Summary

Bedömning av agrokemisk risk för parade honungsbidrottningar

Published: March 03, 2021
doi:

Summary

Detta protokoll utvecklades för att öka förståelsen för hur agrokemikalier påverkarhonungsbi ( Apis mellifera) reproduktion genom att fastställa metoder för att exponera honungsbidrottningar och deras arbetares vårdare för jordbrukskemikalier i en kontrollerad laboratoriemiljö och noggrant övervaka deras relevanta svar.

Abstract

Nuvarande riskbedömningsstrategier för honungsbin är starkt beroende av laboratorietester som utförs på vuxna eller omogna arbetsbin, men dessa metoder kanske inte exakt fångar effekterna av agrokemisk exponering på honungsbidrottningar. Som den enda producenten av befruktade ägg inuti en honungsbikoloni är drottningen utan tvekan den viktigaste enskilda medlemmen i en fungerande kolonienhet. Därför bör förståelse för hur agrokemikalier påverkar drottningens hälsa och produktivitet betraktas som en kritisk aspekt av riskbedömningen av bekämpningsmedel. Här presenteras en anpassad metod för att exponera honungsbidrottningar och arbetardrottningsvakter för agrokemiska stressfaktorer som administreras genom en arbetardiet, följt av att spåra äggproduktion i laboratoriet och bedöma första instar-eklosion med hjälp av en specialiserad bur, kallad en Queen Monitoring Cage. För att illustrera metodens avsedda användning beskrivs resultaten av ett experiment där arbetardrottningsvakter matades med diet som innehöll subletala doser av imidakloprid och effekter på drottningar övervakades.

Introduction

På grund av ökad global efterfrågan på jordbruksprodukter kräver moderna jordbruksmetoder ofta användning av jordbrukskemikalier för att kontrollera många skadedjur som är kända för att minska eller skada skördarna1. Samtidigt förlitar sig odlarna av många frukt-, grönsaks- och nötgrödor på pollineringstjänster som tillhandahålls av kommersiella honungsbikolonier för att säkerställa rikligskördeutbyte 2. Dessa metoder kan leda till att pollinatörer, inklusivehonungsbin ( Apis mellifera), utsätts för skadliga halter av bekämpningsmedelsrester3. Samtidigt kräver den utbredda närvaron av parasitiska Varroa destructor-mmitangrepp i honungsbikolonier ofta biodlare att behandla sina nässelfeber med miticider, vilket också kan utöva negativa effekter på kolonins hälsa och livslängd4,5,6. För att minska och mildra skadliga effekter av agrokemiska produkter är det nödvändigt att fullt ut utvärdera deras säkerhet för honungsbin innan de implementeras så att rekommendationer för deras användning kan göras för att skydda fördelaktiga insekter.

För närvarande förlitar sig Naturvårdsverket på en stegvis riskbedömningsstrategi för exponering av honungsbibekämpningsmedel, som omfattar laboratorietester på vuxna bin och ibland honungsbilarver7. Om laboratorietester på lägre nivå inte minskar oron för toxicitet kan fält- och halvfältstestning rekommenderas. Medan dessa laboratorietester ger värdefull inblick i agrokemikaliernas potentiella effekter på arbetarens livslängd, är de inte nödvändigtvis förutsägande av deras effekter på drottningar, som skiljer sig avsevärt från arbetare biologiskt8 och beteendemässigt9. Dessutom finns det många potentiella effekter av agrokemikalier på insekter bortom dödlighet, vilket kan få betydande konsekvenser för sociala insekter som förlitar sig på samordnade beteenden för att fungera som en kolonienhet10,11.

Även om dödlighet är den vanligaste effekten av agrokemiskabekämpningsmedel 12, kan dessa produkter ha ett brett spektrum av effekter på både mål- och icke-mål leddjur inklusive förändrat beteende13,14,15,16, avstötning eller ryckkraft17,18,19, förändringar i utfodringsmönster20,21,22 , och ökad eller minskad fecundity20,21,22,23,24,25. För sociala insekter kan dessa effekter systemiskt störa koloniinteraktioner och funktioner11. Av dessa funktioner kan reproduktion, som är starkt beroende av en enda äggläggande drottning som stöds av resten av kolonienheten9, vara särskilt sårbar för störtsamhet på grund av exponering för bekämpningsmedel.

