Summary

Genom-dækkende Analyse af Histone Modifications Distribution ved hjælp af Chromatin Immunprecipitation Sekventering Metode i Magnaporthe oryzae

Published: June 02, 2021
doi:

Summary

Her præsenterer vi en protokol til at analysere genomomomfordelingen af histonemodifikationer, som kan identificere nye målgener i patogenesen af M. oryzae og andre filamentøse svampe.

Abstract

Chromatin immunprecipitation sekventering (ChIP-seq) er en kraftfuld og udbredt molekylær teknik til kortlægning af hele genom steder transskription faktorer (TFs), kromatin regulatorer, og histone modifikationer, samt detektering hele genomer til at afdække TF bindende mønstre og histone posttranslationelle ændringer. Kromatin-modificerende aktiviteter, såsom histone methylering, rekrutteres ofte til specifikke genregulerende sekvenser, hvilket forårsager lokaliserede ændringer i kromatinstrukturer og resulterer i specifikke transskriptionelle virkninger. Ris blast er en ødelæggende svampesygdom på ris i hele verden og er et modelsystem til at studere svamp-plante interaktion. Men de molekylære mekanismer i, hvordan histone modifikationer regulerer deres virulens gener i Magnaporthe oryzae forbliver undvigende. Flere forskere er nødt til at bruge ChIP-seq til at studere, hvordan histone epigenetiske modifikation regulerer deres mål gener. ChIP-seq er også meget udbredt til at studere samspillet mellem protein og DNA hos dyr og planter, men det er mindre anvendt inden for plantepatologi og er ikke blevet veludviklet. I dette papir beskriver vi den eksperimentelle proces og driftsmetode af ChIP-seq for at identificere genomomomfordelingen af histone methylering (såsom H3K4me3), der binder sig til de funktionelle målgener i M. oryzae. Her præsenterer vi en protokol til at analysere genomomomfordelingen af histonemodifikationer, som kan identificere nye målgener i patogenesen af M. oryzae og andre filamentøse svampe.

Introduction

Epigenetik er en gren af genetisk forskning, der refererer til den arvelige ændring af genekspression uden at ændre nukleotidsekvensen af gener. Et stigende antal undersøgelser har vist, at epigenetisk regulering spiller en vigtig rolle i væksten og udviklingen af eukaryote celler, herunder kromatin, der regulerer og påvirker genekspression gennem den dynamiske proces med at folde og samle sig i strukturer af højere orden1,2. Chromatin remodeling og kovalent histone modifikation påvirker og regulerer kromatins funktion og struktur gennem variationen af kromatin polymerer, og derved opnå funktionen af regulering af genekspression3,4,5,6. Posttranslationelle modifikationer af histone omfatter acetylation, fosforylering, methylering, monoubiquitination, sumoylation og ADP ribosylation7,8,9. Histone H3K4 methylering, især trimethylation, er blevet kortlagt til transskription start steder, hvor det er forbundet med transskription replikation, rekombination, reparation, og RNA behandling i eukaryoter10,11.

ChIP-seq-teknologi blev introduceret i 2007 og er blevet den eksperimentelle standard for genomom-dækkende analyse af transskriptionel regulering og epigenetiske mekanismer12,13. Denne metode er velegnet i genom-skala og til at opnå histone eller transskription faktor interaktion oplysninger, herunder DNA segmenter af DNA-bindende proteiner. Enhver DNA-sekvenser krydslinket til proteiner af interesse vil coprecipitate som en del af kromatin kompleks. Ny generation sekventering teknikker bruges også til sekvens 36-100 bp af DNA, som derefter matches til det tilsvarende mål genom.

