Summary

Färgning av cytoplasmic Ca2+ med Fluo-4/AM i Äppelmassa

Published: November 06, 2021
doi:

Summary

Isolerade protoplaster av äppelmassa celler laddades med en kalcium fluorescerande reagens för att upptäcka cytoplasmic Ca2 + koncentration.

Abstract

Cytosolic Ca2+ spelar en nyckelroll i växtutvecklingen. Kalciumavbildning är den mest mångsidiga metoden för att upptäcka dynamiska förändringar i Ca2+ i cytoplasman. I denna studie erhöll vi livskraftiga protoplaster av massaceller genom enzymatisk hydrolys. Isolerade protoplaster inkuberades med småmolekylen fluorescerande reagens (Fluo-4/AM) i 30 min vid 37 °C. Fluorescerande sonder framgångsrikt färgade cytosolic Ca2 + men ackumulerades inte i vacuoles. La3 +, en Ca2 + kanalblockerare, minskad cytoplasmisk fluorescensintensitet. Dessa resultat tyder på att Fluo-4/AM kan användas för att upptäcka förändringar i cytosolic Ca2+ i fruktköttet. Sammanfattningsvis presenterar vi en metod för att effektivt isolera protoplaster från köttceller i frukten och upptäcka Ca2 + genom att ladda ett kalcium fluorescerande reagens med små molekyler i cytoplasman i massaceller.

Introduction

Ca2 + spelar en viktig roll i växtsignaltransduktion och metabolism1,2. Vidare reglerar det fruktkvalitetsegenskaper3,4, inklusive hårdhet, sockerhalt och mottaglighet för fysiologiska störningar underlagring 5,6. Cytoplasmic Ca2+ spelar en viktig roll i signaltransduktion och reglerar växttillväxt och utveckling7. Störningar av cellulär kalciumhomeostas kan inducera bitter grop i äpplen8,brun fläcksjukdom hos päron9, och navelrot i tomater10, vilket påverkar fruktkvaliteten och orsakar allvarliga ekonomiska förluster3,11. Kalciumavbildning har tillräcklig rumslig och tidsmässig upplösning och är en viktig metod för att observera Ca2 + dynamik i levandeceller 12,13.

För närvarande finns det två huvudmetoder för intracellulär kalciumavbildning i levande celler: den ena använder kemiska småmolekylära fluorescerandesonder 14, och den andra är genkodningssensorn (GECI)15,16. Med tanke på svårigheten att etablera ett stabilt transgent system i fruktträd och längre fruktutveckling är GECIS olämpligt för frukt Ca2 + fluorescensavbildning.

Småmolekylära fluorescerande sonder som Fluo-4/AM har en särskild fördel: deras AM-esterform (cellpermeabel acetoxymethylesterderivat) kan lätt bulklastas i levande celler utan behov av transfection, vilket gör den flexibel, snabb och icke-cytotoxisk17. Fluo-4/AM kan framgångsrikt laddas i pollenröret i Pyrus pyrifolia18 och Petunia,19 samt i skyddsceller20 och rothår av Arabidopsis21.

För närvarande finns det få rapporter om kalcium fluorescens färgning av massa celler22. Som ett viktigt mineralelement spelar kalcium en nyckelroll i tillväxten och kvalitetskontrollen av trädfrukter som äpplen. Äppelträd är globalt erkända som en viktig ekonomisk art, och äpplen anses vara en hälsosam mat23. I denna studie erhöll vi livskraftiga protoplaster från äppelfruktmassa genom enzymatisk hydrolys och laddade sedan småmolekyls fluorescerande reagenser i cytoplasman för att upptäcka Ca2 +.

Protocol

1. Protoplast extraktion Förbered den grundläggande lösningen: 20 mM CaCl2,5 mM 2-(N-morpholino)etanesulfonsyra och 0,4 M D-sorbitol.OBS: Baslösningens pH-tal justerades till 5,8 med 0,1 M Tris-buffert, filtrerades genom 0,22 μm vattenlösliga filter och lagrades vid 4 °C. Förbered den enzymatiska lösningen: Blanda 0,3%(w/v) Macerozyme R-10 och 0,5%(w/v) cellulase R-10 med den grundläggande lösningen. Tillsätt 0,5 ml enzymatisk lösning i ett 1,5 ml…

Representative Results

Enligt det protokoll som beskrivs ovan använde vi den enzymatiska metoden för att erhålla livskraftiga protoplaster från massan (Figur 1). Vissa protoplaster hade vacuoles, medan andra inte. Medan protoplasterna inte uppvisade någon fluorescens när Ca2 + fluorescerande indikatorn inte laddades i dem. När Fluo-4/AM laddades in i protoplasterna blev cytoplasman, men inte vacuole, fluorescerande (figur 2). Detta resultat anges att Fluo-4/AM framg?…

Discussion

I denna studie erhölls livskraftiga protoplaster genom enzymatisk hydrolys. Observera att den här metoden kräver färska äpplen. Detta protokoll möjliggör snabb isolering av ett stort antal protoplaster från fruktmassa för användning i forskningsstudier. Tillämpligheten av denna metod är inte begränsad till “Fuji”. Protoplasterna i äppelmassan “Dounan” och “Honey Crisp” kan också extraheras genom samma protokoll (kompletterande figur S4). Protoplastlösningen efter enzymolys innehåller cel…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av projektet agricultural variety improvement project of Shandong Province (2019LZGC007) och Fruit tree innovation team of Shandong modern agricultural industry technology system (SDAIT-06-05).

