Tidsavklart proteinindusert fluorescensforbedring med ett molekyl er en nyttig fluorescensspektroskopisk nærhetssensor som er følsom for lokale strukturelle endringer i proteiner. Her viser vi at den kan brukes til å avdekke stabile lokale konformasjoner i α-Synuclein, som ellers kalles globulært ustrukturert og ustabilt når den måles ved hjelp av FRET-linjalen med lengre rekkevidde.
Ved hjelp av spektroskopiske herskere for å spore flere konformasjoner av enkeltbiomolekyler og deres dynamikk har revolusjonert forståelsen av strukturell dynamikk og dens bidrag til biologi. Mens den FRET-baserte linjalen rapporterer om interfargeavstander i 3-10 nm-serien, rapporterer andre spektroskopiske teknikker, for eksempel proteinindusert fluorescensforbedring (PIFE), om nærheten mellom et fargestoff og en proteinoverflate i det kortere 0-3 nm-området. Uavhengig av valgmetoden, henter bruken i å måle fritt diffuserende biomolekyler en om gangen histogrammer av den eksperimentelle parameteren som gir separate sentralt fordelte underpopulasjoner av biomolekyler, hvor hver underpopulasjon representerer enten en enkelt konformasjon som forble uendret innen millisekunder, eller flere konformasjoner som interkonverterer mye raskere enn millisekunder, og dermed en gjennomsnittlig sub-ut underpopulasjon. I enkeltmolekylet FRET, hvor den rapporterte parameteren i histogrammer er den mellomfargede FRET-effektiviteten, ble et iboende uordnet protein, som α-Synuclein monomer i buffer, tidligere rapportert å vise en enkelt gjennomsnittlig underpopulasjon av flere konformasjoner som interkonverterer raskt. Mens disse tidligere funnene avhenger av 3-10 nm-serien til den FRET-baserte linjalen, forsøkte vi å sette dette proteinet på prøve ved hjelp av enkeltmolekyl pife, hvor vi sporer fluorescenslevetiden til stedsspesifikke sCy3-merkede α-Synuclein-proteiner en om gangen. Interessant nok, ved hjelp av denne kortere rekkeviddespektroskopiske nærhetssensoren, viser sCy3-merkede α-Synuclein flere livsunderpopulasjoner med tydelig forskjellige gjennomsnittlige levetider som interkonverterer i 10-100 ms. Disse resultatene viser at selv om α-Synuclein kan være uorden globalt, oppnår det likevel stabile lokale strukturer. Oppsummert fremhever vi i dette arbeidet fordelen ved å bruke forskjellige spektroskopiske nærhetssensorer som sporer lokale eller globale strukturelle endringer en biomolekyl om gangen.
I løpet av de siste to tiårene har fluorescensbaserte metoder med ett molekyl blitt et kraftig verktøy for måling av biomolekyler1,2, som undersøker hvordan forskjellige biomolekylære parametere distribueres, samt hvordan de dynamisk interkonverterer mellom forskjellige underpopulasjoner av disse parametrene ved sub-millisekunders oppløsning3,4,5. Parametrene i disse teknikkene inkluderer energioverføringseffektiviteten i FRET-målinger 6,7, fluorescensanisotropi8,9, fluorescens kvanteutbytter og levetider10,11, som en funksjon av forskjellige fluorescens slukke12 eller forbedring13 mekanismer. En av disse mekanismene, bedre kjent som proteinindusert fluorescensforbedring (PIFE)14 introduserer forbedringen av fluorescens kvanteutbytte og levetid som en funksjon av sterisk obstruksjon til fri isomerisering av fluoroforen når den er i spent tilstand, forårsaket av proteinoverflater i nærheten avfargestoffet 14,15,16,17,18,19 . Både FRET og PIFE regnes som spektroskopiske linjaler eller nærhetssensorer siden deres målte parameter er direkte knyttet til et romlig mål innenfor den merkede biomolekylen under måling. Mens FRET-effektiviteten er relatert til avstanden mellom et par fargestoffer innenfor et område på 3-10 nm20, øker PIFE-sporene i fluorescens kvanteutbytter eller levetider relatert til avstanden mellom fargestoffet og en overflate av et nærliggende protein i området 0-3 nm19.
Enkeltmolekyl fret har blitt mye brukt for å gi strukturell innsikt i mange forskjellige proteinsystemer, inkludert iboende uordnede proteiner (IDPs)21, for eksempel α-Synuclein (α-Syn)22. α-Syn kan danne bestilte strukturer etter binding til forskjellige biomolekyler og under forskjellige forhold23,24,25,26,27,28,29,30. Men når den er ubundet, er α-Syn monomer preget av høy konformasjons heterogenitet med raskt mellomkonverterende konformasjoner31,32.
