Summary

Kleuring van de Cytoplasmatische Ca2+ met Fluo-4/AM in Appelpulp

Published: November 06, 2021
doi:

Summary

Geïsoleerde protoplasten van appelpulpcellen werden geladen met een calciumconsprecerend reagens om cytoplasmatische Ca2+ concentratie te detecteren.

Abstract

Cytosolic Ca2+ speelt een sleutelrol in de ontwikkeling van planten. Calciumbeeldvorming is de meest veelzijdige methode om dynamische veranderingen in Ca2+ in het cytoplasma te detecteren. In deze studie verkregen we levensvatbare protoplasten van pulpcellen door enzymatische hydrolyse. Geïsoleerde protoplasten werden geïncubeerd met het fluorescerende reagens met kleine moleculen (Fluo-4/AM) gedurende 30 minuten bij 37 °C. De fluorescerende sondes vlekten met succes cytosolische Ca2+ maar hoopten zich niet op in vacuolen. La3+,een Ca2+ kanaalblokker, verminderde de cytoplasmatische fluorescentie-intensiteit. Deze resultaten suggereren dat Fluo-4/AM kan worden gebruikt om veranderingen in cytosolische Ca2+ in het vruchtvlees te detecteren. Samenvattend presenteren we een methode om protoplasten effectief te isoleren uit vleescellen van de vrucht en Ca2+ te detecteren door een klein molecuul calcium fluorescerend reagens in het cytoplasma van pulpcellen te laden.

Introduction

Ca2+ speelt een belangrijke rol bij de transductie en stofwisseling vanplantensignalen 1,2. Verder reguleert het de eigenschappen van de fruitkwaliteit3,4,waaronder hardheid, suikergehalte en gevoeligheid voor fysiologische stoornissen tijdens opslag5,6. Cytoplasmatisch Ca2+ speelt een belangrijke rol bij signaaltransductie en reguleert de groei en ontwikkeling van planten7. Verstoring van cellulaire calciumhomeostase kan bittere pit in appelsveroorzaken 8,bruine vlekkenziekte in peren9en navelstrengrot in tomaten10,waardoor de fruitkwaliteit wordt aangetast en ernstige economische verliezen worden veroorzaakt3,11. Calciumbeeldvorming heeft voldoende ruimtelijke en temporele resolutie en is een belangrijke methode voor het observeren van Ca2+ dynamiek in levende cellen12,13.

Op dit moment zijn er twee hoofdmethoden voor intracellulaire calciumbeeldvorming in levende cellen: de ene maakt gebruik van chemische kleinmoleculaire fluorescerende sondes14en de andere is de gencoderingssensor (GECI)15,16. Gezien de moeilijkheid om een stabiel transgeen systeem in fruitbomen en een langere vruchtontwikkeling tot stand te brengen, is GECIS ongeschikt voor beeldvorming van fruit Ca2+ fluorescentie.

Fluorescentiesondes met kleine moleculen zoals Fluo-4 / AM hebben een bijzonder voordeel: hun AM-estervorm (celdoorlatend acetoxymethylesterderivaat) kan gemakkelijk in bulk in levende cellen worden geladen zonder de noodzaak van transfectie, waardoor het flexibel, snel en niet-cytotoxischis 17. Fluo-4/AM kon met succes worden geladen in de stuifmeelbuis van Pyrus pyrifolia18 en Petunia,19, evenals in wachtcellen20 en wortelhaar van Arabidopsis21.

Op dit moment zijn er weinig rapporten over de calciumfluorescentiekleuring van pulpcellen22. Als belangrijk mineraal element speelt calcium een sleutelrol bij de groei en kwaliteitscontrole van boomvruchten zoals appels. Appelbomen worden wereldwijd erkend als een belangrijke economische soort en appels worden beschouwd als een gezond voedsel23. In deze studie verkregen we levensvatbare protoplasten uit appelvruchtpulp door middel van enzymatische hydrolyse en laadden vervolgens fluorescerende reagentia met kleine moleculen in het cytoplasma om Ca2 +te detecteren.

