Summary

Et In vitro-system til at måle den trombolytiske effekt af histotripsi og et lytisk lægemiddel

Published: June 04, 2021
doi:

Summary

Histotripsi-aided lytic levering eller lysotripsi er under udvikling til behandling af dyb venetrombose. En in vitro-procedure præsenteres her for at vurdere effekten af denne kombinationsbehandling. Nøgleprotokoller for blodpropmodellen, billedvejledningen og vurderingen af behandlingseffektiviteten diskuteres.

Abstract

Dyb venetrombose (DVT) er et globalt sundhedsmæssigt problem. Den primære tilgang til at opnå recanalisering af fartøjer for kritiske forhindringer er kateterstyret trombolytika (CDT). For at afbøde kaustiske bivirkninger og den lange behandlingstid forbundet med CDT, adjuvans og alternative tilgange er under udvikling. En sådan tilgang er histotripsi, en fokuseret ultralydsbehandling for at ablate væv via bobleskynukleation. Prækliniske undersøgelser har vist stærk synergi mellem histotripsi og trombolytika for blodprop nedbrydning. Denne rapport skitserer en bordplade metode til at vurdere effekten af histotripsi-aided trombolytisk behandling, eller lysotripsi.

Blodpropper fremstillet af frisk humant venøs blod blev indført i en flowkanal, hvis dimensioner og acousto-mekaniske egenskaber efterligner en iliofemoralsk vene. Kanalen var gennemsyret af plasma og lytic rekombinant væv-type plasminogen aktivator. Bobleskyer blev genereret i blodproppen med en fokuseret ultralydskilde designet til behandling af lårvenvenøse blodpropper. Motoriserede positioners blev brugt til at oversætte kilden fokus langs blodproppen længde. På hvert insonationssted blev akustiske emissioner fra bobleskyen passivt registreret og stråleformet for at generere passive kavitationsbilleder. Målinger til måling af behandlingseffekten omfattede blodprop massetab (samlet behandlingseffekt) og koncentrationerne af D-dimer (fibrinolyse) og hæmoglobin (hæmolyse) i perfusat. Der er begrænsninger for denne in vitro design, herunder manglende midler til at vurdere in vivo bivirkninger eller dynamiske ændringer i strømningshastighed som blodproppen lyses. Samlet set giver opsætningen en effektiv metode til at vurdere effekten af histotripsi-baserede strategier til behandling af DVT.

Introduction

Trombose er tilstanden af blodprop dannelse i en ellers sund blodkar, der hindrer omsætning1,2. Venøs tromboemboli har en årlig sundhedsudgifter på $7-10 milliarder, med 375,000-425,000 tilfælde i USA3. Lungeemboli er obstruktion af lungepulsåren og er den mest alvorlige konsekvens af venøs tromboemboli. Den primære kilde til lungeobstruktion er dyb vene thrombi, primært fra iliofemoral venøse segmenter4,5,6. Dyb venetrombose (DVT) har iboende følgevirkninger udover lungeobstruktioner, med langsigtede komplikationer, der resulterer i smerte, hævelse, bensår og amputationer aflemmerne 7,8,9. For kritiske forhindringer, kateter rettet trombolytics (CDT) er frontlinjen tilgang til fartøj recanalization10. Resultatet af CDT afhænger af en række faktorer, herunder trombe alder, placering, størrelse, sammensætning, ætiologi, og patientrisiko kategori11. Desuden er CDT forbundet med vaskulær skade, infektioner, blødningskomplikationer og lang behandlingstid10. Næste generations enheder har til formål at kombinere mekanisk trombektomi med trombolytika (dvs. farmakkomesisk trombektomi)12,13. Brugen af disse enheder sænker den lytiske dosis, hvilket fører til reducerede blødningskomplikationer, og forkortede behandlingstiden12,13,14 sammenlignet med CDT. Disse enheder stadig bevare problemer med hæmoragiske bivirkninger og ufuldstændig fjernelse af kronisk thrombi15. En adjuvans strategi er derfor nødvendig, der kan fjerne tromben helt med lavere blødning komplikationer.