Konformasjonene til α-Syn har blitt studert tidligere ved hjelp av ulike teknikker som hjelper til med å identifisere konformasjonsdynamikk i slike svært heterogene og dynamiske proteinsystemer33,34,35,36,37,38,39. Interessant, enkeltmolekyl FRET (smFRET) målinger av α-Syn i buffer rapporterte en enkelt FRET-populasjon39,40 som er et resultat av tidsgjennomsnitt av konformasjoner dynamisk interkonverterer til tider mye raskere enn den typiske diffusjonstiden til α-Syn gjennom det konfokale stedet (ganger så raskt som få mikrosekunder og enda raskere enn det, i forhold til typiske millisekunder diffusjonstider) ,40 41. Ved hjelp av en FRET spektroskopisk linjal med 3-10 nm avstandsfølsomhet rapporterer imidlertid noen ganger bare om generelle strukturelle endringer i et lite protein som α-Syn. Enkeltmolekylmålinger ved hjelp av spektroskopiske nærhetssensorer med kortere avstandsfølsomhet har potensial til å rapportere om dynamikken i lokale strukturer. Her utfører vi pife-målinger av α-Syn og identifiserer ulike underpopulasjoner av fluorescenslevetider som kartlegger ulike lokale strukturer med overganger mellom dem så sakte som 100 ms. Dette arbeidet oppsummerer tidsavklarte smPIFE-målinger av fritt diffuserende α-Syn-molekyler en om gangen, i buffer og når de er bundet til SDS-baserte membraner som en kortdistanse enkeltmolekylspektroskopisk nærhetssensor.
Omfattende biokjemiske og biofysiske studier ble utført for å studere de strukturelle egenskapene til α-Syn og dens uordnede natur33,34,35,36,37,38. Flere arbeider har allerede brukt fritt diffuserende smFRET for å undersøke den intramolekylære dynamikken i α-Syn monomer fri for binding. Disse verkene rapporterte den h…
The authors have nothing to disclose.
PT-t7 plasmidkodingen A56C α-Syn mutant ble gitt til oss som en gave fra Dr. Asaf Grupi, Dr. Dan Amir og Dr. Elisha Haas. Denne artikkelen ble støttet av National Institutes of Health (NIH, gi R01 GM130942 til E.L. som en subaward), Israel Science Foundation (tilskudd 3565/20 i KillCorona – Curbing Coronavirus Research Program), Milner Fund og Det hebraiske universitetet i Jerusalem (oppstartsmidler).
Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Units | Merc | C7715 | cutoff: 100 kDa |
ammonium sulfate | Sigma-Aldrich | A4418 | |
BSA | Sigma-Aldrich | A9647 | |
cysteamine | Sigma-Aldrich | 30070 | |
dialysis bags – MEGA GeBaFlex-tube | Gene Bio-Application | MEGA320 | |
dithiothreitol (DTT) | Sigma-Aldrich | 43815 | |
ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | Sigma-Aldrich | E5134 | |
Fast SeeBand staining solution | Gene Bio-Application | SB050 | |
Glycine | Sigma-Aldrich | 50046 | |
D-Glucose | Sigma-Aldrich | G7021 | |
HEPES | Sigma-Aldrich | 54457 | |
HiTrap Desalting 5 mL | Sigma-Aldrich | GE17-1408 | |
6-hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic acid (TROLOX) | Sigma-Aldrich | 238813 | |
isopropyl β-d-1-thiogalactopyranoside (IPTG) | Sigma-Aldrich | I5502 | |
LB broth | Sigma-Aldrich | L3152 | |
Magnesium chloride | Sigma-Aldrich | 63068 | |
MonoQ column | Sigma-Aldrich | 54807 | |
protein LoBind tube | Sigma-Aldrich | EP0030108094 | 0.5 mL |
Rinse a µ-slide 18 | Ibidi | 81816 | |
SDS | Sigma-Aldrich | 75746 | |
Sodium acetate | Sigma-Aldrich | S2889 | |
Sodium hydroxide | Sigma-Aldrich | S8045 | |
Sodium phosphate monobasic monohydrate | Sigma-Aldrich | 71507 | |
Sterile Cell spreaders, Drigalski spatulas | mini-plast | 815-004-05-001 | |
streptomycin sulfate | Sigma-Aldrich | S9137 | |
sulfo-Cy3 maleimide | abcam | ab146493 | |
Tris(2-carboxyethyl)phosphine hydrochloride (TCEP) | Sigma-Aldrich | 75259 | |
Tris-HCl | Sigma-Aldrich | 93363 | |
Tryptone | Sigma-Aldrich | T7293 | |
Yeast Extract | Sigma-Aldrich | Y1625 |