Vi presenterer en metode for å undersøke romlig kondrocyttorganisasjon i anulus fibrosus av mellomvirvelskiven ved hjelp av en optisk seksjoneringsmetode.
Intervertebral plate (IVD) degenerasjon er en ledende årsak til ryggsmerter, og det medfører en høy grad av svekkelse for de berørte individene. Å dekode plate degenerasjon og å kunne utvikle regenerative tilnærminger en grundig forståelse av cellulær biologi av IVD er viktig. Et aspekt av denne biologien som fortsatt er ubesvart, er spørsmålet om hvordan celler er romlig ordnet i en fysiologisk tilstand og under degenerasjon. De biologiske egenskapene til IVD og dens tilgjengelighet gjør dette vevet vanskelig å analysere. Den nåværende studien undersøker romlig kondrocyttorganisasjon i anulus fibrosus fra tidlig embryonal utvikling til degenerasjon i sluttfasen. En optisk seksjoneringsmetode (Apotome) brukes til å utføre høyoppløselige fargingsanalyser ved hjelp av storfe embryonalt vev som dyremodell og humant skivevev hentet fra pasienter som gjennomgår ryggradskirurgi. Fra en svært høy kondrocytttetthet i den tidlige embryonale storfeskiven, reduseres antall celler under svangerskap, vekst og modning. I menneskelige plater fulgte en økning i cellulær tetthet utviklingen av vevsdegenerering. Som det allerede var demonstrert i leddbrusk, representerer klyngedannelse et karakteristisk trekk ved avansert platedegenerering.
Mellomvirvelskiven (IVD) er en bruskbasert struktur som biokjemisk og med hensyn til cellulær arkitektur ved første øyekast ligner på mange måter leddbrusk1. Faktisk er både IVD-degenerasjon og slitasjegikt (OA) av leddbrusk preget av felles plass innsnevring på grunn av brusk slitasje, subkondral cyste og osteofyttdannelse, og subkondral sklerose2,3. Til tross for disse tilsynelatende likhetene er arkitektur og funksjonell rolle i begge vevene forskjellige. Mens matrisen av leddbrusk hovedsakelig er dannet av et arkadedannende kollagen type II-nettverk, består IVD av tre forskjellige typer vev: kollagentypen II-rik kjerne pulposus i midten tar opp aksiale belastninger og overfører dem til en omfattende ring av tettpakkede sirkulære kollagen type I-fibre som kalles anulus fibrosus. Deres funksjon er å absorbere de oversatte aksiale trykkene mottatt av den proteoglykan- og vannrike kjernen med deres strekkfaste langsgående fiberstyrke. Øverst og nederst i hver kjerne og anulus danner en hyalin brusk endeplate krysset til de tilstøtende ryggvirvlene4 (figur 1).
I leddbrusk finnes fire distinkte romlige kondrocyttmønstre: par, strenger, doble strenger, små, henholdsvis store klynger5,6,7 ( Figur2). Endringer i dette mønsteret er knyttet til OA-utbruddet og progresjonen8,9. Romlig kondrocyttorganisasjon er også veiledende for en direkte funksjonell egenskap av brusk, nemlig stivheten, som understreker den funksjonelle relevansen av denne bildebaserte graderingsmetoden10,11. Disse mønstrene kan i tillegg identifiseres med allerede eksisterende klinisk tilgjengelig teknologi12. På grunn av likhetene mellom IVD og leddbrusk, kan det hypoteses at karakteristiske kondrocyttmønstre også er til stede i IVD. Klyngedannelse er et fenomen som også observeres i degenerert IVD13,14.
Når du prøver å analysere romlig cellulær organisasjon i IVD, er det nødvendig å overvinne flere tekniske vanskeligheter som ikke er til stede når du undersøker leddbrusk:
For det første er behandling av vevet selv mye mer utfordrende enn med den homogene hyaline brusk som i stor grad består av kollagen type II. IVDs hovedfiberkomponent er kollagen type I, noe som gjør det mye vanskeligere å generere tynne histologiske seksjoner. Mens i hyalinartikulær brusk selv tykke seksjoner lett kan analyseres på grunn av vevets “glasslignende” natur, er kollagen type I-nettverket til IVD optisk svært ugjennomtrengelig. Av denne grunn er en sterk bakgrunnsstøy et vanlig problem i histologien til IVD. En rask og billig måte å trenge inn i dette optisk tette vevet er bruken av en optisk seksjoneringsenhet, for eksempel ved hjelp av en Apotome. I et slikt Apotome settes et rutenett inn i belysningsveien til et konvensjonelt fluorescensmikroskop. Foran rutenettet plasseres en plan-parallell glassplate. Dette vipper frem og tilbake og projiserer dermed rutenettet i bildet i tre forskjellige posisjoner. For hver z-posisjon opprettes tre RAW-bilder med det projiserte rutenettet og legges over. Ved hjelp av spesiell programvare kan lyset utenfor fokus beregnes ut. Det underliggende prinsippet er at hvis rutenettet er synlig, er denne informasjonen i fokus, hvis ikke anses den å være ute av fokus. Med denne teknikken kan godt fokuserte og høyoppløselige bilder skaffes på rimelig tid.
