Summary

파킨슨 병의 일방적 인 6-OHDA 병변 쥐 모델에서 L-DOPA 유발 운동 이상증 평가

Published: October 04, 2021
doi:

Summary

L-DOPA 유발 운동 이상증의 설치류 모델은 L-DOPA의 반복 투여로 인해 나타나는 증상을 완화하거나 발달을 약화시키기위한 치료 적 개입을 식별하는 데 귀중한 도구입니다. 이 프로토콜은 파킨슨 병의 일방적 인 6-OHDA 병변 쥐 모델에서 운동 장애와 같은 움직임을 유도하고 분석하는 방법을 보여줍니다.

Abstract

L-DOPA 유발 운동 이상증 (LID)은 파킨슨 병 (PD) 환자에게 장기간 L-DOPA 투여로 인해 발생하는 운동 합병증을 나타냅니다. 클리닉에서 관찰되는 가장 흔한 패턴은 choreiform, 근긴장 이상 및 탄도 운동의 임상 증상으로 구성된 피크 용량 운동 이상증입니다. PD의 6-하이드록시도파민(6-OHDA) 래트 모델은 LID의 여러 특성을 모방합니다. 반복적인 L-DOPA 투여 후, 6-OHDA-병변을 가진 랫트는 이운동성 유사 움직임(예를 들어, 비정상적인 비자발적 움직임, AIMs)을 나타낸다. 이 프로토콜은 흑색 선조체 경로에서 90%-95% 도파민 고갈을 보이는 6-OHDA 병변 쥐에서 AIM을 유도하고 분석하는 방법을 보여줍니다. L-DOPA (5 mg / kg, 벤세 라지드 12.5 mg / kg과 병용)의 반복 투여 (3 주)는 AIM 발생을 유도 할 수 있습니다. 시간 과정 분석은 30-90 분 (피크 용량 운동 이상증)에서 AIM의 상당한 증가를 보여줍니다. LID의 설치류 모델은 효과적인 항이동성 중재를 확인하는 중요한 전임상 도구입니다.

Introduction

도파민 전구체 L-3,4- 디 히드 록시 페닐알라닌 (L-DOPA)은 파킨슨 병 (PD)의 운동 증상에 가장 효과적인 치료법입니다 1. L-DOPA 요법은 PD와 관련된 운동 증상을 개선할 수 있지만 시간이 지남에 따라 효과가 떨어집니다. “마모 변동” 또는 “용량 종료 악화”와 같은 운동 변동은 단일 L-DOPA 용량의 효과 단축 기간으로 임상적으로나타납니다2. 다른 경우에는 임상 증상이 느린 비틀림 운동과 비정상적인 자세 (근긴장 이상)3 로 구성되며 도파민 수치가 낮을 때 발생합니다 (오프 기간 근긴장 이상)4. 반면에 L-DOPA 유발 운동 이상증 (LID)은 혈장과 뇌의 도파민 수치가 높을 때 나타납니다5.

LID는 무도병, 근긴장 이상 및 탄도6 운동과 같은 운동 합병증을 포함하는 쇠약해지는 부작용을 생성합니다. 일단 확립되면 LID는 모든 L-DOPA 투여 후에 발생합니다. 운동 합병증은 5 년 동안 L-DOPA 치료를받는 PD 환자의 40 % -50 %에서 발생하며 발병률은 수년에 걸쳐 증가합니다7. PD 환자에서 LID의 발달에 관여하는 병태생리학적 기전이 아직 완전히 밝혀지지는 않았지만, 도파민성 탈신경화, 박동성 L-DOPA 투여, 선조체 단백질 및 유전자의 다운스트림 변화, 비도파민 전달 시스템의 이상은 이러한 원치 않는 부작용의 발생에 기여하는 인자이다 6,8,9,10.

