण करने के लिए, रिकॉर्ड किए गए समय-चूक छवियों को सारकोप्टिम के अधीन किया गया था, जो इमेजजे/फिजी के लिए प्लग-इन था। हमारी रणनीति पीएससी-सीएम में हृदय रोग फेनोटाइप की जांच के लिए एक सरल मंच प्रदान करती है।

Introduction

हृदय रोग दुनिया भर में मृत्यु का प्रमुख कारण हैं1 और कार्डियोमायोपैथी हृदय से संबंधित मौतों के तीसरे कारण का प्रतिनिधित्व करता है2। कार्डियोमायोपैथी रोगों का एक सामूहिक समूह है जो हृदय की मांसपेशियों को प्रभावित करता है। प्रेरित pluripotent स्टेम (आईपीएस) कोशिकाओं और कार्डियोमायोसाइट्स (पीएससी-सीएम) की ओर आईपीएस कोशिकाओं के निर्देशित-भेदभाव के हाल के घटनाक्रम कार्डियोमायोपैथी के एक इन विट्रो मॉडल के रूप में रोगी जीनोम के साथ कार्डियोमायोसाइट्स का अध्ययन करने के लिए दरवाजा खोला है । इन कोशिकाओं का उपयोग हृदय रोगों के रोगविज्ञान को समझने, उनके आणविक तंत्र को स्पष्ट करने और विभिन्न चिकित्सीयउम्मीदवारोंका परीक्षण करने के लिए किया जा सकता है। ब्याज की एक जबरदस्त राशि है, इस प्रकार, रोगी-व्युत्पन्न आईपीएस कोशिकाएं उत्पन्न की गई हैं (उदाहरण के लिए, हाइपरट्रोफिक कार्डियोमायोपैथी [एचसीएम]4,5,अतालताजनक सही वेंट्रिकुलर कार्डियोमायोपैथी [एआरवीसी]6,डिलेटेड कार्डियोमायोपैथी [डीसीएम]7,और माइटोकॉन्ड्रियल-कार्डियो से संबंधित क्योंकि कार्डियोमायोपैथी की विशेषताओं में से एक सारकोमर की शिथिलता और व्यवधान है, एक वैध उपकरण जो समान रूप से सारकोमेरे कार्य को मापता है।

सारकोमेरे छोटा सारकोमेरे फ़ंक्शन और पशु मॉडल और मनुष्यों से प्राप्त वयस्क कार्डियोमायोसाइट्स की संकुचन का आकलन करने के लिए सबसे व्यापक रूप से उपयोग की जाने वाली तकनीक है। सरकोमरे को छोटा करने के लिए, चरण-विपरीत के तहत दिखाई देने वाले अच्छी तरह से विकसित सारकोमों की आवश्यकता होती है। हालांकि, पीएससी-सीएम ने विट्रो डिस्प्ले में सुसंस्कृत अविकसित और अव्यवस्थित सारकोमर और इसलिए,10को छोटा करने के लिए सारकोमर को ठीक से मापने के लिए उपयोग करने में असमर्थ हैं। पीएससी-सीएम की संकुचनता का ठीक से आकलन करने में यह कठिनाई विट्रो मेंहृदय कार्यों का आकलन करने के लिए एक मंच के रूप में उनके उपयोग में बाधा डालती है । पीएससी-सीएम की अनुबंध अप्रत्यक्ष रूप से आकलन करने के लिए, परमाणु बल माइक्रोस्कोपी, माइक्रो-पोस्ट सरणी, कर्षण बल माइक्रोस्कोपी, और बाधा माप का उपयोग इन कोशिकाओंद्वारा अपने परिवेश11, 12,13पर किए गए गति के प्रभाव को मापने के लिए किया गया है। वास्तविक सेलुलर मोशन (जैसे, सोनी से SI8000) की अधिक परिष्कृत और कम आक्रामक वीडियो-माइक्रोस्कोपी रिकॉर्डिंग का उपयोग वैकल्पिक रूप से उनकी संकुचन का आकलन करने के लिए किया जा सकता है, हालांकि, यह विधि सीधे सारकोमेरे गति या बल पीढ़ी की गति14को मापने के लिए नहीं है।

