Summary

रोगी परिधीय रक्त मोनोन्यूक्लियर कोशिकाओं से मानव कार्डियोमायोसाइट्स का उत्पादन और विस्तार

Published: February 12, 2021
doi:

Summary

यहां, हम रोगी परिधीय रक्त मोनोन्यूक्लियर कोशिकाओं से मानव कार्डियोमायोसाइट्स को मजबूती से उत्पन्न करने और विस्तारित करने के लिए एक प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं।

Abstract

एक ही रक्त ड्रा से रोगी विशिष्ट कार्डियोमायोसाइट्स पैदा हृदय रोग पर सटीक दवा में जबरदस्त रुचि आकर्षित किया है । मानव प्रेरित pluripotent स्टेम सेल (आईपीएससी) से हृदय भेदभाव परिभाषित संकेत रास्ते है कि भ्रूण हृदय के विकास के लिए आवश्यक है द्वारा संग्राहक है । 2-डी और 3-डी प्लेटफार्मों पर कई हृदय भेदभाव विधियों को विभिन्न क्षमताओं और कार्डियोमायोसाइट उपज के साथ विकसित किया गया है। यह क्षेत्र के बाहर जांचकर्ताओं हैरान है के रूप में इन तरीकों की विविधता का पालन करने के लिए मुश्किल हो सकता है । यहां हम एक व्यापक प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं जो परिधीय रक्त मोनोन्यूक्लियर कोशिकाओं (पीबीएमसी) से रोगी-विशिष्ट कार्डियोमायोसाइट्स की मजबूत पीढ़ी और विस्तार को विस्तृत करता है। हम पहले गैर-एकीकरण सेंडाइ वायरस वैक्टर का उपयोग करके रोगी के रक्त नमूने से एक उच्च दक्षता वाले आईपीएससी पुनर्प्रोग्रामिंग प्रोटोकॉल का वर्णन करते हैं। हम तो विस्तार से एक छोटे से अणु मध्यस्थता मोनोलेयर भेदभाव विधि है कि मजबूती से सबसे मानव आईपीएससी लाइनों से धड़कन कार्डियोमायोसाइट्स का उत्पादन कर सकते हैं । इसके अलावा, एक स्केलेबल कार्डियोमायोसाइट विस्तार प्रोटोकॉल एक छोटे अणु (CHIR99021) का उपयोग करके पेश किया जाता है जो औद्योगिक और नैदानिक-ग्रेड अनुप्रयोगों के लिए रोगी-व्युत्पन्न कार्डियोमायोसाइट्स का तेजी से विस्तार कर सकता है। अंत में, इन आईपीएससी-सीएम के आणविक पहचान और इलेक्ट्रोफिजियोलॉजिकल लक्षण वर्णन के लिए विस्तृत प्रोटोकॉल चित्रित किए गए हैं। हम इस प्रोटोकॉल हृदय विकास और स्टेम सेल जीव विज्ञान पर सीमित ज्ञान के साथ शुरुआती लोगों के लिए व्यावहारिक होने की उम्मीद करते हैं।

Introduction

मानव प्रेरित पीएलयूरिपोटेंट स्टेम सेल की खोज ने आधुनिक हृदय चिकित्सा में क्रांति ला दी है1,2. मानव आईपीएससी हृदय में सभी कोशिका प्रकारों को आत्म-नवीनीकरण और उत्पन्न करने में सक्षम हैं, जिनमें कार्डियोमायोसाइट्स, एंडोथेलियल कोशिकाएं, चिकनी मांसपेशी कोशिकाएं और कार्डियक फाइब्रोब्लास्ट शामिल हैं। रोगी आईपीएससी-व्युत्पन्न कार्डियोमायोसाइट्स (आईपीएससी-सीएम) आनुवंशिक रूप से विरासत में मिलने वाले हृदय रोगों (सीवीडी) मॉडलिंग और नईदवाओंके लिए हृदय सुरक्षा का परीक्षण करने के लिए अनिश्चित संसाधनों के रूप में काम कर सकते हैं। विशेष रूप से, रोगी आईपीएससी-सीएम सीवीडी के आनुवंशिक और आणविक इटियोलॉजी की जांच करने के लिए अच्छी तरह से तैयार हैं जो कार्डियोमायोसाइट्स में दोषों से प्राप्त होते हैं, जैसे लॉन्ग क्यूटी सिंड्रोम4 और डिलेटेड कार्डियोमायोपैथी (डीसीएम)5। CRISPR/Cas9-मध्यस्थता जीनोम संपादन के साथ संयुक्त, रोगी आईपीएससी-सीएम ने जन्मजात हृदय दोषों(CHDs)6,7,8सहित सीवीडी के जटिल आनुवंशिक आधार को समझने के लिए एक अभूतपूर्व अवसर खोला है । मानव आईपीएससी-सीएम ने दिल का दौरा पड़ने केदौरानक्षतिग्रस्त मायोकार्डियम की भरपाई के लिए ऑटोलॉगस सेल स्रोतों के रूप में सेवा करने की क्षमता भी प्रदर्शित की है । हाल के वर्षों में, कार्डियक पुनर्जनन और दवा परीक्षण10के लिए परिभाषित उपप्रकार (एट्रियल, वेंट्रिकुलर और नोडल) के साथ उच्च गुणवत्ता वाले मानव आईपीएससी-सीएम उत्पन्न करना सर्वोपरि हो गया है।