신경독 6- 하이드 록시 도파민 (6-OHDA)은 설치류 11,12,13,14에서 PD를 연구하기위한 잘 특성화 된 도구입니다. 6-OHDA는 혈액 뇌 장벽을 통과하지 않기 때문에 흑색 선조체 경로에 직접 주사해야합니다. 6-OHDA-유도된 도파민성 고갈은 농도- 및 부위-의존적이다15. 내측 전뇌 다발(MFB)에서 6-OHDA를 일방적으로 투여하면 설치류16,17,18,19에서 심각한(>90%) 흑색선체 손상이 발생할 수 있습니다. 중증 일방적 인 6-OHDA 병변 설치류에 L-DOPA를 만성적으로 투여하면 비정상적인 비자발적 운동 (AIM)이라고하는 운동 이상과 유사한 움직임이 나타납니다. 설치류에서의 운동 장애-유사 운동은PD 환자에서 LID와 관련된 유사한 분자적, 기능적 및 약리학적 메커니즘을 공유한다5. 따라서, 6-OHDA 병변 래트20 및 마우스21은 LID를 연구하기 위한 귀중한 전임상 모델이다. L-DOPA (5-20 mg / kg)의 치료 용량으로 만성적으로 (7-21 일) 치료했을 때, 일방적으로 6-OHDA 병변을 입은 쥐와 마우스는 병변과 반대쪽의 앞다리, 몸통 및 구강 안면 근육에 영향을 미치는 AIM의 점진적인 발달을 보여줍니다 17,18,19,20,22,23,24 . 이러한 움직임은 PD 환자25에서 L-DOPA 유도 피크 용량 운동 이상증과 유사한 시간 코스에서 나타나며과 운동 운동 및 근긴장 이상증을 특징으로합니다5. AIM은 일반적으로 심각도(예: 특정 AIM이 있는 경우)와 진폭(예: 각 움직임의 진폭으로 특징지어짐)5,23,25에 따라 점수가 매겨집니다.

LID의 6-OHDA 병변 설치류 모델은 얼굴 유효성을 나타냅니다 (즉, 모델은 인간 상태와 유사한 몇 가지 특성을 가짐) 5,11,26,27,28. PD 환자에서 발생하는 것과 유사한 설치류 AIM은 과운동(앞다리 및 구강설) 및 근긴장(축 방향) 운동29으로 간주되며 피크 선량 운동 이상증을 모방합니다. 분자 및 기능적 수준에서 설치류 모델은 FosB / ΔFosB 19,26,30,31,32,33 및 세로토닌 수송 체 (SERT) 34,35의 상향 조절과 같은 PD 환자 5와 많은 병리학 적 특성을 공유합니다. . 예측 타당성과 관련하여, PD 환자에서 LID를 감소시키는 약물 (예를 들어, N-메틸-D-아스파르테이트 (NMDA) 수용체 길항제 아만타딘)은 설치류 모델 22,36,37,38,39에서 항이동성 효능을 나타낸다.

설치류 AIM 등급 척도는 머리, 목 및 몸통에 영향을 미치는 AIM(축 방향 AIM), 과운동 앞다리 움직임(사지 AIM) 및 운동성 유사 구강 언어 운동(구강 언어 AIM)을 포함하는 4가지 AIM 하위 유형을 기반으로 만들어졌습니다. 반대쪽 회전 (기관차 AIMs)이 일방적으로 병변 된 설치류 20,22,23,25,40에도 존재하지만, LIDS 22,37,41의 특정 측정을 나타내지 않을 수 있기 때문에 운동 장애와 같은 운동으로 점수가 매겨지지 않았습니다.

여기에서는 PD의 중증 (>90 %) 일방적 인 6-OHDA 병변 쥐 모델에서 운동 장애 유사 운동 (축 방향, 사지 및 구강 언어 AIMs)을 유도하고 분석하는 방법을 설명합니다. 우리는 이전 문헌과 실험실 전문 지식을 기반으로 프로토콜을 구성했습니다.

Protocol

모든 실험은 Ribeirão Preto의 철학, 과학 및 편지 학부 윤리위원회 (CEUA/FFCLRP 18.5.35.59.5)에 따라 수행되었습니다. 1. 6-OHDA 병변 실험 시작 (6 주)에 체중이 200-250g 인 Sprague-Dawley 수컷 쥐를 사용하십시오. 표준 실험실 조건 (12:12 h 명암 주기, 06:00 h에 조명 켜짐, 온도 조절 시설 (22-24 ° C))에서 동물 (케이지 당 2-3 마리)을 수용하고 음식과 물을 자유롭게 사용할</em…

Representative Results

쥐에서 관찰된 AIMs 패턴은 인간 및 비인간 영장류에서 관찰된 패턴에 비해 더 간단하고 제한적이지만, 이 모델은 만성 L-DOPA 투여에 의해 유도된 과운동 및 근긴장유사 운동을 모두 재현합니다. 여기에서는 3 주 (월요일부터 금요일) 동안 L-DOPA (벤세 라지드 12.5mg / kg과 결합 된 5mg / kg)로 만성적으로 처리 된 일방적 인 6-OHDA 병변 쥐 그룹 (n = 10)에서 수집 한 데이터를 제시합니다. 그림 …

