Her præsenterer vi en protokol til at analysere genomomomfordelingen af histonemodifikationer, som kan identificere nye målgener i patogenesen af M. oryzae og andre filamentøse svampe.
Chromatin immunprecipitation sekventering (ChIP-seq) er en kraftfuld og udbredt molekylær teknik til kortlægning af hele genom steder transskription faktorer (TFs), kromatin regulatorer, og histone modifikationer, samt detektering hele genomer til at afdække TF bindende mønstre og histone posttranslationelle ændringer. Kromatin-modificerende aktiviteter, såsom histone methylering, rekrutteres ofte til specifikke genregulerende sekvenser, hvilket forårsager lokaliserede ændringer i kromatinstrukturer og resulterer i specifikke transskriptionelle virkninger. Ris blast er en ødelæggende svampesygdom på ris i hele verden og er et modelsystem til at studere svamp-plante interaktion. Men de molekylære mekanismer i, hvordan histone modifikationer regulerer deres virulens gener i Magnaporthe oryzae forbliver undvigende. Flere forskere er nødt til at bruge ChIP-seq til at studere, hvordan histone epigenetiske modifikation regulerer deres mål gener. ChIP-seq er også meget udbredt til at studere samspillet mellem protein og DNA hos dyr og planter, men det er mindre anvendt inden for plantepatologi og er ikke blevet veludviklet. I dette papir beskriver vi den eksperimentelle proces og driftsmetode af ChIP-seq for at identificere genomomomfordelingen af histone methylering (såsom H3K4me3), der binder sig til de funktionelle målgener i M. oryzae. Her præsenterer vi en protokol til at analysere genomomomfordelingen af histonemodifikationer, som kan identificere nye målgener i patogenesen af M. oryzae og andre filamentøse svampe.
Epigenetik er en gren af genetisk forskning, der refererer til den arvelige ændring af genekspression uden at ændre nukleotidsekvensen af gener. Et stigende antal undersøgelser har vist, at epigenetisk regulering spiller en vigtig rolle i væksten og udviklingen af eukaryote celler, herunder kromatin, der regulerer og påvirker genekspression gennem den dynamiske proces med at folde og samle sig i strukturer af højere orden1,2. Chromatin remodeling og kovalent histone modifikation påvirker og regulerer kromatins funktion og struktur gennem variationen af kromatin polymerer, og derved opnå funktionen af regulering af genekspression3,4,5,6. Posttranslationelle modifikationer af histone omfatter acetylation, fosforylering, methylering, monoubiquitination, sumoylation og ADP ribosylation7,8,9. Histone H3K4 methylering, især trimethylation, er blevet kortlagt til transskription start steder, hvor det er forbundet med transskription replikation, rekombination, reparation, og RNA behandling i eukaryoter10,11.
ChIP-seq-teknologi blev introduceret i 2007 og er blevet den eksperimentelle standard for genomom-dækkende analyse af transskriptionel regulering og epigenetiske mekanismer12,13. Denne metode er velegnet i genom-skala og til at opnå histone eller transskription faktor interaktion oplysninger, herunder DNA segmenter af DNA-bindende proteiner. Enhver DNA-sekvenser krydslinket til proteiner af interesse vil coprecipitate som en del af kromatin kompleks. Ny generation sekventering teknikker bruges også til sekvens 36-100 bp af DNA, som derefter matches til det tilsvarende mål genom.
I phytopathogene svampe er forskning for nylig begyndt at studere, hvordan histone methyleringsændringer regulerer deres målgener i processen med patogenitet. Nogle tidligere undersøgelser viste, at reguleringen af histone methylase-relaterede gener hovedsageligt afspejles i genhæmning og katalysering af produktionen af sekundære metabolitter (SM). MoSet1 er H3K4 methylase i M. oryzae. Knockout af dette gen resulterer i fuldstændig sletning af H3K4me3 modifikation14. Sammenlignet med den vilde stamme hæmmes udtrykket af genet MoCEL7C i mutanten i CMC-induceret tilstand og i ikke-induceret tilstand (glukose eller cellobiose),15udtrykket af MoCEL7C . I Fusarium graminearumkan KMT6 katalysere methyleringsmodifikationen af H3K27me3, regulere den normale udvikling af svampe og hjælpe med at regulere det “kryptiske genom”, der indeholder SM-genklyngen16,17,18,19. I 2013 rapporterede Connolly, at H3K9 og H3K27 methylering regulerer den patogene proces af svampe gennem sekundære metabolitter og effektorfaktorer, der regulerer hæmningen af målgener20. I Aspergilluser modifikationen af histonerne H3K4me2 og H3K4me3 relateret til genaktivering og spiller en vigtig rolle i kontrollen af kromatinniveaureguleringen af SM-genklynger21. I M. oryzaeer Tig1 (homolog til Tig1 i gær og pattedyr) en HADC (histone deacetylase)22. Knockout af Tig1-genet fører til fuldstændig tab af patogenitet og sporeproduktionsevne i null mutant. Det er mere følsomt over for et peroxygenmiljø, som ikke kan producere infektiøs hyphae22.