Protocol

1. Protoplast extractie Bereid de basisoplossing: 20 mM CaCl2, 5 mM 2-(N-morfolino)ethaansulfonzuur en 0,4 M D-sorbitol.OPMERKING: De pH van de basisoplossing werd aangepast naar 5,8 met 0,1 M Tris-buffer, gefilterd door 0,22 μm in water oplosbare filters en bewaard bij 4 °C. Bereid de enzymatische oplossing voor: Meng 0,3% (w / v) MacerozymE R-10 en 0,5% (w / v) cellulase R-10 met de basisoplossing. Voeg 0,5 ml enzymatische oplossing toe aan een centrifugeb…

Representative Results

Volgens het hierboven beschreven protocol gebruikten we de enzymatische methode om levensvatbare protoplasten uit de pulp te verkrijgen(figuur 1). Sommige protoplasten hadden vacuolen, terwijl anderen dat niet deden. Terwijl de protoplasten geen fluorescentie vertoonden wanneer de Ca2+ fluorescerende indicator er niet in werd geladen. Toen Fluo-4/AM in de protoplasten werd geladen, werd het cytoplasma, maar niet de vacuole, fluorescerend (figuur 2). D…

Discussion

In deze studie werden levensvatbare protoplasten verkregen door enzymatische hydrolyse. Merk op dat deze methode verse appels vereist. Het huidige protocol maakt de snelle isolatie van een groot aantal protoplasten uit vruchtenpulp mogelijk voor gebruik in onderzoeksstudies. De toepasbaarheid van deze methode is niet beperkt tot ‘Fuji’; de protoplasten van de appelpulp van ‘Dounan’ en ‘Honey Crisp’ kunnen ook via hetzelfde protocol worden geëxtraheerd (aanvullende figuur S4). De protoplastoplossing na e…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door het Agricultural Variety Improvement Project van de provincie Shandong (2019LZGC007) en het fruitboominnovatieteam van het moderne landbouwindustrietechnologiesysteem van Shandong (SDAIT-06-05).

Materials

10× phosphate-buffered saline Solarbio P1022 PBS (phosphate buffered solution) is a phosphate buffer solution, which can provide a relatively stable ionic environment and pH buffering capacity. It is a buffer salt solution often used in biology for molecular cloning and cell culture. The pH is 7.4. 
2-(N-morpholino)ethanesulfonic acid Solarbio M8010 Biological buffer
CaCl2·2H2O Solarbio C8370 Calcium chloride dihydrate is a white or gray chemical, mostly in granular form.
Cellulase R-10 Yakult Honsha MX7352 Degrade plant cell walls.
D-sorbitol Solarbio S8090 It has good moisturizing properties, prevents drying, and prevents sugar, salt, etc. from crystallizing.
F-127 Thermo Fisher Scientific P6867 Pluronic F-127 is a non-ionic, surfactant polyol (molecular weight of approximately 12500 Daltons), which has been found to be beneficial to promote the dissolution of water-insoluble dyes and other materials in physiological media. 
FDA Thermo Fisher Scientific F1303 FDA is a cell-permeant esterase substrate that can serve as a viability probe that measures both enzymatic activity, which is require to activate its fluorescence, and cell-membrane integrity, which is required for intracellular retention of their fluorescent product. 
Fluo-4/AM Thermo Fisher Scientific F14201 The green fluorescent calcium indicator Fluo-4/AM is an improved version of the calcium indicator Fluo-3/AM. The Fluo-4/AM loads faster and is brighter at the same concentration. It can be well excited with a 488 nm argon ion laser.
Fluorescence microscope Thermo Fisher EVOS Auto 2 Observe the fluorescence image.
Macerozyme R-10 Yakult Honsha MX7351 Degrade plant tissue to separate single cells.
Tris Solarbio T8060 It is widely used in the preparation of buffers in biochemistry and molecular biology experiments.