En potentiel tilgang er histotripsi-aided trombolytisk behandling, benævnt lysotripsi. Histotripsi er en ikke-invasiv behandling modalitet, der bruger fokuseret ultralyd til at nukleate boble skyer i væv16. Bobleaktivitet genereres ikke via eksogene kerner, men ved anvendelse af ultralydsimpulser med tilstrækkelig spænding til at aktivere kerner iboende væv, herunder blodprop17,18. Den mekaniske svingning af bobleskyen giver stammen til blodproppen og opløser strukturen i acellulære snavs19. Histotripsi boble aktivitet giver effektiv nedbrydning af tilbagetrukne og unretracted blodpropper både in vivo og in vitro20,21,22. Tidligere undersøgelser har23,24 påvist, at kombinationen af histotripsi og lytic rekombinant vævstype plasminogen aktivator (rt-PA) øger behandlingseffektiviteten (rt-PA) betydeligt i forhold til lytic alene eller histotripsi alene. Det er en hypotese, at to primære mekanismer forbundet med histotripsi boble aktivitet er ansvarlige for den forbedrede behandling effekt: 1) øget fibrinolyse på grund af øget lytic levering, og 2) hæmolyse af røde blodlegemer i blodproppen. Hovedparten af blodproppen består af røde blodlegemer24, og derfor er sporing af erythrocyt nedbrydning en god surrogat for ablation af prøven. Andre dannede blodprop elementer er også sandsynligvis opløst under histotripsi boble aktivitet, men er ikke taget i betragtning i denne protokol.

Her er en bordplade tilgang til behandling af DVT in vitro med lysotripsi skitseret. Protokollen beskriver kritiske driftsparametre for histotripsikilden, vurdering af behandlingseffekt og billedvejledning. Protokollen omfatter designe en flow kanal til at efterligne en iliofemoral venøs segment og fremstilling af humane fuldblodspropper. Den eksperimentelle procedure skitserer placeringen af histotripsi kilde og billeddannelse array for at opnå histotripsi eksponering langs blodproppen placeret i flowkanalen. Relevante insonationsparametre for at opnå blodpropforstyrrelser og minimere off-target bobleaktivitet defineres. Brugen af ultralydsscanning til vejledning og vurdering af bobleaktivitet er illustreret24. Målinger til kvantificering af behandlingseffekten, såsom massetab af blodpropper, D-dimer (fibrinolyse) og hæmoglobin (hæmolyse) er skitseret23,24,25,26,27. Samlet set giver undersøgelsen et effektivt middel til at udføre og vurdere effekten af lysotripsi til behandling af DVT.

Protocol

For de resultater, der præsenteres her, venøse humane blod blev trukket til at danne blodpropper efter godkendelse fra den lokale interne review board (IRB # 19-1300) og skriftligt informeret samtykke fra frivillige donorer24. I dette afsnit skitseres en designprotokol til vurdering af lysotripsieffekten. Protokollen er baseret på et tidligere værk af Bollen et al.24. 1. Clot modellering BEMÆRK: Forbered blodpropper…

Representative Results

Protokollen skitseret i denne undersøgelse fremhæver detaljerne i venøs blodprop modellering, lysotripsi for blodprop forstyrrelser, og ultralydsscanning i en in vitro setup af DVT. Den vedtagne procedure viser de nødvendige skridt til at vurdere forstyrrelser i blodpropper på grund af de kombinerede virkninger af rt-PA og histotripsy boble cloud aktivitet. Bænken setup var designet til at efterligne de særlige kendetegn ved en venøs iliofemoral vene. Figur 1A viser et modelkar, der …

Discussion

Den foreslåede protokol præsenterer en model til at kvantificere behandlingseffekten af lysotripsi. Mens de vigtigste detaljer er blevet drøftet, er der visse kritiske aspekter at overveje for succesen af denne protokol. Den enzymatiske aktivitet af RT-PA har en Arrhenius temperatur afhængighed30. Temperatur er også en medvirkende faktor til lydens hastighed i vand og væv, og temperaturudsving kan forårsage mindre ændringer af fokuszonens geometri. Vandtemperaturen bør således reguleres …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev finansieret af National Institutes of Health, Grant R01HL13334. Forfatterne vil gerne takke Dr. Kevin Haworth for at hjælpe med Drabkin’s assay og Dr. Viktor Bollen for hans støtte i udformningen af protokollen. Forfatterne er også taknemmelige for Dr. Adam Maxwell for hans vejledning om at designe histotripsy kilde.