I phytopathogene svampe er forskning for nylig begyndt at studere, hvordan histone methyleringsændringer regulerer deres målgener i processen med patogenitet. Nogle tidligere undersøgelser viste, at reguleringen af histone methylase-relaterede gener hovedsageligt afspejles i genhæmning og katalysering af produktionen af sekundære metabolitter (SM). MoSet1 er H3K4 methylase i M. oryzae. Knockout af dette gen resulterer i fuldstændig sletning af H3K4me3 modifikation14. Sammenlignet med den vilde stamme hæmmes udtrykket af genet MoCEL7C i mutanten i CMC-induceret tilstand og i ikke-induceret tilstand (glukose eller cellobiose),15udtrykket af MoCEL7C . I Fusarium graminearumkan KMT6 katalysere methyleringsmodifikationen af H3K27me3, regulere den normale udvikling af svampe og hjælpe med at regulere det “kryptiske genom”, der indeholder SM-genklyngen16,17,18,19. I 2013 rapporterede Connolly, at H3K9 og H3K27 methylering regulerer den patogene proces af svampe gennem sekundære metabolitter og effektorfaktorer, der regulerer hæmningen af målgener20. I Aspergilluser modifikationen af histonerne H3K4me2 og H3K4me3 relateret til genaktivering og spiller en vigtig rolle i kontrollen af kromatinniveaureguleringen af SM-genklynger21. I M. oryzaeer Tig1 (homolog til Tig1 i gær og pattedyr) en HADC (histone deacetylase)22. Knockout af Tig1-genet fører til fuldstændig tab af patogenitet og sporeproduktionsevne i null mutant. Det er mere følsomt over for et peroxygenmiljø, som ikke kan producere infektiøs hyphae22.

Ris blast forårsaget af M. oryzae. er en af de mest alvorlige ris sygdomme i de fleste ris-voksende områder i verden19. På grund af sin repræsentative infektionsproces ligner M. oryzae infektionsprocessen for mange vigtige patogene svampe. Da det nemt kan udføre molekylære genetiske operationer, er svampen blevet en modelorganisme til undersøgelse af svampe-planteinteraktioner23. Blokering hvert trin i infektionsprocessen af M. oryzae kan resultere i mislykket infektion. De morfologiske ændringer under infektionsprocessen er strengt reguleret af hele genomfunktionen og gentransskriptionen. Blandt dem spiller epigenetiske modifikationer som histone methylering en væsentlig rolle i transskriptionionen af funktionelle gener24,25. Men indtil videre er der kun gjort få undersøgelser af den molekylære mekanisme af epigenetiske modifikationer som histone methylering og histoneactylation i transskriptionen af patogenesegener i M. oryzae. Derfor vil yderligere udvikling af den epigenetiske reguleringsmekanisme for ris blast svamp, mens researchinh opstrøms og downstream regulatoriske netværk af disse patogene relaterede gener bidrage til at udvikle ris blast forebyggelse og kontrol strategier.

Med udviklingen af funktionelle genomforskninger som ChIP-seq, især i epigenetik, har denne high-throughput dataindsamlingsmetode fremskyndet forskning i kromosomer. Ved hjælp af ChIP-seq eksperimentel teknologi kan genomomfordelingen af histone methylering (såsom H3K4me3, H3K27me3, H3K9me3) i M. oryzae og andre filamentøse svampe identificeres. Derfor kan denne metode hjælpe med at belyse de molekylære mekanismer, der ligger til grund for, hvordan epigenetiske modifikationer regulerer deres kandidatmålgener under svampepatogenese i plantepatologi.

Protocol

1. Fremstilling af protoplaster fra M. oryzae Forbered havregryn-tomat agar (OTA). Afvej 30-50 g havregryn og kog den i 800 mL vand (ddH2O) i 20 min. Filtrer gennem to lag gaze og tag filtratet. Vælg modne tomater og skræl dem. Klem saften, og filtrer gennem to lag gaze for at opsamle 150 mL af den filtrerede saft. Bland al tomatsaft og den forberedte havrefiltrat grundigt og tilsæt ddH2O op til 1000 mL. Tilsæt 250 mL af OTA og 2,5 g ag…

Representative Results

Hele rutediagrammet for ChIP-seq-metoden vises i figur 1. ChIP-seq-eksperimenter blev udført ved hjælp af antistoffer mod H3K4me3 i den vilde stamme P131 og tre null mutant stammer, der var blottet for mobre2, mospp1og moswd2 gen for at kontrollere hele genomet-dækkende profil af histone H3K4me3 fordeling i M. oryzae. Protoplasterne af den vilde stamme, Δmobre2,Δmospp1og Δmoswd2, blev forberedt og sonikeret ved 25% W, outpu…

