Summary

미니 지방 흡입 기술을 사용한 인간 피하 지방 조직 샘플링

Published: September 27, 2021
doi:

Summary

원고 및 관련 비디오는 배꼽 주변 영역에서 피하 지방 조직 샘플을 얻는 경피적 생검 기술을 보여줍니다. 이 방법은 지방 조직 내에서 다양한 매개 변수 (예 : 유전자 또는 단백질 발현, 효소 활성, 지질 함량)를 조사하는 저위험하고 효율적인 방법입니다.

Abstract

지방 조직에 대한 연구는 대사 및 기타 상태를 이해하는 데 유용합니다. 인간의 피하 지방 조직에 접근 할 수 있습니다. 적절한 훈련과 무균 기술에 대한 엄격한 준수를 통해 피하 지방 샘플을 연구자가 비임상 환경에서 안전하고 효율적으로 얻을 수 있습니다. 배꼽에 국소 마취제를 투여 한 후, 5 또는 10 mL 주사기에 부착 된 14G 바늘을 피부를 통해 피하 조직으로 삽입합니다. 흡입 상태에서 주사기는 왕복 운동으로 이동하여 지방 조직 조각을 분리합니다. 플런저를 빼면 지방 조직 조각이 바늘을 통해 주사기로 흡인됩니다. 단일 생검은 약 200mg의 조직을 수집 할 수 있습니다. 이 생검 기술은 참가자와 연구 직원 모두에게 매우 안전합니다. 생검 후 참가자는 과도한 출혈을 피하기 위해 48시간 동안 수영과 지나치게 격렬한 활동을 피해야 하지만 대부분의 일상 활동을 재개할 수 있습니다. 참가자는 하루 안에 2번의 생검을 안전하게 받을 수 있으며, 이는 이 기술을 급성 중재 전후 연구에 적용할 수 있음을 의미합니다.

Introduction

지방 조직은 인간의 대사 기능에 대한 유용한 정보를 제공 할 수 있습니다. 인간의 피하 지방 조직은 쉽게 접근 할 수 있습니다. 피하 지방 조직 추출 기술은 80 년대 중반에 처음 설명되었습니다1; 그 이후로 수율을 높이고 연구 참가자의 내약성을 개선하기 위해 초기 프로토콜이 개선되었습니다. 피하 지방 조직은 수많은 부위로부터 얻을 수 있으며, 가장 일반적으로 둔부1 및 복부2에서 얻을 수 있습니다. 후자의 샘플은 대사 질환 관련 맥락에서 더 가치있는 정보를 제공하기 때문에 더 바람직 할 수 있습니다3.

미니 지방 흡입 방법을 이용한 피하 지방 조직 생검은 비 임상 환경에서 안전하고 효율적으로 수행 할 수 있습니다. 보드 인증 의사의 적절한 교육을 받고 엄격한 무균 기술을 사용하여 연구원은 참가자와 조사자 모두에게 최소한의 위험으로 이러한 생검을 일상적으로 수행 할 수 있습니다. 생검 팀은 생검을 수행 할 사람과 조수, 즉 최소 2 명으로 구성되어야합니다.

생검을 담당하는 사람은 참가자의 신원을 확인하고, 참가자가 안전하게 절차를 수행할 수 있는지 확인하고(아래 프로토콜 단계 2.1-2.4 참조), 참가자가 절차 전반에 걸쳐 편안한지 확인하고, 절차 전반에 걸쳐 멸균 기술이 유지되도록 하고, 절차를 수행하고, 참가자에게 구두 및 서면 사후 관리 절차를 제공합니다. 보조자의 역할은 나중에 분석 및/또는 저장을 위해 얻은 지방 조직을 처리하고 신속하게 처리하는 것입니다. 조수는 또한 “비 멸균 손”이되어 참가자가 절차 전반에 걸쳐 편안하게 지낼 수 있도록함으로써 도움을줍니다. 이 비디오와 논문의 목적은 복부에서 피하 지방 조직을 안전하게 얻기위한 단계별 생검 절차를 설명하는 것입니다.