पीएससी-सीएम में सारकोमेरे मोशन को सीधे तौर पर मापने के लिए, फ्लोरोसेंट-टैगिंग से लेकर सरकोमेरे प्रोटीन जैसे नए दृष्टिकोण उभर रहे हैं । उदाहरण के लिए, लाइफएक्ट का उपयोग सारकोमेरे मोशन15, 16को मापने के लिए फिलामेंटस ऐक्टिन (एफ-ऐक्टिन) को लेबल करने के लिए कियाजाताहै। आनुवांशिक रूप से संशोधित आईपीएस कोशिकाएं फ्लोरोसेंट प्रोटीन17, 18, 19द्वारा सारकोमेरे प्रोटीन (जैसे, α-ऐक्टिनिन [ACTN2] और मायोमसिन-2 [MYOM2]) को टैग करने के लिए एक और विकल्प हैं ।

इस पेपर में, हम वर्णन करते हैं कि Myom2-TagRFP (माउस भ्रूणीय स्टेम [ईएस] कोशिकाओं) और ACTN2-mCherry (मानव आईपीएस कोशिकाओं) का उपयोग करके सारकोमरे को छोटा करने के लिए समय-चूक इमेजिंग कैसे करें। हम यह भी बताते हैं कि एक नमूनों वाली संस्कृति सारकोमेरे संरेखण की सुविधा प्रदान करती है। इसके अलावा, हम एडेनो से जुड़े वायरस (एएवी) का उपयोग करके सारकोमेरे लेबलिंग की एक वैकल्पिक विधि का वर्णन करते हैं, जिसे रोगी-व्युत्पन्न आईपीएस कोशिकाओं पर व्यापक रूप से लागू किया जा सकता है।

Protocol

1. माउस pluripotent स्टेम सेल का भेदभाव माउस ईएस कोशिकाओं का रखरखाव रखरखाव माध्यम: भ्रूण गोजातीय सीरम (एफबीएस) के 50 मिलीएल मिश्रण, एल-एलेनिन-एल-ग्लूटामाइन के 5 मिलीएल, गैर-आवश्यक अमीनो एसिड (एनईएए) के 5 मिलीए?…

Representative Results

पीएससी-सीएम रिपोर्टर लाइनों में दस्तक का उपयोग कर sarcomere छोटा मापने । सारकोमेरे-लेबल पीएससी-सीएम का उपयोग सारकोमेरे छोटा करने के लिए किया जाता था । लाइनें अंतर्जात लोकी से Myom2-RFP और ACTN2-mCherry ?…

Discussion

पीएससी-सीएम में हृदय रोग को मॉडल करने और दवाओं के प्रभावों को परखने के लिए इन विट्रो प्लेटफॉर्म के रूप में उपयोग करने की अपार संभावनाएं हैं । फिर भी, पीएससी-सीएम कार्यों का आकलन करने के लिए एक सटीक, एक…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम जिची मेडिकल यूनिवर्सिटी में रिजेनरेटिव मेडिसिन के डिवीजन में सभी लैब सदस्यों को सहायक चर्चा और तकनीकी सहायता के लिए स्वीकार करना चाहेंगे । इस अध्ययन को जापान एजेंसी फॉर मेडिकल रिसर्च एंड डेवलपमेंट (एएमईडी) के अनुदानों द्वारा समर्थित किया गया था; JP18bm0704012 और JP20bm0804018), विज्ञान के संवर्धन के लिए जापान सोसायटी (JSPS; JP19KK0219), और जापानी परिसंचरण सोसायटी (बेसिक रिसर्च के लिए अनुदान) एचयू के लिए