Materials

Absorbing sheets Precision acoustics F28-SMALL-M 300mm x 300 mm x 10 mm
Borosilicate Pasteur pippettes Fisher Scientific 1367820A 14.6 cm length, 2 mL capacity
Centrifuge tubes Eppendorf 22364111 1.5 mL capacity
Drabkin's assay Sigma Aldrich D5941-6VL
Draw syringe Cole-Parmer EW-07945-43 60 mL capacity
Filter bags McMaster-Carr 5162K111 Remove particle size upto 1 microns
Flow channel tubing McMaster-Carr 5154K25 Polyethylene-lined EVA plastic tubing (Outer diameter: 3/8", Inner diameter: 1/4"
Heating elements Won Brothers HT 300 Titanium Titanium rods placed at the bottom of tank
Imaging array Verasonics L11-5v 128 element with sensitivity from -55 to -49 dB
Low gelling agarose Millipore Sigma A9414
Model vessel McMaster-Carr 5234K98 6.6 cm length, 0.6 cm inner diameter, 1 mm thickness
Nanopure water Barnstead Nanopure Diamond ASTM type I, 18 Mohm-cm resistivity
Plasma Vitalant 4PF000 Plasma frozen within 24 hours
Plate reader Biotek Synergy Neo HST Plate Reader For haemoglobin quantification
Probe cover Civco 610-362
Programming platform MATLAB (the Mathworks, Natick, MA, USA)
Recombinant tissue-type plasminogen activator (rt-PA) Genentech Activase
Reservoir Cole-Parmer EW-07945-43 60 mL capacity
Syringe pump Cole-Parmer EW-74900-20 pump attached to the syringe to draw the flow in the flow channel at a pre-determined fized rate
Transducer In-house customized Eight-element, elliptically-focused transducer (9 cm major axis, 7 cm minor axis and 6 cm focal length), powered by custom designed and built class D amplifier and matching network
Ultrasound scaning system Verasonics Vantage Research Ultrasound System
Water tank Advanced acrylics C133 14 x 14 x 12, 1/2"