Studier som utförts på omogna drottningar har visat att utvecklingsexponering för miticider kan påverka vuxendrottningsbeteende, fysiologi, överlevnad26,27. På samma sätt har studier med hjälp av hela eller reducerade kolonier visat att agrokemikalier kan påverka vuxna honungsbidrottningar genom att minska parningsframgången28, minska oviposition29och minska livskraften hos de ägg som produceras25,30,31. Dessa fenomen har tidigare varit svåra att observera utan användning av hela kolonier, till stor del på grund av brist på tillgängliga laboratoriemetoder. En metod för att studera drottning oviposition under hårt kontrollerade laboratorieförhållanden med Queen Monitoring Cages (QMC)32 har dock nyligen anpassats för att undersöka effekterna av agrokemikalier på queen fecundity33. Här beskrivs dessa tekniker i detalj tillsammans med ytterligare metoder för att mäta och spåra arbetstagares kostkonsumtion i QMCs.

Dessa metoder är mer fördelaktiga än experiment som kräver fullstora kolonier eftersom de möjliggör administrering av exakta doser av agrokemikalier till ett kraftigt reducerat antal arbetare i förhållande till de tiotusentals som vanligtvis finns i en koloni34, som sedan ger drottningen. Denna exponeringsteknik speglar den begagnade exponering som drottningar skulle uppleva i verkliga scenarier eftersom drottningar inom en koloni inte matar sig själva och förlitar sig på arbetare för att ge dem diet9. På samma sätt lämnar drottningar i allmänhet inte bikupan förutom under kolonireproduktion (svärmning) för parningsflygningar35. Parade honungsbidrottningar kan köpas från kommersiella drottninguppfödare och skickas över natten. Vanligtvis säljer drottninguppfödare drottningar direkt efter att ha bekräftat att de har börjat lägga ägg, vilket tas som en indikation på framgångsrik parning. Om mer exakt information om drottning ålder eller släktskap behövs, kan forskare rådgöra med drottninguppfödaren innan de gör en beställning.

QMCs möjliggör exakt observation och kvantifiering av honungsbidrottning oviposition och äggkläckningsgrad32,33, vilket ger värdefulla data relaterade till effekterna av agrokemisk exponering på drottning fecundity. De representativa resultaten som presenteras här beskriver ett experiment som kvantifierar oviposition, kostkonsumtion och embryo livskraft i QMCs under kronisk exponering för fältrelevanta koncentrationer av det systemiska neurotoxiska bekämpningsmedlet neonikotinoidbekämpningsmedel imidakloprid36. När imidakloprid har applicerats translokerar till växtvävnader37, och rester har upptäckts pollen och nektar av många bi pollinerade växter38,39,40. Exponering för imidakloprid kan ha ett brett spektrum av skadliga effekter på honungsbin, inklusive nedsatt födosöksprestanda16,nedsatt immunfunktion41och minskad frekvens av koloniexpansion och överlevnad42,43. Här valdes imidakloprid ut för användning som testämne eftersom fältexperiment har visat att det kan påverka honungsbidrottning oviposition29

Protocol

1. QMC-montering Montera QFC från delar(figur 1A)med en enda äggläggningsplatta (ELP) i bild 1B. Tillsätt inte matarrör förrän efter att arbetarna har lagts till i buret. Täck tillfälligt de 4 matarhålen med tejp av laboratoriekvalitet. Sätt in drottningens exkluderare och matningskammarens dörr över matkammaren för att hindra drottningen från att komma in i matkammaren och kontakta den behandlade kosten. Se Fine et<sup class="…