Discussion

이 프로토콜은 MFB에서 6-OHDA의 일방적 미세주입에 의해 유도된 PD의 래트 모델에서 AIMs를 유도하고 분석하는 방법을 보여줍니다. 저용량의 L-DOPA (5mg / kg, 벤세 라지드 12.5mg / kg과 병용)를 매일 만성적으로 투여하면 치료 3 주 동안 AIM이 발생했습니다. 시간적 분석은 AIM의 현저한 증가를 나타냈으며, L-DOPA 투여 후 30분에서 90분 사이에 피크 용량 운동 이상증이 관찰됩니다. AIM은 축, 사지 및 구강 언어 ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 연구는 상파울루 연구 재단 (FAPESP, 보조금 2017/00003-0)의 지원을 받았습니다. 고등 교육 인력 향상을 위한 조정(CAPES)에 감사드립니다. Anthony R. West 박사, Heinz Steiner 박사, Kuei Y. Tseng 박사의 지원과 멘토링에 감사드립니다.

Materials

6-hydroxydopamine hydrobromide Sigma-Aldrich, USA H6507 Neurotoxin that produces degeneration of catecholaminergic terminals
Benzerazide hydrochloride Sigma B7283 Peripheral dopa-decarboxylase inhibitor
Camera Bullet IR Turbo HD (HD-TVI)  2.8mm B HIKVISION DS-2CE16C0T-IRP Camera used to record all behavior
Imipramine hidrochloride Alfa Aesar J63723 Norepinephrine transporter inhibitor (NET) used to protect noradrenergic neurons from 6-OHDA
Ketamine hydrochloride Ceva Animal Health Anesthesia for surgical intervention
L-3,4-dihydroxyphenylalanine (L-DOPA) methyl ester (hydrochloride) Cayman Chemical Company 16149 Dopamine precursor
Mirrors Used to observe the behavior of animals during experiments in all directions
Needles 0.30 x 13 mm PrecisionGlide Needles used to inject drugs
Sodium chloride (NaCl) Samtec Salt
Syringes 1 ml Sterile BD Plastipak Syringes used to inject drugs
Transparent cylinders Used to record animal behavior during experiments
Xylazine hydrochloride Ceva Animal Health Sedative, analgesic and muscle relaxant for surgical intervention