References

  1. Oklu, R. Thrombosis. Cardiovascular Diagnosis and Therapy. 7, 131-133 (2017).
  2. Satoh, K., Satoh, T., Yaoita, N., Shimokawa, H. Recent advances in the understanding of thrombosis. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 39 (6), 159-165 (2019).
  3. Grosse, S. D., Nelson, R. E., Nyarko, K. A., Richardson, L. C., Raskob, G. E. The economic burden of incident venous thromboembolism in the United States: A review of estimated attributable healthcare costs. Thrombosis Research. 137, 3-10 (2016).
  4. Hirsh, J., Hoak, J. Management of deep vein thrombosis and pulmonary embolism. Circulation. 93 (12), 2212-2245 (1996).
  5. Browse, N. L., Clemenson, G., Croft, D. N. Fibrinogen-detectable thrombosis in the legs and pulmonary embolism. British Medical Journal. 1 (5908), 603-604 (1974).
  6. Plate, G., Ohlin, P., Eklöf, B. Pulmonary embolism in acute iliofemoral venous thrombosis. British Journal of Surgery. 72 (11), 912-915 (1985).
  7. Chen, J. X., Sudheendra, D., Stavropoulos, S. W., Nadolski, G. J. Role of catheter-directed thrombolysis in management of iliofemoral deep venous thrombosis. Radiographics. 36 (5), 1565-1575 (2016).
  8. Kahn, S. R., Solymoss, S., Lamping, D. L., Abenhaim, L. Long-term outcomes after deep vein thrombosis: postphlebitic syndrome and quality of life. Journal of General Internal Medicine. 15 (6), 425-429 (2000).
  9. Oğuzkurt, L., Ozkan, U., Gülcan, O., Koca, N., Gür, S. Endovascular treatment of acute and subacute iliofemoral deep venous thrombosis by using manual aspiration thrombectomy: long-term results of 139 patients in a single center. Diagnostic and Interventional Radiology. 18 (4), 410-416 (2012).
  10. Lauw, M. N., Büller, H. R. . Current Approaches to Deep Vein Thrombosis. , 136-160 (2014).
  11. Kearon, C., et al. Antithrombotic therapy for VTE disease: antithrombotic therapy and prevention of thrombosis: American college of chest physicians evidence-based clinical practice guidelines. Chest. 141 (2), 419-496 (2012).
  12. Pouncey, A. L., et al. AngioJet Pharmacomechanical Thrombectomy and Catheter Directed Thrombolysis vs. Catheter Directed Thrombolysis Alone for the Treatment of Iliofemoral Deep Vein Thrombosis: A Single Centre Retrospective Cohort Study. European Journal of Vascular and Endovascular Surgery. , (2020).
  13. Tang, T., Chen, L., Chen, J., Mei, T., Lu, Y. Pharmacomechanical thrombectomy versus catheter-directed thrombolysis for iliofemoral deep vein thrombosis: a meta-analysis of clinical trials. Clinical and Applied Thrombosis/Hemostasis. 25, (2019).
  14. Kuo, T. -. T., Huang, C. -. Y., Hsu, C. -. P., Lee, C. -. Y. Catheter-directed thrombolysis and pharmacomechanical thrombectomy improve midterm outcome in acute iliofemoral deep vein thrombosis. Journal of the Chinese Medical Association. 80 (2), 72-79 (2017).
  15. Donaldson, C. W., et al. Thrombectomy using suction filtration and veno-venous bypass: single center experience with a novel device. Catheterization and Cardiovascular Interventions. 86 (2), 81-87 (2015).
  16. Khokhlova, V. A., et al. Histotripsy methods in mechanical disintegration of tissue: Towards clinical applications. International Journal of Hyperthermia. 31 (2), 145-162 (2015).
  17. Bader, K. B., Vlaisavljevich, E., Maxwell, A. D. For whom the bubble grows: Physical principles of bubble nucleation and dynamics in histotripsy ultrasound therapy. Ultrasound in Medicine & Biology. 45 (5), 1056-1080 (2019).
  18. Maxwell, A. D., et al. Noninvasive thrombolysis using pulsed ultrasound cavitation therapy-histotripsy. Ultrasound in Medicine & Biology. 35 (12), 1982-1994 (2009).
  19. Xu, Z., et al. Size measurement of tissue debris particles generated from pulsed ultrasound cavitational therapy-histotripsy. Ultrasound in Medicine & Biology. 35 (2), 245-255 (2009).
  20. Vlaisavljevich, E., et al. Effects of tissue stiffness, ultrasound frequency, and pressure on histotripsy-induced cavitation bubble behavior. Physics in Medicine and Biology. 60 (6), 2271-2292 (2015).