Protocol

참고 : University of Stirling NHS, 침습적 또는 임상 연구위원회는 아래에 설명 된 생검 절차를 승인했습니다. 이 절차를 사용하는 모든 연구는 적절한 독립 윤리위원회의 승인을 받아야합니다. 생검 응시자는 기관의 요구 사항에 따라 설명된 기술에 대한 공식 교육을 이수해야 합니다. 일반적으로 여기에는 보드 인증 의사가 설명한 지방 조직 생검 기술의 시연을 관찰 한 다음 감독 된 실습을 관찰하는 …

Representative Results

설명 된 지방 조직 생검 절차는 연구자가 인간 자원 봉사자로부터 피하 지방 조직 샘플을 얻는 효율적이고 위험이 낮은 기술입니다. 우리는 11 명의 건강한 정상 체중 여성 (연령, 27.4 ± 3.3 세, 체질량 지수 (BMI), 22.6 ± 1.5 kg.m2)에서 설명 된 절차를 사용하여 39 개의 피하 지방 조직 생검을 수행했습니다. 모든 참가자는 07-00 시간의 금식 기간 후 10:00에서 8:12 사이에 실험실에 참석했습니다. 이 …

Discussion

설명 된 프로토콜 및 관련 비디오는 복부 영역에서 피하 지방 조직 샘플을 얻기위한 미니 지방 흡입 기술의 단계별 개요를 제공합니다. 이 연구 그룹은 참가자에게 부작용없이 124 개월 동안 총 19 건의 생검을 수행했습니다. 절차는 안전하고 설명 된 안전 조치를 따르는 경우 참가자 또는 생검 팀에 대한 위험을 최소화합니다. 무균 기술(멸균 장비를 오염시키지 않고 개봉 및 분배, 멸균 장갑을 적?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자는 선언 할 자금이 없습니다.

Materials

Item: 14 G needle
14 G x 3 1/8" 210 mm x 80 mm
B Braun 4665473 Per biopsy: 1
Item: 21 G needle
21 G x 1 1/2" 0.8 mm x 38 mm
Terumo AN*2138R1 Per biopsy: 2
Item: 26 G  needle
26 G x 1/2" microlance needle 0.45 mm x 13 mm
BD 303800 Per biopsy: 2
Item: 5 mL syringe
5 mL luer
DB plastipak 302187 Per biopsy: 2
Item: Adhesive wound dressing
Opsite Post-Op Dressing 9.5 x 8.5
Smith & Nephew 6600709 Per biopsy: 1
Item: Disposable sterile scalpel
Disposable Scalpel Sterile Blade no. 10
Swann Morton /0501 Per biopsy: 1
Item: Icepack
BlueDot Reusable Hot/Cold Pack 26.5 cm x 13.0 cm
NuCare F711 Per biopsy: 1
Item: Iodine based antiseptic
Videne antiseptic solution
Ecolab Videne 3030440 Per biopsy: q.s
Item: Lidocaine 2% w/o epinephrine
Lidocaine 2% injection 5 mL
B Braun 3558553 Per biopsy: 5 mL
Item: Non-sterile gloves
Starguard sensitive powder free nitrile gloves
Starguard SG-N-S Per biopsy: pair
Item: Sodium chloride 0.9%
Sodium chlride 0.9% w/v intravenous infusion BP
BBraun S8004-5384 Per biopsy: q.s.
Item: Stabilization solution*
RNAlater Stabilization Solution
ThermoFisher Scientific AM7020 Per biopsy: q.s
Item: Sterile forceps
Sterile forceps
Rocialle RML109-006 Per biopsy: 1
Item: Sterile gauze swabs
Non woven swabs sterile 7.5 x 7.5 cm
Prestige 1860 Per biopsy: 5
Item: Sterile gloves
Prestige soft vinyl sterile powder free medical gloves
Prestige S: P4301
M:P3302
L:P3301
Per biopsy: pair
Item: Sterile Microcentrifuge tubes
1.5 mL Sterile Microcentrifuge Tubes
StarLab I1415-5510 Per biopsy: q.s
Item: Sterile sheet
Paper plain white 90 x 90 cm
Rocialle RML 126-216 Per biopsy: 1
Item: Weighing boat
Diamond shape weigh boats
Heathrow Scientific HS1427C Per biopsy: 1
* denotes optional materials