Materials

1-Thioglycerol Sigma-Aldrich M6145-25
2-Mercaptoethanol (55mM) Thermo Fisher Scientific 21985-023
2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine (MPC) polymer, NOF Corp. LIPIDURE-CM5206
2-Propanol Fujifilm wako 166-04836
35-mm imaging dish with a polymer coverslip (µ-Dish 35 mm, high) ibidi 81156
AAVproR Helper Free System (AAV6)
(vectors; pHelper, pRC6, pAAV-CMV-Vector)
Takara 6651
ACTN2-mCherry (AR12, AR21) hiPSCs N.A. We inserted IRES-puromycin resistant casette to 3' UTR of TNNT2 locus and mCherry around the stop codon of ACTN2 in 610B1 hiPSC line, following a method describe elsewhere (Anzai, Methods Mol Biol, in press)
B-27 Supplement (50X), serum free Thermo Fisher Scientific 17504-044
B-27 Supplement, minus insulin Thermo Fisher Scientific A18956-01
B27 supplement (50X), minus Vitamin A Thermo Fisher Scientific 12587-010
Benzonase (25 U/µL) Merck Millipore 70746
Blasticidin S Hydrochloride Fujifilm wako 029-18701
BMP-4, Human, Recombinant, R&D Systems, Inc. 314-BP-010
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich A4503-100g
C59, Wnt Antagonist (WntC59) abcam ab142216
CAD drawing software, Robert McNeel and Associates, WA, USA Rhinoceros 6.0
Centrifugal ultrafiltration unit (100k MWCO), Vivaspin-20 Sartorius VS2042
CHIR99021 Cayman 13122
Chromium etchant Nihon Kagaku Sangyo Co., Ltd., Japan N14B
Chromium mask coated with AZP1350 Clean Surface Technology Co., Japan CBL2506Bu-AZP
Dr. GenTLE Precipitation Carrier (20mg/mL Glycogen, 3 M Sodium Acetate (pH 5.2)) Takara 9094
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium (DMEM) – high glucose Sigma-Aldrich D6429-500
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium (DMEM) – high glucose, without sodium pyruvate Sigma-Aldrich D5796
Ethanol (99.5) Fujifilm wako 057-00456
Fetal Bovine Serum Moregate 59301104
FGF-10, Human, Recombinant, R&D Systems, Inc. 345-FG-025
Fibroblast Growth Factor(basic), human, recombinant Fujifilm wako 060-04543
Gelatin from porcine skin powder Sigma-Aldrich G1890-100g
Glasgow Minimum Essential Medium (GMEM) Sigma-Aldrich G5154-500
GLASS BOTTOM culture plates MatTek P24G-1.5-13-F/H
Ham’s F-12 Thermo Fisher Scientific 11765-062
Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) Thermo Fisher Scientific 12440-061
L-alanine-L-glutamine (GlutaMAX Supplement, 200mM) Thermo Fisher Scientific 35050-061
L(+)-Ascorbic Acid Sodium Salt Fujifilm wako 196-01252
Laminin-511 E8 fragment (LN511-E8, iMatrix-511) Nippi 892012
Mask aligner Union Optical Co., Ltd., Japan PEM-800
Maskless lithography tool NanoSystem Solutions, Inc., Japan D-Light DL-1000
MEM Non-Essential Amino Acids Solution (100X) Thermo Fisher Scientific 11140-050
Millex-HV Syringe Filter Unit, 0.45 µm, PVDF (0.45-µm filter) Merck Millipore SLHVR33RS
Myom2-RFP (SMM18) N.A. Developed in our previous paper (Chanthra, Sci Rep, 2020)
N-2 Supplement (100X) Thermo Fisher Scientific 17502-048
ORCA-Flash4.0 V3 digital CMOS camera Hamamatsu C13440-20CU
PD0325901 Stemgent 04-0006-10
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Thermo Fisher Scientific 15140-122
Petri dish Sansei medical co. Ltd 01-004
Phenol/Chloroform/Isoamyl alcohol (25:24:1) Nippon Gene 311-90151
Polydimethylsiloxane (PDMS) elastomer Dow Corning Corp., MI, USA SILPOT 184
polyethylenimine MAX (MW. 40,000) Polyscience 24765-1
Positive photoresist developer Tokyo Ohka Kogyo Co., Ltd., Japan NMD-3
PowerUp SYBR Green Master Mix Thermo Fisher Scientific A25742
Proteinase K Takara 9034
Puromycin Dihydrochloride Fujifilm wako 166-23153
Recombinant Human/Mouse/Rat Activin A Protein R&D Systems, Inc. 338-AC-050
Recombinant trypsin-like protease (rTrypsin; TrypLE express) Thermo Fisher Scientific 12604-039
RPMI1640 Medium Thermo Fisher Scientific 11875-119
Silicon wafer Matsuzaki Seisakusyo Co., Ltd., Japan N.A.
Sodium Pyruvate (100 mM) Thermo Fisher Scientific 11360-070
Spin-coater Mikasa Co., Ltd., Japan MS-A100
Spininng confocal microscopy Oxford Instruments Andor Dragonfly Spinning Disk System
StemSure LIF, Mouse, recombinant, Solution (10^6U) Fujifilm wako 195-16053
SU-8 3010 Kayaku Advanced Materials, Inc., MA, USA SU-8 3010
SU-8 developer Kayaku Advanced Materials, Inc., MA, USA SU-8 developer
Tris-EDTA Nippon Gene 314-90021
Vascular Endothelial Growth Factor-A165(VEGF), Human, recombinant Fujifilm wako 226-01781