Materials

10× phosphate-buffered saline Solarbio P1022 PBS (phosphate buffered solution) is a phosphate buffer solution, which can provide a relatively stable ionic environment and pH buffering capacity. It is a buffer salt solution often used in biology for molecular cloning and cell culture. The pH is 7.4. 
2-(N-morpholino)ethanesulfonic acid Solarbio M8010 Biological buffer
CaCl2·2H2O Solarbio C8370 Calcium chloride dihydrate is a white or gray chemical, mostly in granular form.
Cellulase R-10 Yakult Honsha MX7352 Degrade plant cell walls.
D-sorbitol Solarbio S8090 It has good moisturizing properties, prevents drying, and prevents sugar, salt, etc. from crystallizing.
F-127 Thermo Fisher Scientific P6867 Pluronic F-127 is a non-ionic, surfactant polyol (molecular weight of approximately 12500 Daltons), which has been found to be beneficial to promote the dissolution of water-insoluble dyes and other materials in physiological media. 
FDA Thermo Fisher Scientific F1303 FDA is a cell-permeant esterase substrate that can serve as a viability probe that measures both enzymatic activity, which is require to activate its fluorescence, and cell-membrane integrity, which is required for intracellular retention of their fluorescent product. 
Fluo-4/AM Thermo Fisher Scientific F14201 The green fluorescent calcium indicator Fluo-4/AM is an improved version of the calcium indicator Fluo-3/AM. The Fluo-4/AM loads faster and is brighter at the same concentration. It can be well excited with a 488 nm argon ion laser.
Fluorescence microscope Thermo Fisher EVOS Auto 2 Observe the fluorescence image.
Macerozyme R-10 Yakult Honsha MX7351 Degrade plant tissue to separate single cells.
Tris Solarbio T8060 It is widely used in the preparation of buffers in biochemistry and molecular biology experiments.