References

  1. Beynen, A. C., Katan, M. B. Rapid sampling and long-term storage of subcutaneous adipose-tissue biopsies for determination of fatty acid composition. American Journal of Clinical Nutrition. 42 (2), 317-322 (1985).
  2. Moran, C. N., et al. Effects of diabetes family history and exercise training on the expression of adiponectin and leptin and their receptors. Metabolism. 60 (2), 206-214 (2011).
  3. Jialal, I., Devaraj, S. Subcutaneous adipose tissue biology in metabolic syndrome. Hormone Molecular Biology and Clinical Investigation. 33 (1), (2018).
  4. WHO Guidelines on hand hygiene in health care: a summary. World Health Organization Available from: https://www.who.int/gpsc/5may/tools/who_guidelines-handhygiene_summary.pdf (2009)
  5. Kettwich, L. G., et al. New device technologies for subcutaneous fat biopsy. Amyloid. 19 (2), 66-73 (2012).
  6. Preston, R. M. Aseptic technique: evidence-based approach for patient safety. British Journal of Nursing. 14 (10), 540-546 (2005).
  7. Handiyani, H., Meily Kurniawidjaja, L., Irawaty, D., Damayanti, R. The effective needle stick injury prevention strategies for nursing students in the clinical settings: a literature review. Enfermeria Clinica. 28, 167-171 (2018).
  8. Raggio, B. S., Barton, B. M., Kandil, E., Friedlander, P. L. Association of continued preoperative aspirin use and bleeding complications in patients undergoing thyroid surgery. JAMA Otolaryngology-Head & Neck Surgery. 144, 335 (2018).
  9. Cartwright, I. J., Pockley, A. G., Galloway, J. H., Greaves, M., Preston, F. E. The effects of dietary omega-3 polyunsaturated fatty acids on erythrocyte membrane phospholipids, erythrocyte deformability and blood viscosity in healthy volunteers. Atherosclerosis. 55 (3), 267-281 (1985).
  10. Hemmrich, K., Denecke, B., Paul, N. E., Hoffmeister, D., Pallua, N. RNA isolation from adipose tissue: an optimized procedure for high RNA yield and integrity. Laboratory Medicine. 41 (2), 104-106 (2010).
  11. Chachopoulos, V., et al. A technique for subcutaneous abdominal adipose tissue biopsy via a non-diathermy method. Journal of Visual Experiments: JoVE. (127), e55593 (2017).
  12. Civelek, M., et al. Genetic regulation of human adipose microRNA expression and its consequences for metabolic traits. Human Molecular Genetics. 22 (15), 3023-3037 (2013).
  13. Chen, Y. C., et al. Feeding influences adipose tissue responses to exercise in overweight men. American Journal of Physiology Endocrinology and Metabolism. 313 (1), 84-93 (2017).
  14. Mendham, A. E., et al. Exercise training results in depot-specific adaptations to adipose tissue mitochondrial function. Scientific Reports. 10 (1), 3785 (2020).
  15. Carswell, K. A., Lee, M. J., Fried, S. K. Culture of isolated human adipocytes and isolated adipose tissue. Methods in Molecular Biology. 806, 203-214 (2012).
  16. Arner, P., Andersson, D. P., Backdahl, J., Dahlman, I., Ryden, M. Weight gain and impaired glucose metabolism in women are predicted by inefficient subcutaneous fat cell lipolysis. Cell Metabolism. 28 (1), 45-54 (2018).
  17. Mutter, G., et al. Comparison of frozen and RNALater solid tissue storage methods for use in RNA expression microarrays. BMC genomics. 5, 88 (2004).
  18. Coleman, S. Structural fat grafting: more than a permanent filler. Plastic and Reconstructive Surgery. 118, 108-120 (2018).
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Cite This Article
MacGregor, K. A., Rodriguez-Sanchez, N., Barwell, N. D., Gallagher, I. J., Moran, C. N., Di Virgilio, T. G. Human Subcutaneous Adipose Tissue Sampling Using a Mini-Liposuction Technique. J. Vis. Exp. (175), e62635, doi:10.3791/62635 (2021).

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