  21. Zhang, X., et al. Histotripsy thrombolysis on retracted clots. Ultrasound in Medicine & Biology. 42 (8), 1903-1918 (2016).
  22. Maxwell, A. D., et al. Noninvasive treatment of deep venous thrombosis using pulsed ultrasound cavitation therapy (histotripsy) in a porcine model. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 22 (3), 369-377 (2011).
  23. Bader, K. B., et al. Efficacy of histotripsy combined with rt-PA in vitro. Physics in Medicine and Biology. 61 (14), 5253-5274 (2016).
  24. Bollen, V., et al. In vitro thrombolytic efficacy of single- and five-cycle histotripsy pulses and rt-PA. Ultrasound in Medicine & Biology. 46 (2), 336-349 (2020).
  25. Wang, Y. N., Khokhlova, T., Bailey, M., Hwang, J. H., Khokhlova, V. Histological and biochemical analysis of mechanical and thermal bioeffects in boiling histotripsy lesions induced by high intensity focused ultrasound. Ultrasound in Medicine & Biology. 39 (3), 424-438 (2013).
  26. Weisel, J. W., Litvinov, R. I. Fibrin formation, structure and properties. Sub-Cellular Biochemistry. 82, 405-456 (2017).
  27. Devanagondi, R., et al. Hemodynamic and hematologic effects of histotripsy of free-flowing blood: implications for ultrasound-mediated thrombolysis. Journal of Vascular and Interventional Radiology: JVIR. 26 (10), 1559-1565 (2015).
  28. Holland, C. K., Vaidya, S. S., Datta, S., Coussios, C. -. C., Shaw, G. J. Ultrasound-enhanced tissue plasminogen activator thrombolysis in an in vitro porcine clot model. Thrombosis Research. 121 (5), 663-673 (2008).
  29. Sutton, J. T., Ivancevich, N. M., Perrin, S. R., Vela, D. C., Holland, C. K. Clot retraction affects the extent of ultrasound-enhanced thrombolysis in an ex vivo porcine thrombosis model. Ultrasound in Medicine & Biology. 39 (5), 813-824 (2013).
  30. Shaw, G. J., Dhamija, A., Bavani, N., Wagner, K. R., Holland, C. K. Arrhenius temperature dependence of in vitro tissue plasminogen activator thrombolysis. Physics in Medicine & Biology. 52 (11), 2953 (2007).
  31. Pinto, J., et al. Human plasma stability during handling and storage: impact on NMR metabolomics. Analyst. 139 (5), 1168-1177 (2014).
  32. Shaw, G. J., Sperling, M., Meunier, J. M. Long-term stability of recombinant tissue plasminogen activator at -80 C. BMC Research Notes. 2 (1), 117 (2009).
  33. Maxwell, A. D., et al. Cavitation clouds created by shock scattering from bubbles during histotripsy. The Journal of the Acoustical Society of America. 130 (4), 1888-1898 (2011).
  34. Jensen, C. T., et al. Qualitative slow blood flow in lower extremity deep veins on doppler sonography: quantitative assessment and preliminary evaluation of correlation with subsequent deep venous thrombosis development in a tertiary care oncology center. Journal of Ultrasound in Medicine. 36 (9), 1867-1874 (2017).
  35. Haworth, K. J., Bader, K. B., Rich, K. T., Holland, C. K., Mast, T. D. Quantitative frequency-domain passive cavitation imaging. IEEE Transactions on Ultrasonics, Ferroelectrics, and Frequency Control. 64 (1), 177-191 (2017).
  36. Hamano, A., et al. Latex immunoturbidimetric assay for soluble fibrin complex. Clinical Chemistry. 51 (1), 183-188 (2005).
  37. Drabkin, D. L., Austin, J. H. Spectrophotometric studies II. Preparations from washed blood cells; nitric oxide hemoglobin and sulfhemoglobin. Journal of Biological Chemistry. 112 (1), 51-65 (1935).
  38. Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. Hematoxylin and eosin staining of tissue and cell sections. CSH Protocols. 2008, (2008).
  39. Coviello, C., et al. Passive acoustic mapping utilizing optimal beamforming in ultrasound therapy monitoring. The Journal of the Acoustical Society of America. 137 (5), 2573-2585 (2015).
  40. Mori, K., Dwek, R. A., Downing, A. K., Opdenakker, G., Rudd, P. M. The activation of type 1 and type 2 plasminogen by type I and type II tissue plasminogen activator. Journal of Biological Chemistry. 270 (7), 3261-3267 (1995).