References

  1. Jenner, P. Molecular mechanisms of L-DOPA-induced dyskinesia. Nature Reviews. Neuroscience. 9 (9), 665-677 (2008).
  2. Nutt, J. G. Levodopa-induced dyskinesia: review, observations, and speculations. Neurology. 40 (2), 340-345 (1990).
  3. Luquin, M. R., Scipioni, O., Vaamonde, J., Gershanik, O., Obeso, J. A. Levodopa-induced dyskinesias in Parkinson’s disease: clinical and pharmacological classification. Movement Disorders: Official Journal of the Movement Disorder Society. 7 (2), 117-124 (1992).
  4. Fabbrini, G., Brotchie, J. M., Grandas, F., Nomoto, M., Goetz, C. G. Levodopa-induced dyskinesias. Movement Disorders: Official Journal of the Movement Disorder Society. 22 (10), 1379 (2007).
  5. Cenci, M. A., Crossman, A. R. Animal models of l-dopa-induced dyskinesia in Parkinson’s disease. Movement Disorders: Official Journal of the Movement Disorder Society. 33 (6), 889-899 (2018).
  6. Bastide, M. F., et al. Pathophysiology of L-dopa-induced motor and non-motor complications in Parkinson’s disease. Progress in Neurobiology. 132, 96-168 (2015).
  7. Manson, A., Stirpe, P., Schrag, A. Levodopa-induced-dyskinesias clinical features, incidence, risk factors, management and impact on quality of life. Journal of Parkinson’s Disease. 2 (3), 189-198 (2012).
  8. Grandas, F., Galiano, M. L., Tabernero, C. Risk factors for levodopa-induced dyskinesias in Parkinson’s disease. Journal of Neurology. 246 (12), 1127-1133 (1999).
  9. Schrag, A., Quinn, N. Dyskinesias and motor fluctuations in Parkinson’s disease. A community-based study. Brain: A Journal of Neurology. 123, 2297-2305 (2000).
  10. Bezard, E., Brotchie, J. M., Gross, C. E. Pathophysiology of levodopa-induced dyskinesia: potential for new therapies. Nature Reviews. Neuroscience. 2 (8), 577-588 (2001).
  11. Tronci, E., Shin, E., Björklund, A., Carta, M. Amphetamine-induced rotation and L-DOPA-induced dyskinesia in the rat 6-OHDA model: a correlation study. Neuroscience Research. 73 (2), 168-172 (2012).
  12. Duty, S., Jenner, P. Animal models of Parkinson’s disease: a source of novel treatments and clues to the cause of the disease. British Journal of Pharmacology. 164 (4), 1357-1391 (2011).
  13. Ungerstedt, U. 6-Hydroxy-dopamine induced degeneration of central monoamine neurons. European Journal of Pharmacology. 5 (1), 107-110 (1968).
  14. Ungerstedt, U. Postsynaptic supersensitivity after 6-hydroxy-dopamine induced degeneration of the nigro-striatal dopamine system. Acta Physiologica Scandinavica. Supplementum. 367, 69-93 (1971).
  15. Kirik, D., Rosenblad, C., Bjorklund, A. Characterization of behavioral and neurodegenerative changes following partial lesions of the nigrostriatal dopamine system induced by intrastriatal 6-hydroxydopamine in the rat. Experimental Neurology. 152, 259-277 (1998).
  16. Zahm, D. S. Compartments in rat dorsal and ventral striatum revealed following injection of 6-hydroxydopamine into the ventral mesencephalon. Brain Research. 552 (1), 164-169 (1991).
  17. Padovan-Neto, F. E., Echeverry, M. B., Tumas, V., Del-Bel, E. A. Nitric oxide synthase inhibition attenuates L-DOPA-induced dyskinesias in a rodent model of Parkinson’s disease. 신경과학. 159 (3), 927-935 (2009).
  18. Padovan-Neto, F. E., et al. Antidyskinetic effect of the neuronal nitric oxide synthase inhibitor is linked to decrease of FosB/deltaFosB expression. Neuroscience Letters. 541, 126-131 (2013).
  19. Padovan-Neto, F. E., Cavalcanti-Kiwiatkoviski, R., Carolino, R. O., Anselmo-Franci, J., Del Bel, E. Effects of prolonged neuronal nitric oxide synthase inhibition on the development and expression of L-DOPA-induced dyskinesia in 6-OHDA-lesioned rats. Neuropharmacology. 89, 87-99 (2015).
  20. Winkler, C., Kirik, D., Björklund, A., Cenci, M. A. L-DOPA-induced dyskinesia in the intrastriatal 6-hydroxydopamine model of parkinson’s disease: relation to motor and cellular parameters of nigrostriatal function. Neurobiology of Disease. 10 (2), 165-186 (2002).
  21. Francardo, V., et al. Impact of the lesion procedure on the profiles of motor impairment and molecular responsiveness to l-DOPA in the 6-hydroxydopamine mouse model of Parkinson’s disease. Neurobiology of Disease. 42, 327-340 (2011).
  22. Lundblad, M., et al. Pharmacological validation of behavioural measures of akinesia and dyskinesia in a rat model of Parkinson’s disease. The European Journal of Neuroscience. 15 (1), 120-132 (2002).
  23. Cenci, M. A., Lee, C. S., Björklund, A. L-DOPA-induced dyskinesia in the rat is associated with striatal overexpression of prodynorphin- and glutamic acid decarboxylase mRNA. The European Journal of Neuroscience. 10 (8), 2694-2706 (1998).
  24. Henry, B., Crossman, A. R., Brotchie, J. M. Characterization of enhanced behavioral responses to L-DOPA following repeated administration in the 6-hydroxydopamine-lesioned rat model of Parkinson’s disease. Experimental Neurology. 151 (2), 334-342 (1998).