मानव आईपीएससी से हृदय भेदभाव पिछले एक दशक में बहुत उन्नत किया गया है । भ्रूणीय शरीर (ईबी) आधारित सहज भेदभाव से रासायनिक रूप से परिभाषित और निर्देशित हृदय भेदभाव11तक भेदभाव के तरीके चले गए हैं । मानव आईपीएससी10, 12से कार्डियोमायोसाइट भेदभाव को बढ़ाने के लिए भ्रूणीय हृदय विकास के लिए आवश्यक प्रमुख सिग्नलिंग अणुओं, जैसे डब्ल्यूएनटी,बीएमपी,नोडल और एफजीएफ में हेरफेर कियाजाताहै। महत्वपूर्ण अग्रिमों में मानव आईपीएससी13,14से कार्डियोमायोसाइट्स के मजबूत उत्पादन के लिए डब्ल्यूएनटी सिग्नलिंग (अवरोध के बाद सक्रियण) का अनुक्रमिक मॉड्यूलेशन शामिल है। रासायनिक रूप से परिभाषित हृदय विभेदन व्यंजनों का पता लगाया गया है ताकि कार्डियोमायोसाइट्स15, 16को मात देने के बड़े पैमाने पर उत्पादन को सुविधाजनक बनाया जा सके, जिसमें औद्योगिक और नैदानिक स्तर के उत्पादन में उन्नत होने की क्षमता है। इसके अलावा, प्रारंभिक मानव आईपीएससी-सीएम का मजबूत विस्तार एक छोटे रसायन (CHIR99021)17का उपयोग करके संविलियन डब्ल्यूएनटी सक्रियण के संपर्क में आने से प्राप्त होता है। हाल ही में, मानव आईपीएससी18, 19,20,21, 22से कार्डियोमायोसाइट वंश प्रतिबद्धता के दौरान विशिष्ट विभेदन खिड़कियों पर रेटिनोइक एसिड(आरए)और डब्ल्यूएनटी सिग्नलिंग रास्तों में हेरफेर के माध्यम से उपप्रकार-विशिष्ट कार्डियोमायोसाइट्स उत्पन्न होते हैं।

इस प्रोटोकॉल में, हम रोगी परिधीय रक्त मोनोन्यूक्लियर कोशिकाओं से निकलने वाले मानव सीएम की मजबूत पीढ़ी और प्रसार के लिए एक कार्य प्रक्रिया का विस्तार करते हैं। हम 1) के लिए प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं) मानव पीबीएमसी को आईपीएससी, 2) मानव आईपीएससी से धड़कने की मजबूत पीढ़ी, 3) प्रारंभिक आईपीएससी-सीएमएस का तेजी से विस्तार, 4) मानव आईपीएससी-सीएमएस का आणविक लक्षण वर्णन, और 5) मानव आईपीएससी-सीएमएस का इलेक्ट्रोफिजियोलॉजिकल मापन पैच क्लैंप द्वारा एकल सेल स्तर पर। इस प्रोटोकॉल में रोगी रक्त कोशिकाओं को कार्डियोमायोसाइट्स की धड़कन में बदलने पर विस्तृत प्रायोगिक प्रक्रियाओं को शामिल किया गया है।

Protocol

प्रायोगिक प्रोटोकॉल और मानव विषयों के लिए सूचित सहमति को राष्ट्रव्यापी बाल अस्पताल में संस्थागत समीक्षा बोर्ड (आईआरबी) द्वारा अनुमोदित किया गया था । 1. सेल संस्कृति मीडिया, समाधान, और अभिकर् ?…

Representative Results

पीबीएमसी से मानव आईपीएससी पुनर्प्रोग्रामिंग7 दिनों के लिए पूर्ण रक्त मीडिया के साथ पूर्व संस्कृति के बाद, PBMCs दिखाई नाभिक और साइटोप्लाज्म(चित्रा 1B)के साथ बड़े हो जाते है?…