Representative Results

Produktionen av ägg övervakades i QMCs monterade och underhållna enligt beskrivningen ovan med en gång dagligen observationer av äggproduktion och 15 burar per behandlingsgrupp. Nygifta drottningar av främst Carniolan lager köptes och skeppades över natten från en drottning uppfödare, och honungsbiarbetare erhölls från 3 kolonier underhålls enligt standard kommersiella metoder vid The Bee Research Facility vid University of Illinois Urbana-Champaign. Här användes 4 dietbehandlingsgrupper: 1) 50 ppb (g/g) i…

Discussion

Fecundity av kvinnliga ensamma insekter såväl som drottningar i eusociala insektskolonier kan påverkas av abiotiska stressfaktorer som agrokemikalier25,28,29,30,33. Hos honungsbin kan agrokemikaliernas effekter på drottningar vara indirekta, eftersom de kan uppstå genom förändringar i deras vård och utfodring av arbetsbin. Våra representativa resultat…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Tack till Dr. Amy Cash-Ahmed, Nathanael J. Beach och Alison L. Sankey för deras hjälp med att utföra detta arbete. Omnämnande av handelsnamn eller kommersiella produkter i denna publikation är endast i syfte att tillhandahålla specifik information och innebär inte rekommendation eller godkännande av det amerikanska jordbruksdepartementet. USDA är en leverantör och arbetsgivare för lika möjligheter. Denna forskning stöddes av ett bidrag från Defense Advanced Research Projects Agency # HR0011-16-2-0019 till Gene E. Robinson och Huimin Zhao, USDA-projektet 2030-21000-001-00-D och Phenotypic Plasticity Research Experience for Community College Students vid University of Illinois at Urbana Champaign.

Materials

Fluon BioQuip, Rancho Dominguez, CA 2871A
Honey bee queens Olivarez Honey Bees, Orland, CA
Imidacloprid Sigma-Aldritch, St. Louis, MO 37894
MegaBee Powder MegaBee, San Dieago, CA
Microcentrifuge tubes 2 mL ThermoFisher Scientific, Waltham, MA 02-682-004
Needles 20 gauge W. W. Grainger, Lake Forest, IL 5FVK4
Potassium Sulfate Sigma-Aldritch, St. Louis, MO P0772
Queen Monitoring Cages University of Illinois Urbana-Champaign Patent application number: 20190350175
Sucrose Sigma-Aldritch, St. Louis, MO S8501
Universal Microplate Lids ThermoFisher Scientific, Waltham, MA 5500