References

  1. Mensah, G. A., Roth, G. A., Fuster, V. The Global Burden of Cardiovascular Diseases and Risk Factors. Journal of the American College of Cardiology. 74 (20), 2529-2532 (2019).
  2. Wexler, R. K., Elton, T., Pleister, A., Feldman, D. Cardiomyopathy: an overview. American Family Physician. 79 (9), 778-784 (2009).
  3. Parrotta, E. I., Lucchino, V., Scaramuzzino, L., Scalise, S., Cuda, G. Modeling Cardiac Disease Mechanisms Using Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Cardiomyocytes: Progress, Promises and Challenges. International Journal of Molecular Sciences. , 30 (2020).
  4. Carvajal-Vergara, X., et al. Patient-specific induced pluripotent stem-cell-derived models of LEOPARD syndrome. Nature. 465 (7299), 808-812 (2010).
  5. Lan, F., et al. Abnormal calcium handling properties underlie familial hypertrophic cardiomyopathy pathology in patient-specific induced pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 12 (1), 101-113 (2013).
  6. Kim, C., et al. Studying arrhythmogenic right ventricular dysplasia with patient-specific iPSCs. Nature. 494 (7435), 105-110 (2013).
  7. Gramlich, M., et al. Antisense-mediated exon skipping: a therapeutic strategy for titin-based dilated cardiomyopathy. EMBO Molecular Medicine. 7 (5), 562-576 (2015).
  8. Wang, G., et al. Modeling the mitochondrial cardiomyopathy of Barth syndrome with induced pluripotent stem cell and heart-on-chip technologies. Nature Medicine. 20 (6), 616-623 (2014).
  9. Li, S., et al. Mitochondrial Dysfunctions Contribute to Hypertrophic Cardiomyopathy in Patient iPSC-Derived Cardiomyocytes with MT-RNR2 Mutation. Stem Cell Reports. 10 (3), 808-821 (2018).
  10. Cho, G. -. S., et al. Neonatal Transplantation Confers Maturation of PSC-Derived Cardiomyocytes Conducive to Modeling Cardiomyopathy. Cell Reports. 18 (2), 571-582 (2017).
  11. Yang, X., et al. Tri-iodo-l-thyronine promotes the maturation of human cardiomyocytes-derived from induced pluripotent stem cells. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 72, 296-304 (2014).
  12. Ribeiro, A. J. S., et al. Multi-Imaging Method to Assay the Contractile Mechanical Output of Micropatterned Human iPSC-Derived Cardiac Myocytes. Circulation Research. 120 (10), 1572-1583 (2017).
  13. Sewanan, L. R., Campbell, S. G. Modelling sarcomeric cardiomyopathies with human cardiomyocytes derived from induced pluripotent stem cells. The Journal of Physiology. 598 (14), 2909-2922 (2020).
  14. Kopljar, I., et al. Chronic drug-induced effects on contractile motion properties and cardiac biomarkers in human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. British Journal of Pharmacology. 174 (21), 3766-3779 (2017).
  15. Riedl, J., et al. Lifeact: a versatile marker to visualize F-actin. Nature Methods. 5 (7), 605-607 (2008).
  16. Ribeiro, A. J. S., et al. Contractility of single cardiomyocytes differentiated from pluripotent stem cells depends on physiological shape and substrate stiffness. Proceedings of the National Academy of Sciences. 112 (41), 12705-12710 (2015).