  41. Righini, M., Perrier, A., De Moerloose, P., Bounameaux, H. D-Dimer for venous thromboembolism diagnosis: 20 years later. Journal of Thrombosis and Haemostasis: JTH. 6 (7), 1059-1071 (2008).
  42. Hilleman, D. E., Razavi, M. K. Clinical and economic evaluation of the Trellis-8 infusion catheter for deep vein thrombosis. Journal of Vascular and Interventional Radiology: JVIR. 19 (3), 377-383 (2008).
  43. De Sensi, F., et al. Predictors of successful ultrasound guided femoral vein cannulation in electrophysiological procedures. Journal of Atrial Fibrillation. 11 (3), 2083 (2018).
  44. Vlaisavljevich, E., et al. Effects of ultrasound frequency and tissue stiffness on the histotripsy intrinsic threshold for cavitation. Ultrasound in Medicine & Biology. 41 (6), 1651-1667 (2015).
  45. Vlaisavljevich, E., et al. Histotripsy-induced cavitation cloud initiation thresholds in tissues of different mechanical properties. IEEE Transactions on Ultrasonics, Ferroelectrics, and Frequency Control. 61 (2), 341-352 (2014).
  46. Hendley, S. A., Paul, J. D., Bader, K. B. Mechanistic investigation of clot degradation via the action of histotripsy and thrombolytic. Joint AAPM | COMP Virtual Meeting. The American Association of Physics in Medicine. , (2020).
  47. Goss, S. A., Johnston, R. L., Dunn, F. Comprehensive compilation of empirical ultrasonic properties of mammalian tissues. The Journal of the Acoustical Society of America. 64 (2), 423-457 (1978).
  48. Duck, F. A., Duck, F. A. . Physical Properties of Tissues. , 137-165 (1990).
  49. Bader, K. B., Haworth, K. J., Maxwell, A. D., Holland, C. K. Post hoc analysis of passive cavitation imaging for classification of histotripsy-induced liquefaction in vitro. IEEE Transactions on Medical Imaging. 37 (1), 106-115 (2018).
  50. Crake, C., et al. Enhancement and passive acoustic mapping of cavitation from fluorescently tagged magnetic resonance-visible magnetic microbubbles in vivo. Ultrasound in Medicine & Biology. 42 (12), 3022-3036 (2016).
  51. Gyongy, M., Coussios, C. Passive spatial mapping of inertial cavitation during HIFU exposure. IEEE Transactions on Biomedical Engineering. 57 (1), 48-56 (2010).
  52. Canney, M. S., Bailey, M. R., Crum, L. A., Khokhlova, V. A., Sapozhnikov, O. A. Acoustic characterization of high intensity focused ultrasound fields: A combined measurement and modeling approach. The Journal of the Acoustical Society of America. 124 (4), 2406-2420 (2008).
  53. Czaplicki, C., et al. Can thrombus age guide thrombolytic therapy. Cardiovascular Diagnosis and Therapy. 7, 186-196 (2017).
  54. Bajd, F., Vidmar, J., Blinc, A., Sersa, I. Microscopic clot fragment evidence of biochemo-mechanical degradation effects in thrombolysis. Thrombosis Research. 126 (2), 137-143 (2010).
  55. Wang, C., et al. Efficacy and safety of low dose recombinant tissue-type plasminogen activator for the treatment of acute pulmonary thromboembolism: a randomized, multicenter, controlled trial. Chest. 137 (2), 254-262 (2010).
  56. Arvanitis, C. D., Crake, C., McDannold, N., Clement, G. T. Passive acoustic mapping with the angular spectrum method. IEEE Transactions on Medical Imaging. 36 (4), 983-993 (2017).
  57. Khokhlova, V. A., et al. Histotripsy methods in mechanical disintegration of tissue: towards clinical applications. International Journal of Hyperthermia: The Official Journal of European Society for Hyperthermic Oncology, North American Hyperthermia Group. 31 (2), 145-162 (2015).
  58. Roberts, W. W. Development and translation of histotripsy: current status and future directions. Current Opinion in Urology. 24 (1), 104-110 (2014).
check_url/kr/62133?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Bhargava, A., Hendley, S. A., Bader, K. B. An In vitro System to Gauge the Thrombolytic Efficacy of Histotripsy and a Lytic Drug. J. Vis. Exp. (172), e62133, doi:10.3791/62133 (2021).

View Video