References

  1. Hedlund, J., Longo, S. B., York, R. Agriculture, pesticide use, and economic development: A global examination (1990-2014). Rural Sociology. 85 (2), 519-544 (2020).
  2. Calderone, N. W. Insect pollinated crops, insect pollinators and US agriculture: Trend analysis of aggregate data for the period 1992-2009. PLOS ONE. 7 (5), 37235 (2012).
  3. Johnson, R. M., Ellis, M. D., Mullin, C. A., Frazier, M. Pesticides and honey bee toxicity – USA. Apidologie. 41 (3), 312-331 (2010).
  4. Walsh, E. M., Sweet, S., Knap, A., Ing, N., Rangel, J. Queen honey bee (Apis mellifera) pheromone and reproductive behavior are affected by pesticide exposure during development. Behavioral Ecology and Sociobiology. 74 (3), 33 (2020).
  5. Zhu, W., Schmehl, D. R., Mullin, C. A., Frazier, J. L. Four Common Pesticides, Their Mixtures and a Formulation Solvent in the Hive Environment Have High Oral Toxicity to Honey Bee Larvae. PLoS ONE. 9 (1), 77547 (2014).
  6. Fisher, A., Rangel, J. Exposure to pesticides during development negatively affects honey bee (Apis mellifera) drone sperm viability. PLoS ONE. 13 (12), 0208630 (2018).
  7. How we assess risks to pollinators. US EPA Available from: https://www.epa.gov/pollinator-protection/how-we-assess-risk-polliators (2013)
  8. Snodgrass, R. E. . Anatomy of the honey bee. , (1956).
  9. Allen, M. D. The honeybee queen and her attendants. Animal Behaviour. 8 (3), 201-208 (1960).
  10. Hölldobler, B., Wilson, E. O. . The superorganism: The beauty, elegance, and strangeness of insect societies. , (2009).
  11. Berenbaum, M. R., Liao, L. -. H. Honey bees and environmental stress: Toxicologic pathology of a superorganism. Toxicologic Pathology. 47 (8), 1076-1081 (2019).
  12. Yu, S. J. . The toxicology and biochemistry of insecticides. , (2014).
  13. Ciarlo, T. J., Mullin, C. A., Frazier, J. L., Schmehl, D. R. Learning impairment in honey bees caused by agricultural spray adjuvants. PloS One. 7 (7), 40848 (2012).
  14. Fourrier, J., et al. Larval exposure to the juvenile hormone analog pyriproxyfen disrupts acceptance of and social behavior performance in adult honeybees. PLoS ONE. 10 (7), (2015).
  15. Morfin, N., Goodwin, P. H., Correa-Benitez, A., Guzman-Novoa, E. Sublethal exposure to clothianidin during the larval stage causes long-term impairment of hygienic and foraging behaviours of honey bees. Apidologie. 50 (5), 595-605 (2019).
  16. Colin, T., Meikle, W. G., Wu, X., Barron, A. B. Traces of a neonicotinoid induce precocious foraging and reduce foraging performance in honey bees. Environmental Science & Technology. 53 (14), 8252-8261 (2019).
  17. Liao, L. H., Wu, W. Y., Berenbaum, M. R. Behavioral responses of honey bees (Apis mellifera) to natural and synthetic xenobiotics in food. Scientific Reports. 7 (1), 1-8 (2017).
  18. Kessler, S. C., et al. Bees prefer foods containing neonicotinoid pesticides. Nature. 521 (7550), 74-76 (2015).
  19. Metcalf, R. L., Luckmann, W. H. . Introduction to Insect Pest Management. , (1994).
  20. Duncan, J. Post-treatment effects of sublethal doses of dieldrin on the mosquito Aedes aegypti L. Annals of Applied Biology. 52 (1), 1-6 (1963).
  21. Haynes, K. F. Sublethal effects of neurotoxic insecticides on insect behavior. Annual Review of Entomology. 33 (1), 149-168 (1988).
  22. James, D. G., Price, T. S. Fecundity in twospotted spider mite (Acari: Tetranychidae) is increased by direct and systemic exposure to imidacloprid. Journal of Economic Entomology. 95 (4), 729-732 (2002).
  23. Hodjat, S. H. Effects of sublethal doses of insecticides and of diet and crowding on Dysdercus fasciatus Sign. (Hem., Pyrrhocoridae). Bulletin of Entomological Research. 60 (3), 367-378 (1971).
  24. Feng, W. B., Bong, L. J., Dai, S. M., Neoh, K. B. Effect of imidacloprid exposure on life history traits in the agricultural generalist predator Paederus beetle: Lack of fitness cost but strong hormetic effect and skewed sex ratio. Ecotoxicology and Environmental Safety. 174, 390-400 (2019).