  17. Roberts, B., et al. Fluorescent Gene Tagging of Transcriptionally Silent Genes in hiPSCs. Stem Cell Reports. 12 (5), 1145-1158 (2019).
  18. Chanthra, N., et al. A Novel Fluorescent Reporter System Identifies Laminin-511/521 as Potent Regulators of Cardiomyocyte Maturation. Scientific Reports. 10 (1), 4249 (2020).
  19. Ribeiro, M. C., et al. A cardiomyocyte show of force: A fluorescent alpha-actinin reporter line sheds light on human cardiomyocyte contractility versus substrate stiffness. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 141, 54-64 (2020).
  20. Yamanaka, S., Zahanich, I., Wersto, R. P., Boheler, K. R. Enhanced Proliferation of Monolayer Cultures of Embryonic Stem (ES) Cell-Derived Cardiomyocytes Following Acute Loss of Retinoblastoma. PLoS ONE. 3 (12), 3896 (2008).
  21. Miyazaki, T., Isobe, T., Nakatsuji, N., Suemori, H. Efficient Adhesion Culture of Human Pluripotent Stem Cells Using Laminin Fragments in an Uncoated Manner. Scientific Reports. 7 (1), 41165 (2017).
  22. Prasad, K. -. M. R., Xu, Y., Yang, Z., Acton, S. T., French, B. A. Robust cardiomyocyte-specific gene expression following systemic injection of AAV: in vivo gene delivery follows a Poisson distribution. Gene Therapy. 18 (1), 43-52 (2011).
  23. Arakawa, H., et al. Protein evolution by hypermutation and selection in the B cell line DT40. Nucleic Acids Research. 36 (1), e1 (2007).
  24. Konno, A., Hirai, H. Efficient whole brain transduction by systemic infusion of minimally purified AAV-PHP.eB. Journal of Neuroscience Methods. 346, 108914 (2020).
  25. Anzai, T., et al., Yoshida, Y., et al. Generation of Efficient Knock-in Mouse and Human Pluripotent Stem Cells Using CRISPR-Cas9. Methods of Molecular Biology. , (2020).
  26. Ahmed, R. E., Anzai, T., Chanthra, N., Uosaki, H. A Brief Review of Current Maturation Methods for Human Induced Pluripotent Stem Cells-Derived Cardiomyocytes. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 8, 178 (2020).
  27. Moretti, A., et al. Patient-specific induced pluripotent stem-cell models for long-QT syndrome. The New England Journal of Medicine. 363 (15), 1397-1409 (2010).
  28. Flores, L. R., Keeling, M. C., Zhang, X., Sliogeryte, K., Gavara, N. Lifeact-GFP alters F-actin organization, cellular morphology and biophysical behaviour. Scientific Reports. 9 (1), 3241 (2019).
  29. Sparrow, A. J., et al. Measurement of Myofilament-Localized Calcium Dynamics in Adult Cardiomyocytes and the Effect of Hypertrophic Cardiomyopathy Mutations. Circulation Research. 124 (8), 1228-1239 (2019).
check_url/kr/62129?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ahmed, R. E., Chanthra, N., Anzai, T., Koiwai, K., Murakami, T., Suzuki, H., Hanazono, Y., Uosaki, H. Sarcomere Shortening of Pluripotent Stem Cell-Derived Cardiomyocytes using Fluorescent-Tagged Sarcomere Proteins.. J. Vis. Exp. (169), e62129, doi:10.3791/62129 (2021).

View Video