Discussion

For nylig er ChIP-seq blevet en meget anvendt genomisk analysemetode til bestemmelse af de bindende websteder for TF’er eller berigelsessteder, der er ændret af specifikke histoner. Sammenlignet med tidligere ChIP-seq-teknologi er den nye ChIP-seq-teknologi meget følsom og fleksibel. Resultaterne leveres i høj opløsning uden negative virkninger, såsom støjsignalet forårsaget af den ikke-specifikke hybridisering af nukleinsyrer. Selv om dette er en fælles genekspression analyse, mange beregningsmæssige metoder er…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af National Natural Science Foundation of China (Grant no. 31871638), special Scientific Research Project of Beijing Agriculture University (YQ201603), Det Videnskabelige Projekt i Beijing Educational Committee (KM201610020005), BUA ‘s videnskabelige forskningsdyrkningsprojekt (GJB2021005).

Materials

acidic casein hydrolysate WAKO 65072-00-6 Medium configuration
agar powder scientan 9002-18-0 Medium configuration
deoxycholic acid MedChemExpress 83-44-3 protein and dissolution
DNA End-Repair kit NovoBiotec ER81050 Repair DNA or cDNA damaged by enzymatic or mechanical shearing
Dynabeads Invitrogen no.100.02D Binding target
EB buffer JIMEI JC2174 Membrane and liquid
EDTA ThermoFisher AM9912 protease inhibitor
enzymatic casein hydrolysate Sigma 91079-40-2 Medium configuration
glucose Sigma 50-99-7 Medium configuration
glycogen ThermoFisher AM9510 Precipitant action
H3K4me3 antibodies Abcam ab8580 Immune response to H3K4me3 protein
illumina Genome Analyzer illumina illumina Hiseq 2000 Large configuration
Illumina PCR primers illumina CleanPlex Random universal primer
isoamyl alcohol chemical book 30899-19-5 Purified DNA
LiCl ThermoFisher AM9480 specific removal RNA
lysing enzymes Sigma L1412-10G cell lysis buffer
Mouse IgG Yeasen 36111ES10 Animal normal immunoglobulin
NaCl solution ThermoFisher 7647-14-5 Medium configuration
NaHCO3 Seebio SH30173.08* preparation of protein complex eluent
NP-40 ThermoFisher 85124 cell lysate to promote cell lysis
PCR Purification kit Qiagen 28004 The purification procedure removes primers from DNA samples
protease inhibitors ThermoFisher A32965 A protein inhibitor that decreases protein activity
Proteinase K ThermoFisher AM2546 DNA Extraction Reagent
Qubit 4.0 ThermoFisher Q33226 Medium configuration
RIPA buffer ThermoFisher 9806S cell lysis buffer
RNase A ThermoFisher AM2271 Purified DNA
SDS ThermoFisher AM9820 cover up the charge differences
sodium acetate solution ThermoFisher R1181 Acetic acid buffer
sodium deoxycholate ThermoFisher 89904 inhibition of protease degradation
T4 DNA ligase ThermoFisher EL0011 Under the condition of ATP as coenzyme, DNA ligase
T4 DNA ligase buffer ThermoFisher B69 DNA ligase buffer
Tris-HCl ThermoFisher 1185-53-1 buffer action
Triton X-100 ThermoFisher HFH10 keep the membrane protein stable
yeast extract OXOID LP0021 Medium configuration