  25. Milchreit, K., Ruhnke, H., Wegener, J., Bienefeld, K. Effects of an insect growth regulator and a solvent on honeybee (Apis mellifera L.) brood development and queen viability. Ecotoxicology. 25 (3), 530-537 (2016).
  26. Haarmann, T., Spivak, M., Weaver, D., Weaver, B., Glenn, T. Effects of fluvalinate and coumaphos on queen honey bees (Hymenoptera: Apidae) in two commercial queen rearing operations. Journal of Economic Entomology. 95 (1), 28-35 (2002).
  27. Pettis, J. S., Collins, A. M., Wilbanks, R., Feldlaufer, M. F. Effects of coumaphos on queen rearing in the honey bee, Apis mellifera. Apidologie. 35 (6), 605-610 (2004).
  28. Thompson, H. M., Wilkins, S., Battersby, A. H., Waite, R. J., Wilkinson, D. The effects of four insect growth-regulating (IGR) insecticides on honeybee (Apis mellifera L.) colony development, queen rearing and drone sperm production. Ecotoxicology. 14 (7), 757-769 (2005).
  29. Wu-Smart, J., Spivak, M. Sub-lethal effects of dietary neonicotinoid insecticide exposure on honey bee queen fecundity and colony development. Scientific Reports. 6 (1), 1-11 (2016).
  30. Chen, Y. W., Wu, P. S., Yang, E. C., Nai, Y. S., Huang, Z. Y. The impact of pyriproxyfen on the development of honey bee (Apis mellifera L.) colony in field. Journal of Asia-Pacific Entomology. 19 (3), 589-594 (2016).
  31. Fine, J. D., Mullin, C. A., Frazier, M. T., Reynolds, R. D. Field residues and effects of the insect growth regulator novaluron and its major co-formulant n-methyl-2-pyrrolidone on honey bee reproduction and development. Journal of Economic Entomology. 110 (5), 1993-2001 (2017).
  32. Fine, J. D., et al. Quantifying the effects of pollen nutrition on honey bee queen egg laying with a new laboratory system. PLoS ONE. 13 (9), 0203444 (2018).
  33. Fine, J. D. Evaluation and comparison of the effects of three insect growth regulators on honey bee queen oviposition and egg eclosion. Ecotoxicology and Environmental Safety. 205, 111142 (2020).
  34. The Colony and Its Organization. MAAREC – Mid Atlantic Apiculture Research & Extension Consortium Available from: https://agdev.anr.udel.edu/maarec/honey-bee-biology/the-colony-and-its-organization/ (2020)
  35. Winston, M. L. . The biology of the honey bee. , (1991).
  36. Mullins, J. W. Pest control with enhanced environmental safety. Imidacloprid. 524, 183-198 (1993).
  37. Sur, R., Stork, A. Uptake, translocation and metabolism of imidacloprid in plants. Bulletin of Insectology. 56 (1), 35-40 (2003).
  38. Dively, G. P., Kamel, A. Insecticide residues in pollen and nectar of a cucurbit crop and their potential exposure to pollinators. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 60 (18), 4449-4456 (2012).
  39. Goulson, D. Review: An overview of the environmental risks posed by neonicotinoid insecticides. Journal of Applied Ecology. , 977-987 (2014).
  40. Krischik, V., Rogers, M., Gupta, G., Varshney, A. Soil-applied imidacloprid translocates to ornamental flowers and reduces survival of adult Coleomegilla maculata, Harmonia axyridis, and Hippodamia convergens lady beetles, and larval Danaus plexippus and Vanessa cardui butterflies. PLoS ONE. 10 (3), (2015).
  41. Prisco, G. D., et al. Neonicotinoid clothianidin adversely affects insect immunity and promotes replication of a viral pathogen in honey bees. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (46), 18466-18471 (2013).
  42. Dively, G. P., Embrey, M. S., Kamel, A., Hawthorne, D. J., Pettis, J. S. Assessment of chronic sublethal effects of imidacloprid on honey bee colony health. PLoS ONE. 10 (3), 01118748 (2015).
  43. Sandrock, C., Tanadini, M., Tanadini, L. G., Fauser-Misslin, A., Potts, S. G., Neumann, P. Impact of chronic neonicotinoid exposure on honeybee colony performance and queen supersedure. PLoS ONE. 9 (8), 103592 (2014).
  44. Brodschneider, R., Riessberger-Gallé, U., Crailsheim, K. Flight performance of artificially reared honeybees (Apis mellifera). Apidologie. 40 (4), 441-449 (2009).