References

  1. Hocking, B., Tyerman, S. D., Burton, R. A., Gilliham, M. Fruit calcium: Transport and physiology. Frontiers in Plant Science. 7, 569 (2016).
  2. Li, J., Yang, H. -. q., Yan, T. -. l., Shu, H. -. r. Effect of indole butyric acid on the transportation of stored calcium in Malus hupehensis rhed. Seedling. Agricultural Sciences in China. 5 (11), 834-838 (2006).
  3. Gao, Q., Xiong, T., Li, X., Chen, W., Zhu, X. Calcium and calcium sensors in fruit development and ripening. Scientia Horticulturae. 253, 412-421 (2019).
  4. Barrett, D. M., Beaulieu, J. C., Shewfelt, R. L. Color, flavor, texture, and nutritional quality of fresh-cut fruits and vegetables: desirable levels, instrumental and sensory measurement, and the effects of processing. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 50 (5), 369-389 (2010).
  5. Deell, J. R., Khanizadeh, S., Saad, F., Ferree, D. C. Factors affecting apple fruit firmness–a review. Journal- American Pomological Society. 55 (1), 8-27 (2001).
  6. Johnston, J., Hewett, E., Hertog, M. A. T. M. Postharvest softening of apple (Malus domestica) fruit: A review. New Zealand Journal of Experimental Agriculture. 30 (3), 145-160 (2002).
  7. Demidchik, V., Shabala, S., Isayenkov, S., Cuin, T. A., Pottosin, I. Calcium transport across plant membranes: mechanisms and functions. New Phytologist. 220 (1), 49-69 (2018).
  8. Miqueloto, A., et al. Mechanisms regulating fruit calcium content and susceptibility to bitter pit in cultivars of apple. Acta horticulturae. 1194 (1194), 469-474 (2018).
  9. Kou, X., et al. Effects of CaCl2 dipping and pullulan coating on the development of brown spot on ‘Huangguan’ pears during cold storage. Postharvest Biology and Technology. 99, 63-72 (2015).
  10. Vinh, T. D., et al. Comparative analysis on blossom-end rot incidence in two tomato cultivars in relation to calcium nutrition and fruit growth. The Horticulture Journal. 87 (1), 97-105 (2018).
  11. Yamane, T. Foliar calcium applications for controlling fruit disorders and storage life in deciduous fruit trees. Japan Agricultural Research Quarterly. 48 (1), 29-33 (2014).
  12. Grienberger, C., Konnerth, A. Imaging calcium in neurons. Neuron. 73 (5), 862-885 (2012).
  13. Bootman, M. D., Rietdorf, K., Collins, T. J., Walker, S., Sanderson, M. J. Ca2+-sensitive fluorescent dyes and intracellular Ca2+ imaging. CSH Protocols. 2013 (2), 83 (2013).
  14. Hirabayashi, K., et al. Development of practical red fluorescent probe for cytoplasmic calcium ions with greatly improved cell-membrane permeability. Cell Calcium. 60 (4), 256-265 (2016).
  15. Krebs, M., et al. FRET-based genetically encoded sensors allow high-resolution live cell imaging of Ca(2)(+) dynamics. Plant Journal. 69 (1), 181-192 (2012).
  16. Zhao, Y., et al. An expanded palette of genetically encoded Ca(2)(+) indicators. Science. 333 (2), 1888-1891 (2011).
  17. Gee, K. R., et al. Chemical and physiological characterization of fluo-4 Ca2+-indicator dyes. Cell Calcium. 27 (2), 97-106 (2000).
  18. Qu, H., Xing, W., Wu, F., Wang, Y. Rapid and inexpensive method of loading fluorescent dye into pollen tubes and root hairs. PLoS One. 11, 0152320 (2016).
  19. Suwińska, A., Wasąg, P., Zakrzewski, P., Lenartowska, M., Lenartowski, R. Calreticulin is required for calcium homeostasis and proper pollen tube tip growth in Petunia. Planta. 245 (5), 909-926 (2017).
  20. Sun, L., et al. NADK2 positively modulates abscisic acid-induced stomatal closure by affecting accumulation of H2O2, Ca2+ and nitric oxide in Arabidopsis guard cells. Plant Science. 262, 81-90 (2017).
  21. Niu, Y. F., et al. Magnesium availability regulates the development of root hairs in Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Plant Cell and Environment. 37 (12), 2795-2813 (2014).
  22. Qiu, L., Wang, Y., Qu, H. Loading calcium fluorescent probes into protoplasts to detect calcium in the flesh tissue cells of Malus domestica. Horticulture Research. 7, 91 (2020).
  23. Boyer, J., Liu, R. H. Apple phytochemicals and their health benefits. Nutrition Journal. 3 (1), 5 (2004).
  24. Takahashi, A., Camacho, P., Lechleiter, J. D., Herman, B. Measurement of intracellular calcium. Physiological Reviews. 79 (4), 1089-1125 (1999).
  25. Qu, H., Shang, Z., Zhang, S., Liu, L., Wu, J. Identification of hyperpolarization-activated calcium channels in apical pollen tubes of Pyrus pyrifolia. New Phytologist. 174 (3), 524-536 (2007).
  26. Hadjantonakis, A. K., Pisano, E., Papaioannou, V. E. Tbx6 regulates left/right patterning in mouse embryos through effects on nodal cilia and perinodal signaling. PLoS One. 3 (6), 2511 (2008).
  27. DeSimone, J. A., et al. Changes in taste receptor cell [Ca2+]i modulate chorda tympani responses to salty and sour taste stimuli. Journal of Neurophysiology. 108 (12), 3206-3220 (2012).
  28. Kao, J. P., Harootunian, A. T., Tsien, R. Y. Photochemically generated cytosolic calcium pulses and their detection by fluo-3. Journal of Biological Chemistry. 264 (14), 8179-8184 (1989).
  29. Merritt, J. E., Mccarthy, S. A., Davies, M., Moores, K. E. Use of fluo-3 to measure cytosolic Ca2+ in platelets and neutrophils. Loading cells with the dye, calibration of traces, measurements in the presence of plasma, and buffering of cytosolic Ca2. Biochemical Journal. 269 (2), 513-519 (1990).
  30. Li, W., et al. A comparative study on Ca content and distribution in two Gesneriaceae species reveals distinctive mechanisms to cope with high rhizospheric soluble calcium. Frontiers in Plant Science. 5 (5), 647 (2014).
  31. Zhang, W., Rengel, Z., Kuo, J. Determination of intracellular Ca2+ in cells of intact wheat roots: loading of acetoxymethyl ester of Fluo-3 under low temperature. Plant Journal. 15 (1), 147-151 (1998).
  32. Qu, H., Jiang, X., Shi, Z., Liu, L., Zhang, S. Fast loading ester fluorescent Ca2+ and pH indicators into pollen of Pyrus pyrifolia. Journal of Plant Research. 125 (1), 185-195 (2012).
  33. Wang, Y., et al. Disruption of actin filaments induces mitochondrial Ca2+ release to the cytoplasm and [Ca2+]c changes in Arabidopsis. root hairs. BMC Plant Biology. 10, 53 (2010).
  34. Fujimori, T., Jencks, W. P. Lanthanum inhibits steady-state turnover of the sarcoplasmic reticulum calcium ATPase by replacing magnesium as the catalytic ion. Journal of Biological Chemistry. 265 (27), 16262-16270 (1990).
check_url/kr/62526?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Qiu, L., Huang, D., Wang, Y., Qu, H. Staining the Cytoplasmic Ca2+ with Fluo-4/AM in Apple Pulp. J. Vis. Exp. (177), e62526, doi:10.3791/62526 (2021).

View Video