Discussion

आईपीएससी रीप्रोग्रामिंग के दौरान, यह 1 सप्ताह के लिए संस्कृति पीबीएमसी के लिए महत्वपूर्ण है जब तक कि वे स्पष्ट नाभिक और साइटोप्लाज्म के साथ बढ़े हुए नहीं हैं। चूंकि पीबीएमसी पैदा नहीं होता है, इसलिए सफ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस अध्ययन को अमेरिकन हार्ट एसोसिएशन (एएचए) कैरियर डेवलपमेंट अवार्ड 18CDA34110293 (एम-टी जेड), अतिरिक्त वेंचर्स एवीआईएफ और एसवीआरएफ पुरस्कार (एम-जेड), राष्ट्रीय स्वास्थ्य संस्थान (NIH/NHLBI) अनुदान 1R01HL124245 द्वारा समर्थित किया गया था, 1R01HL132520 और R01HL096962 (I.D.) । डॉ मिंग-ताओ झाओ को राष्ट्रव्यापी बाल अस्पताल में अबीगैल वेक्सनर रिसर्च इंस्टीट्यूट से स्टार्टअप फंड्स ने भी सपोर्ट किया ।

Materials

ABI 7300 Fast Real-Time PCR System Thermo Fisher Scientific
Axon Axopatch 200B Microelectrode Amplifier Molecular Devices Microelectrode Amplifier
B27 supplement Thermo Fisher Scientific 17504044
B27 supplement minus insulin Thermo Fisher Scientific A1895601
BD Cytofix/Cytoperm Fixation/Permeabilization Kit BD Biosciences 554714 Fixation/Permeabilization solution, Perm/Wash buffer
BD Vacutainer CPT tube BD Biosciences 362753 Blood cell separation tube
CHIR99021 Selleck Chemicals S2924
CytoTune-iPS 2.0 Sendai Reprogramming Kit Thermo Fisher Scientific A16517 Sendai virus reprogramming kit
Digidata 1200B Axon Instruments Acquisition board
Direct-zol RNA Miniprep kit Zymo Research R2050 RNA extraction kit
DMEM/F12 Thermo Fisher Scientific 11330057
Essential 8 medium Thermo Fisher Scientific A1517001 E8 media for iPSC culture
GlutaMAX supplement Thermo Fisher Scientific 35050061 L-glutamine alternative
Growth factor reduced Matrigel Corning 356231 Basement membrane matrix
iScript cDNA Snythesis Kit Bio-Rad 1708891 cDNA synthesis
IWR-1-endo Selleck Chemicals S7086
KnockOut Serum Replacement (KSR) Thermo Fisher Scientific 10828028
pCLAMP 7.0 Molecular Devices Electrophysiology data acquisition & analysis software
Recombinant human EPO Thermo Fisher Scientific PHC9631
Recombinant human FLT3 Thermo Fisher Scientific PHC9414
Recombinant human IL3 Peprotech 200-03
Recombinant human IL6 Thermo Fisher Scientific PHC0065
Recombinant human SCF Peprotech 300-07
RPMI 1640 medium Thermo Fisher Scientific 11875093
RPMI 1640 medium, no glucose Thermo Fisher Scientific 11879020
SlowFade Gold Antifade Mountant Thermo Fisher Scientific S36936 Mounting media
StemPro-34 SFM Thermo Fisher Scientific 10639011 PBMC culture media
TaqMan Fast Advanced Master Mix Thermo Fisher Scientific 4444964 qPCR master mix
TrypLE Select Enzyme 10x, no phenol red Thermo Fisher Scientific A1217703 CM dissociation solution
UltraPure 0.5 M EDTA Thermo Fisher Scientific 15575020 iPSC dissociation solution
Y-27632 2HCl Selleck Chemicals S1049