References

  1. Kornberg, R. D. Chromatin structure: are repeating unit of histones and DNA. Science. 184 (4139), 868-871 (1974).
  2. Luger, K., et al. Crystal structure of the nucleosomecore particle at 2.8 a resolution. Nature. 389 (6648), 251-260 (1997).
  3. Strathl, B. D., Allis, C. D. The language of covalent histone modifications. Nature. 403 (6765), 41-45 (2000).
  4. Lachner, M., Jenuwein, T. The many faces of histone lysine methylation. Current Opinion in Cell Biology. 14 (3), 286-298 (2002).
  5. Bhaumik, S. R., et al. Covalent modifications of histones during development and disease pathogenesis. Nature Structural and Molecular Biology. 14 (11), 1008-1016 (2007).
  6. Shilatifard, A. Molecular implementation and physiological roles for histone H3 lysine 4 (H3K4) methylation. Current Opinion in Cell Biology. 20 (3), 341-348 (2008).
  7. Berger, S. L. The complex language of chromatin regulation during transcription. Nature. 447 (7143), 407-412 (2007).
  8. Bernstein, B. E., et al. The mammalian epigenome. Cell. 128 (4), 669-681 (2007).
  9. Weake, V. M., Workman, J. L. Histone ubiquitination: triggering gene activity. Molecular Cell. 29 (6), 653-663 (2008).
  10. Workman, J. L., Kingston, R. E. Alteration of nucleosome structure as a mechanism of transcriptional regulation. Annual Review of Biochemistry. 67 (1), 545-579 (2003).
  11. Kouzarides, T. Chromatin modifications and their function. Cell. 128 (4), 693-705 (2007).
  12. Akhtar, J., More, P., Albrecht, S. ChIP-Seq from limited starting material of K562 cells and Drosophila neuroblasts using tagmentation assisted fragmentation approach. Bio-protocol. 10 (4), 3520 (2020).
  13. Steinhauser, S., Kurzawa, N., Eils, R., Herrmann, C. A comprehensive comparison of tools of differential ChIP-seq analysis. Briefings in Bioinformatics. 17 (6), 953-966 (2016).
  14. Kieu, T., et al. MoSET1 (histone H3K4 methyltransferase in Magnaporthe oryzae) regulates global gene expression during infection-related morphogenesis. Plos Genetics. 11 (7), 11005385 (2015).
  15. Vu, B. V., Pham, K. T., Nakayashiki, H. Substrate-induced transcriptional activation of the MoCel7C cellulase gene is associated with methylation of histone H3 at lysine 4 in the rice blast fungus Magnaporthe oryzae. Applied and Environmental Microbiology. 79 (21), 6823-6832 (2013).
  16. Kazan, K., Gardiner, D. M., Manners, J. M. On the trail of a cereal killer: recent advances in Fusarium graminearum pathogenomics and host resistance. Molecular Plant Pathology. 13 (4), 399-413 (2012).
  17. Wang, G. H., et al. The AMT1 arginine methyltransferase gene is important for plant infection and normal hyphal growth in Fusarium graminearum. PLoS One. 7 (5), 38324 (2012).
  18. Liu, Y., et al. Histone H3K4 methylation regulates hyphal growth, secondary metabolism and multiple stress responses in Fusarium graminearum. Environmental Microbiology. 17 (11), 4615-4630 (2016).
  19. Zhang, M. Y., et al. The plant infection test: spray and wound-mediated inoculation with the plant pathogen Magnaporthe grisea. Journal of Visualized Experiments. (138), e57675 (2018).
  20. Connolly, L. R., Smith, K. M., Freitag, M. The Fusarium graminearum histone H3K27 methyltransferase KMT6 regulates development and expression of secondary metabolite gene clusters. PloS Genetics. 9 (10), 1003916 (2013).
  21. Palmer, J. M., et al. Loss of CclA, required for histone 3 lysine 4 methylation, decreases growth but increases secondary metabolite production in Aspergillus fumigatus. PeerJ. 1, 4 (2013).
  22. Ding, S. L., et al. The Tig1 histone deacetylase complex regulates infectious growth in the rice blast fungus Magnaporthe oryzae. The Plant Cell. 22 (7), 2495-2508 (2010).
  23. Dean, R. A., et al. The genome sequence of the rice blast fungus Magnaporthe grisea. Nature. 434 (7036), 980-986 (2005).
  24. Allis, C. D., et al. New nomenclature for chromatin-modifying enzymes. Cell. 131 (4), 633-636 (2007).
  25. Shilatifard, A. The COMPASS family of histone H3K4 methylases: mechanisms of regulation in development and disease pathogenesis. Annual Review of Biochemistry. 81, 65-95 (2012).
  26. Zhou, S. D., et al. The COMPASS-like complex modulates fungal development and pathogenesis by regulating H3K4me3-mediated targeted gene expression in Magnaporthe oryzae. Molecular Plant Pathology. 22 (4), 422-439 (2021).
check_url/kr/62423?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Wu, Z., Sun, W., Zhou, S., Zhang, L., Zhao, X., Xu, Y., Wang, W. Genome-wide Analysis of Histone Modifications Distribution using the Chromatin Immunoprecipitation Sequencing Method in Magnaporthe oryzae. J. Vis. Exp. (172), e62423, doi:10.3791/62423 (2021).

View Video