Ris blast forårsaget af M. oryzae. er en af de mest alvorlige ris sygdomme i de fleste ris-voksende områder i verden19. På grund af sin repræsentative infektionsproces ligner M. oryzae infektionsprocessen for mange vigtige patogene svampe. Da det nemt kan udføre molekylære genetiske operationer, er svampen blevet en modelorganisme til undersøgelse af svampe-planteinteraktioner23. Blokering hvert trin i infektionsprocessen af M. oryzae kan resultere i mislykket infektion. De morfologiske ændringer under infektionsprocessen er strengt reguleret af hele genomfunktionen og gentransskriptionen. Blandt dem spiller epigenetiske modifikationer som histone methylering en væsentlig rolle i transskriptionionen af funktionelle gener24,25. Men indtil videre er der kun gjort få undersøgelser af den molekylære mekanisme af epigenetiske modifikationer som histone methylering og histoneactylation i transskriptionen af patogenesegener i M. oryzae. Derfor vil yderligere udvikling af den epigenetiske reguleringsmekanisme for ris blast svamp, mens researchinh opstrøms og downstream regulatoriske netværk af disse patogene relaterede gener bidrage til at udvikle ris blast forebyggelse og kontrol strategier.
Med udviklingen af funktionelle genomforskninger som ChIP-seq, især i epigenetik, har denne high-throughput dataindsamlingsmetode fremskyndet forskning i kromosomer. Ved hjælp af ChIP-seq eksperimentel teknologi kan genomomfordelingen af histone methylering (såsom H3K4me3, H3K27me3, H3K9me3) i M. oryzae og andre filamentøse svampe identificeres. Derfor kan denne metode hjælpe med at belyse de molekylære mekanismer, der ligger til grund for, hvordan epigenetiske modifikationer regulerer deres kandidatmålgener under svampepatogenese i plantepatologi.
For nylig er ChIP-seq blevet en meget anvendt genomisk analysemetode til bestemmelse af de bindende websteder for TF’er eller berigelsessteder, der er ændret af specifikke histoner. Sammenlignet med tidligere ChIP-seq-teknologi er den nye ChIP-seq-teknologi meget følsom og fleksibel. Resultaterne leveres i høj opløsning uden negative virkninger, såsom støjsignalet forårsaget af den ikke-specifikke hybridisering af nukleinsyrer. Selv om dette er en fælles genekspression analyse, mange beregningsmæssige metoder er…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbejde blev støttet af National Natural Science Foundation of China (Grant no. 31871638), special Scientific Research Project of Beijing Agriculture University (YQ201603), Det Videnskabelige Projekt i Beijing Educational Committee (KM201610020005), BUA ‘s videnskabelige forskningsdyrkningsprojekt (GJB2021005).
acidic casein hydrolysate | WAKO | 65072-00-6 | Medium configuration |
agar powder | scientan | 9002-18-0 | Medium configuration |
deoxycholic acid | MedChemExpress | 83-44-3 | protein and dissolution |
DNA End-Repair kit | NovoBiotec | ER81050 | Repair DNA or cDNA damaged by enzymatic or mechanical shearing |
Dynabeads | Invitrogen | no.100.02D | Binding target |
EB buffer | JIMEI | JC2174 | Membrane and liquid |
EDTA | ThermoFisher | AM9912 | protease inhibitor |
enzymatic casein hydrolysate | Sigma | 91079-40-2 | Medium configuration |
glucose | Sigma | 50-99-7 | Medium configuration |
glycogen | ThermoFisher | AM9510 | Precipitant action |
H3K4me3 antibodies | Abcam | ab8580 | Immune response to H3K4me3 protein |
illumina Genome Analyzer | illumina | illumina Hiseq 2000 | Large configuration |
Illumina PCR primers | illumina | CleanPlex | Random universal primer |
isoamyl alcohol | chemical book | 30899-19-5 | Purified DNA |
LiCl | ThermoFisher | AM9480 | specific removal RNA |
lysing enzymes | Sigma | L1412-10G | cell lysis buffer |
Mouse IgG | Yeasen | 36111ES10 | Animal normal immunoglobulin |
NaCl solution | ThermoFisher | 7647-14-5 | Medium configuration |
NaHCO3 | Seebio | SH30173.08* | preparation of protein complex eluent |
NP-40 | ThermoFisher | 85124 | cell lysate to promote cell lysis |
PCR Purification kit | Qiagen | 28004 | The purification procedure removes primers from DNA samples |
protease inhibitors | ThermoFisher | A32965 | A protein inhibitor that decreases protein activity |
Proteinase K | ThermoFisher | AM2546 | DNA Extraction Reagent |
Qubit 4.0 | ThermoFisher | Q33226 | Medium configuration |
RIPA buffer | ThermoFisher | 9806S | cell lysis buffer |
RNase A | ThermoFisher | AM2271 | Purified DNA |
SDS | ThermoFisher | AM9820 | cover up the charge differences |
sodium acetate solution | ThermoFisher | R1181 | Acetic acid buffer |
sodium deoxycholate | ThermoFisher | 89904 | inhibition of protease degradation |
T4 DNA ligase | ThermoFisher | EL0011 | Under the condition of ATP as coenzyme, DNA ligase |
T4 DNA ligase buffer | ThermoFisher | B69 | DNA ligase buffer |
Tris-HCl | ThermoFisher | 1185-53-1 | buffer action |
Triton X-100 | ThermoFisher | HFH10 | keep the membrane protein stable |
yeast extract | OXOID | LP0021 | Medium configuration |