References

  1. Hocking, B., Tyerman, S. D., Burton, R. A., Gilliham, M. Fruit calcium: Transport and physiology. Frontiers in Plant Science. 7, 569 (2016).
  2. Li, J., Yang, H. -. q., Yan, T. -. l., Shu, H. -. r. Effect of indole butyric acid on the transportation of stored calcium in Malus hupehensis rhed. Seedling. Agricultural Sciences in China. 5 (11), 834-838 (2006).
  3. Gao, Q., Xiong, T., Li, X., Chen, W., Zhu, X. Calcium and calcium sensors in fruit development and ripening. Scientia Horticulturae. 253, 412-421 (2019).
  4. Barrett, D. M., Beaulieu, J. C., Shewfelt, R. L. Color, flavor, texture, and nutritional quality of fresh-cut fruits and vegetables: desirable levels, instrumental and sensory measurement, and the effects of processing. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 50 (5), 369-389 (2010).
  5. Deell, J. R., Khanizadeh, S., Saad, F., Ferree, D. C. Factors affecting apple fruit firmness–a review. Journal- American Pomological Society. 55 (1), 8-27 (2001).
  6. Johnston, J., Hewett, E., Hertog, M. A. T. M. Postharvest softening of apple (Malus domestica) fruit: A review. New Zealand Journal of Experimental Agriculture. 30 (3), 145-160 (2002).
  7. Demidchik, V., Shabala, S., Isayenkov, S., Cuin, T. A., Pottosin, I. Calcium transport across plant membranes: mechanisms and functions. New Phytologist. 220 (1), 49-69 (2018).
  8. Miqueloto, A., et al. Mechanisms regulating fruit calcium content and susceptibility to bitter pit in cultivars of apple. Acta horticulturae. 1194 (1194), 469-474 (2018).
  9. Kou, X., et al. Effects of CaCl2 dipping and pullulan coating on the development of brown spot on ‘Huangguan’ pears during cold storage. Postharvest Biology and Technology. 99, 63-72 (2015).
  10. Vinh, T. D., et al. Comparative analysis on blossom-end rot incidence in two tomato cultivars in relation to calcium nutrition and fruit growth. The Horticulture Journal. 87 (1), 97-105 (2018).
  11. Yamane, T. Foliar calcium applications for controlling fruit disorders and storage life in deciduous fruit trees. Japan Agricultural Research Quarterly. 48 (1), 29-33 (2014).
  12. Grienberger, C., Konnerth, A. Imaging calcium in neurons. Neuron. 73 (5), 862-885 (2012).
  13. Bootman, M. D., Rietdorf, K., Collins, T. J., Walker, S., Sanderson, M. J. Ca2+-sensitive fluorescent dyes and intracellular Ca2+ imaging. CSH Protocols. 2013 (2), 83 (2013).
  14. Hirabayashi, K., et al. Development of practical red fluorescent probe for cytoplasmic calcium ions with greatly improved cell-membrane permeability. Cell Calcium. 60 (4), 256-265 (2016).
  15. Krebs, M., et al. FRET-based genetically encoded sensors allow high-resolution live cell imaging of Ca(2)(+) dynamics. Plant Journal. 69 (1), 181-192 (2012).
  16. Zhao, Y., et al. An expanded palette of genetically encoded Ca(2)(+) indicators. Science. 333 (2), 1888-1891 (2011).
  17. Gee, K. R., et al. Chemical and physiological characterization of fluo-4 Ca2+-indicator dyes. Cell Calcium. 27 (2), 97-106 (2000).
  18. Qu, H., Xing, W., Wu, F., Wang, Y. Rapid and inexpensive method of loading fluorescent dye into pollen tubes and root hairs. PLoS One. 11, 0152320 (2016).
  19. Suwińska, A., Wasąg, P., Zakrzewski, P., Lenartowska, M., Lenartowski, R. Calreticulin is required for calcium homeostasis and proper pollen tube tip growth in Petunia. Planta. 245 (5), 909-926 (2017).