  45. Harrison, J. M. Caste-specific changes in honeybee flight capacity. Physiological Zoology. 59 (2), 175-187 (1986).
  46. Mackensen, O. Effect of carbon dioxide on initial oviposition of artificially inseminated and virgin queen bees. Journal of Economic Entomology. 40 (3), 344-349 (1947).
  47. OECD. . OECD Test No. 245: Honey bee (Apis Mellifera L.), chronic oral toxicity test (10-Day Feeding), OECD guidelines for the testing of chemicals, section 2. , (2017).
  48. . ECOTOX Home Available from: https://cfpub.epa.gov/ecotox/ (2020)
  49. Collins, A. M. Variation in time of egg hatch by the honey bee, Apis mellifera (Hymenoptera: Apidae). Annals of the Entomological Society of America. 97 (1), 140-146 (2004).
  50. Santomauro, G., Engels, W. Sexing of newly hatched live larvae of the honey bee, Apis mellifera, allows the recognition of diploid drones. Apidologie. 33 (3), 283-288 (2002).
  51. Tang, W., Hu, Z., Muallem, H., Gulley, M. L. Quality assurance of RNA expression profiling in clinical laboratories. The Journal of Molecular Diagnostics JMD. 14 (1), 1-11 (2012).
  52. Henry, M., et al. Reconciling laboratory and field assessments of neonicotinoid toxicity to honeybees. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 282 (1819), (2015).
  53. Singaravelan, N., Nee’man, G., Inbar, M., Izhaki, I. Feeding responses of free-flying honeybees to secondary compounds mimicking floral nectars. Journal of Chemical Ecology. 31 (12), 2791-2804 (2005).
  54. Brown, L. A., Ihara, M., Buckingham, S. D., Matsuda, K., Sattelle, D. B. Neonicotinoid insecticides display partial and super agonist actions on native insect nicotinic acetylcholine receptors. Journal of Neurochemistry. 99 (2), 608-615 (2006).
  55. Dupuis, J. P., Gauthier, M., Raymond-Delpech, V. Expression patterns of nicotinic subunits α2, α7, α8, and β1 affect the kinetics and pharmacology of ACh-induced currents in adult bee olfactory neuropiles. Journal of Neurophysiology. 106 (4), 1604-1613 (2011).
  56. Crailsheim, K., et al. Pollen consumption and utilization in worker honeybees (Apis mellifera carnica): Dependence on individual age and function. Journal of Insect Physiology. 38 (6), 409-419 (1992).
  57. . The Merck Index Online – chemicals, drugs and biologicals Available from: https://www.rsc.org/merck-index (2020)
  58. Trostanetsky, A., Kostyukovsky, M. Note: Transovarial activity of the chitin synthesis inhibitor novaluron on egg hatch and subsequent development of larvae of Tribolium castaneum. Phytoparasitica. 36 (1), 38-41 (2008).
  59. Medina, P., Smagghe, G., Budia, F., del Estal, P., Tirry, L., Viñuela, E. Significance of penetration, excretion, and transovarial uptake to toxicity of three insect growth regulators in predatory lacewing adults. Archives of Insect Biochemistry and Physiology. 51 (2), 91-101 (2002).
  60. Kim, S. H. S., Wise, J. C., Gökçe, A., Whalon, M. E. Novaluron causes reduced egg hatch after treating adult codling moths, Cydia pomenella: Support for transovarial transfer. Journal of Insect Science. 11, (2011).
  61. Joseph, S. V. Transovarial effects of insect growth regulators on Stephanitis pyrioides (Hemiptera: Tingidae). Pest Management Science. 75 (8), 2182-2187 (2019).
  62. Tasei, J. N. Effects of insect growth regulators on honey bees and non-Apis bees. A review. Apidologie. 32 (6), 527-545 (2001).
  63. Haydak, M. H. Honey Bee Nutrition. Annual Review of Entomology. 15 (1), 143-156 (1970).
  64. Böhme, F., Bischoff, G., Zebitz, C. P. W., Rosenkranz, P., Wallner, K. From field to food-will pesticide-contaminated pollen diet lead to a contamination of royal jelly. Apidologie. 49 (1), 112-119 (2018).
check_url/kr/62316?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Fine, J. D., Torres, K. M., Martin, J., Robinson, G. E. Assessing Agrochemical Risk to Mated Honey Bee Queens. J. Vis. Exp. (169), e62316, doi:10.3791/62316 (2021).

View Video