References

  1. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  2. Yu, J., et al. Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science. 318 (5858), 1917-1920 (2007).
  3. Sayed, N., Liu, C., Wu, J. C. Translation of Human-Induced Pluripotent Stem Cells: From Clinical Trial in a Dish to Precision Medicine. Journal of American College of Cardiology. 67 (18), 2161-2176 (2016).
  4. Itzhaki, I., et al. Modelling the long QT syndrome with induced pluripotent stem cells. Nature. 471 (7337), 225-229 (2011).
  5. Hinson, J. T., et al. Titin mutations in iPS cells define sarcomere insufficiency as a cause of dilated cardiomyopathy. Science. 349 (6251), 982-986 (2015).
  6. Deacon, D. C., et al. Combinatorial interactions of genetic variants in human cardiomyopathy. Nature Biomedical Engineering. 3 (2), 147-157 (2019).
  7. Gifford, C. A., et al. Oligogenic inheritance of a human heart disease involving a genetic modifier. Science. 364 (6443), 865-870 (2019).
  8. Lo Sardo, V., et al. Unveiling the role of the most impactful cardiovascular risk locus through haplotype editing. Cell. 175 (7), 1796-1810 (2018).
  9. Liu, Y. W., et al. Human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes restore function in infarcted hearts of non-human primates. Nature Biotechnology. 36 (7), 597-605 (2018).
  10. Zhao, M. T., Shao, N. Y., Garg, V. Subtype-specific cardiomyocytes for precision medicine: where are we now. Stem Cells. 38, 822-833 (2020).
  11. Burridge, P. W., Keller, G., Gold, J. D., Wu, J. C. Production of de novo cardiomyocytes: human pluripotent stem cell differentiation and direct reprogramming. Cell Stem Cell. 10 (1), 16-28 (2012).
  12. Protze, S. I., Lee, J. H., Keller, G. M. Human pluripotent stem cell-derived cardiovascular cells: from developmental biology to therapeutic applications. Cell Stem Cell. 25 (3), 311-327 (2019).
  13. Lian, X., et al. Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (27), 1848-1857 (2012).
  14. Zhao, M. T., et al. Molecular and functional resemblance of differentiated cells derived from isogenic human iPSCs and SCNT-derived ESCs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (52), 11111-11120 (2017).
  15. Burridge, P. W., et al. Chemically defined generation of human cardiomyocytes. Nature Methods. 11 (8), 855-860 (2014).
  16. Lian, X., et al. Chemically defined, albumin-free human cardiomyocyte generation. Nature Methods. 12 (7), 595-596 (2015).
  17. Buikema, J. W., et al. Wnt activation and reduced cell-cell contact synergistically induce massive expansion of functional human ipsc-derived cardiomyocytes. Cell Stem Cell. 27 (1), 50-63 (2020).
  18. Lee, J. H., Protze, S. I., Laksman, Z., Backx, P. H., Keller, G. M. Human pluripotent stem cell-derived atrial and ventricular cardiomyocytes develop from distinct mesoderm populations. Cell Stem Cell. 21 (2), 179-194 (2017).
  19. Liang, W., et al. Canonical Wnt signaling promotes pacemaker cell specification of cardiac mesodermal cells derived from mouse and human embryonic stem cells. Stem Cells. 38 (3), 352-368 (2020).
  20. Protze, S. I., et al. Sinoatrial node cardiomyocytes derived from human pluripotent cells function as a biological pacemaker. Nature Biotechnology. 35 (1), 56-68 (2017).
  21. Ren, J., et al. Canonical Wnt5b signaling directs outlying Nkx2.5+ mesoderm into pacemaker cardiomyocytes. Developmental Cell. 50 (6), 729-743 (2019).
  22. Zhang, Q., et al. Direct differentiation of atrial and ventricular myocytes from human embryonic stem cells by alternating retinoid signals. Cell Research. 21 (4), 579-587 (2011).
  23. Fusaki, N., Ban, H., Nishiyama, A., Saeki, K., Hasegawa, M. Efficient induction of transgene-free human pluripotent stem cells using a vector based on Sendai virus, an RNA virus that does not integrate into the host genome. Proceedings of the Japan Academy, Seriers B, Physical and Biological Sciences. 85 (8), 348-362 (2009).
  24. Stacey, G. N., Crook, J. M., Hei, D., Ludwig, T. Banking human induced pluripotent stem cells: lessons learned from embryonic stem cells. Cell Stem Cell. 13 (4), 385-388 (2013).
  25. Karbassi, E., et al. Cardiomyocyte maturation: advances in knowledge and implications for regenerative medicine. Nature Reviews Cardiology. 17 (6), 341-359 (2020).
  26. Zhao, L., Ben-Yair, R., Burns, C. E., Burns, C. G. Endocardial notch signaling promotes cardiomyocyte proliferation in the regenerating zebrafish heart through Wnt pathway antagonism. Cell Reports. 26 (3), 546-554 (2019).
  27. Heallen, T. R., Kadow, Z. A., Wang, J., Martin, J. F. Determinants of cardiac growth and size. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 12 (3), 037150 (2020).
  28. Campa, V. M., et al. Notch activates cell cycle reentry and progression in quiescent cardiomyocytes. Journal of Cell Biology. 183 (1), 129-141 (2008).
  29. Collesi, C., Zentilin, L., Sinagra, G., Giacca, M. Notch1 signaling stimulates proliferation of immature cardiomyocytes. Journal of Cell Biology. 183 (1), 117-128 (2008).
  30. Heallen, T., et al. Hippo pathway inhibits Wnt signaling to restrain cardiomyocyte proliferation and heart size. Science. 332 (6028), 458-461 (2011).
check_url/kr/62206?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ye, S., Wan, X., Su, J., Patel, A., Justis, B., Deschênes, I., Zhao, M. Generation and Expansion of Human Cardiomyocytes from Patient Peripheral Blood Mononuclear Cells. J. Vis. Exp. (168), e62206, doi:10.3791/62206 (2021).

View Video