  20. Sun, L., et al. NADK2 positively modulates abscisic acid-induced stomatal closure by affecting accumulation of H2O2, Ca2+ and nitric oxide in Arabidopsis guard cells. Plant Science. 262, 81-90 (2017).
  21. Niu, Y. F., et al. Magnesium availability regulates the development of root hairs in Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Plant Cell and Environment. 37 (12), 2795-2813 (2014).
  22. Qiu, L., Wang, Y., Qu, H. Loading calcium fluorescent probes into protoplasts to detect calcium in the flesh tissue cells of Malus domestica. Horticulture Research. 7, 91 (2020).
  23. Boyer, J., Liu, R. H. Apple phytochemicals and their health benefits. Nutrition Journal. 3 (1), 5 (2004).
  24. Takahashi, A., Camacho, P., Lechleiter, J. D., Herman, B. Measurement of intracellular calcium. Physiological Reviews. 79 (4), 1089-1125 (1999).
  25. Qu, H., Shang, Z., Zhang, S., Liu, L., Wu, J. Identification of hyperpolarization-activated calcium channels in apical pollen tubes of Pyrus pyrifolia. New Phytologist. 174 (3), 524-536 (2007).
  26. Hadjantonakis, A. K., Pisano, E., Papaioannou, V. E. Tbx6 regulates left/right patterning in mouse embryos through effects on nodal cilia and perinodal signaling. PLoS One. 3 (6), 2511 (2008).
  27. DeSimone, J. A., et al. Changes in taste receptor cell [Ca2+]i modulate chorda tympani responses to salty and sour taste stimuli. Journal of Neurophysiology. 108 (12), 3206-3220 (2012).
  28. Kao, J. P., Harootunian, A. T., Tsien, R. Y. Photochemically generated cytosolic calcium pulses and their detection by fluo-3. Journal of Biological Chemistry. 264 (14), 8179-8184 (1989).
  29. Merritt, J. E., Mccarthy, S. A., Davies, M., Moores, K. E. Use of fluo-3 to measure cytosolic Ca2+ in platelets and neutrophils. Loading cells with the dye, calibration of traces, measurements in the presence of plasma, and buffering of cytosolic Ca2. Biochemical Journal. 269 (2), 513-519 (1990).
  30. Li, W., et al. A comparative study on Ca content and distribution in two Gesneriaceae species reveals distinctive mechanisms to cope with high rhizospheric soluble calcium. Frontiers in Plant Science. 5 (5), 647 (2014).
  31. Zhang, W., Rengel, Z., Kuo, J. Determination of intracellular Ca2+ in cells of intact wheat roots: loading of acetoxymethyl ester of Fluo-3 under low temperature. Plant Journal. 15 (1), 147-151 (1998).
  32. Qu, H., Jiang, X., Shi, Z., Liu, L., Zhang, S. Fast loading ester fluorescent Ca2+ and pH indicators into pollen of Pyrus pyrifolia. Journal of Plant Research. 125 (1), 185-195 (2012).
  33. Wang, Y., et al. Disruption of actin filaments induces mitochondrial Ca2+ release to the cytoplasm and [Ca2+]c changes in Arabidopsis. root hairs. BMC Plant Biology. 10, 53 (2010).
  34. Fujimori, T., Jencks, W. P. Lanthanum inhibits steady-state turnover of the sarcoplasmic reticulum calcium ATPase by replacing magnesium as the catalytic ion. Journal of Biological Chemistry. 265 (27), 16262-16270 (1990).
check_url/kr/62526?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Qiu, L., Huang, D., Wang, Y., Qu, H. Staining the Cytoplasmic Ca2+ with Fluo-4/AM in Apple Pulp. J. Vis. Exp. (177), e62526, doi:10.3791/62526 (2021).

View Video