For det andre er vevet vanskelig å komme forbi fra menneskelige givere. Ved total kneutskifting kan hele overflaten av leddet oppnås for videre analyse under operasjonen. Selv om slitasjegikt i et diartropialt ledd også er en sykdom i hele leddet, er det likevel sterke fokusforskjeller i kvaliteten på brusk med vanligvis noen områder av leddet som fortsatt er intakte, for eksempel på grunn av redusert belastning i det området. Denne situasjonen er forskjellig i IVD, hvor kirurgi vanligvis bare utføres når platen er globalt ødelagt. Ved henting av vev fra menneskelige donorer fra operasjonsrommet er vevet også svært fragmentert, og det er nødvendig å tildele vevet riktig til en av de tre brusktypene til IVD før du gjør ytterligere analyser. For å tillate mer detaljerte analyser av også større vevsseksjoner og se på den embryonale utviklingen av IVD, er valget av en dyremodellorganisme derfor nødvendig.
Når du velger en slik modellorganisme, er det viktig å ha et system som er sammenlignbart med den menneskelige platen med hensyn til anatomi og dimensjoner, dens mekaniske belastning, dagens cellepopulasjon samt vevssammensetningen. For den presenterte teknikken her foreslår vi bruk av bovint lumbalskivevev: En kritisk egenskap ved den menneskelige platen som resulterer i sitt lave regenerative potensial er tap av notochordale celler under modning i kjernen. Men i mange modellorganismer kan notochordale celler oppdages hele livet. De fleste av de få dyrene som mister sine notokordale celler som sauer, geiter eller kondrodystrophig hunder har en IVD som er mye mindre enn menneskelige plater. Bare lumbale bovinskiver er tilstede med en sammenlignbar sagittal platediameter med de av menneskelige IVDer15.
En nøkkelfaktor som fører til tidlig platedegenerering er overdreven mekanisk lasting. Det intradiskale trykket til en stående ku i lumbal ryggraden er rundt 0,8 MPa med ryggraden justert horisontalt. Overraskende disse trykkene er sammenlignbare med lumbale intradiskale trykk rapportert for oppreist menneskelig ryggrad (0,5 MPa)15,16. Også mengden vann og proteoglykaner i storfeskiver er sammenlignbar med IVD fra unge mennesker17. Derfor, selv om bevegelsessegmentenes faktiske bevegelsesmønster kan variere i firedoble dyr fra bipedalmennesket, med hensyn til total lasting og skiveegenskaper, er kua mye nærmere menneskelig biologi enn andre etablerte dyremodeller for IVD som sauer og hunder.
I denne protokollen presenterer vi en teknikk for å analysere endringer i IVD fra romlig kondrocyttorganisasjon fra tidlig embryonal utvikling til sluttfase degenerasjon.
Ved hjelp av fluorescensmikroskopi forsterket av mosaikkavbildning og optisk seksjonering, evaluerte vi det romlige arrangementet av kondrocytter i anulus av lumbale IVD gjennom utvikling, modning og degenerasjon. Mens degenerativt vev kunne høstes fra pasienter som fikk ryggradskirurgi for skivedegenerering, krevde analyse av embryonal periode og modningsfase bruk av en modellorganisme (storfe). Høye cellulære tettheter ble notert i anulus under tidlig embryonal utvikling. I det videre utviklingsforløpet kunne man o…
The authors have nothing to disclose.
Vi takker våre medforfattere fra de opprinnelige publikasjonene for deres hjelp og støtte. Vi takker Charlotte Emma Bamberger for å ha bidratt til å skaffe apotome-bildene.
Amphotericin B | Merck KGaA, Germany | A2942 | |
Adhesion Microscope Slides SuperFrost Plus | R. Langenbrinck, Germany | 03-0060 | |
ApoTome | Carl Zeiss MicroImaging GmbH, Germany | 462000115 | |
AxioVision Rel. 4.8 with Modul MosaiX | Carl Zeiss MicroImaging GmbH, Germany | ||
CellMask Actin Tracking Stain | Thermo Fischer Scientific, US | A57249 | |
Cryostat | Leica Biosystems, US | CM3050S | |
DAPI | Thermo Fischer Scientific, US | D1306 | |
Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) | Gibco, Life Technologies, Germany | 41966052 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid | Sigma-Aldrich, US | 60004 | |
Fluorescence Miscoscope – Axio Observer Z1 with Axio Cam MR3 and Colibri | Carl Zeiss MicroImaging GmbH, Germany | 3834000604 | |
Formaldehyde | Merck KGaA, Germany | 104002 | |
Image J 1.53a, with Cell counter plugin | National Insittute of Health (NIH), US | ||
Invitrogen Alexa Fluor 568 Phalloidin | Thermo Fischer Scientific, US | A12380 | |
Microscopic Cover Glasses | R. Langenbrinck, Germany | 01-1818/1 | |
PAP Pen Liquid Blocker | Science Sevices GmbH, Germany | N71310 | |
Penicillin-Streptomycin | Sigma-Aldrich, US | P4333 | |
Phosphate buffered saline | Sigma-Aldrich,US | P5119 | |
Scalpel | pf medical AG, Germany | 2023-01 | |
Tissue-tek O.C.T. Compound | Sakura Finetek, Netherlands | SA6255012 |