  25. Lee, C. S., Cenci, M. A., Schulzer, M., Björklund, A. Embryonic ventral mesencephalic grafts improve levodopa-induced dyskinesia in a rat model of Parkinson’s disease. Brain: A Journal of Neurology. 123, 1365-1379 (2000).
  26. Andersson, M., Hilbertson, A., Cenci, M. A. Striatal fosB expression is causally linked with l-DOPA-induced abnormal involuntary movements and the associated upregulation of striatal prodynorphin mRNA in a rat model of Parkinson’s disease. Neurobiology of Disease. 6 (6), 461-474 (1999).
  27. Lindgren, H. S., Rylander, D., Ohlin, K. E., Lundblad, M., Cenci, M. A. The “motor complication syndrome” in rats with 6-OHDA lesions treated chronically with L-DOPA: relation to dose and route of administration. Behavioural Brain Research. 177 (1), 150-159 (2007).
  28. Lane, E. L., Dunnett, S. . Animal Models of Movement Disorders: volume I, Neuromethods. 61, (2011).
  29. Carlsson, T., Carta, M., Winkler, C., Björklund, A., Kirik, D. Serotonin neuron transplants exacerbate l-DOPA-induced dyskinesias in a rat model of Parkinson’s disease. Journal of Neuroscience. 27 (30), 8011-8022 (2007).
  30. Lundblad, M., Picconi, B., Lindgren, H., Cenci, M. A. A model of L-DOPA-induced dyskinesia in 6-hydroxydopamine lesioned mice: relation to motor and cellular parameters of nigrostriatal function. Neurobiology of Disease. 16 (1), 110-123 (2004).
  31. Fasano, S., et al. Inhibition of Ras-guanine nucleotide-releasing factor 1 (Ras-GRF1) signaling in the striatum reverts motor symptoms associated with L-dopa-induced dyskinesia. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (50), 21824-21829 (2010).
  32. Berton, O., et al. Striatal overexpression of DeltaJunD resets L-DOPA-induced dyskinesia in a primate model of Parkinson disease. Biological Psychiatry. 66 (6), 554-561 (2009).
  33. Lindgren, H. S., et al. Putaminal upregulation of FosB/ΔFosB-like immunoreactivity in Parkinson’s disease patients with dyskinesia. Journal of Parkinson’s Disease. 1 (4), 347-357 (2011).
  34. Rylander, D., et al. Maladaptive plasticity of serotonin axon terminals in levodopa-induced dyskinesia. Annals of Neurology. 68 (5), 619-628 (2010).
  35. Smith, R., et al. The role of pallidal serotonergic function in Parkinson’s disease dyskinesias: a positron emission tomography study. Neurobiology of Aging. 36 (4), 1736-1742 (2015).
  36. Lundblad, M., et al. Pharmacological validation of a mouse model of l-DOPA-induced dyskinesia. Experimental Neurology. 194 (1), 66-75 (2005).
  37. Dekundy, A., Lundblad, M., Danysz, W., Cenci, M. A. Modulation of L-DOPA-induced abnormal involuntary movements by clinically tested compounds: further validation of the rat dyskinesia model. Behavioural Brain Research. 179 (1), 76-89 (2007).
  38. Blanchet, P. J., Konitsiotis, S., Chase, T. N. Amantadine reduces levodopa-induced dyskinesias in parkinsonian monkeys. Movement Disorders: Official Journal of the Movement Disorder Society. 13 (5), 798-802 (1998).
  39. Verhagen Metman, I., et al. Amantadine as treatment for dyskinesias and motor fluctuations in Parkinson’s disease. Neurology. 50 (5), 1323-1326 (1998).
  40. Cenci, M. A., Lundblad, M. Ratings of L-DOPA-induced dyskinesia in the unilateral 6-OHDA lesion model of Parkinson’s disease in rats and mice. Current Protocols in Neuroscience. , 25 (2007).
  41. Dupre, K. B., et al. Effects of coincident 5- HT1A receptor stimulation and NMDA receptor antagonism on L-DOPA-induced dyskinesia and rotational behaviors in the hemi-parkinsonian rat. Psychopharmacology (Berl). 199 (1), 99-108 (2008).
  42. Guimarães, P. R., Bariotto-dos-Santos, K., Ribeiro, D. L., Padovan-Neto, F. E. The 6-hydroxydopamine (6-OHDA) rat model of Parkinson’s disease. Journal of Visualized Experiments: JoVE. , (2021).
  43. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (1998).
  44. Tseng, K. Y., et al. Inhibition of striatal soluble guanylyl cyclase-cGMP signaling reverses basal ganglia dysfunction and akinesia in experimental parkinsonism. PloS One. 6 (11), 27187 (2011).
  45. Padovan-Neto, F. E., et al. Selective regulation of 5-HT1B serotonin receptor expression in the striatum by dopamine depletion and repeated L-DOPA treatment: Relationship to L-DOPA-induced dyskinesias. Molecular Neurobiology. 57 (2), 736-751 (2020).
  46. Olsson, M., Nikkhah, G., Bentlage, C., Bjorklund, A. Forelimb akinesia in the rat Parkinson model: Differential effects of dopamine agonists and nigral transplants as assessed by a new stepping test. Journal of Neuroscience. 15, 3863-3875 (1995).
  47. Chang, J. W., Wachtel, S. R., Young, D., Kang, U. J. Biochemical and anatomical characterization of forepaw adjusting steps in rat models of Parkinson’s disease lesions. 신경과학. 88, 617-628 (1995).
  48. Jayasinghe, V. R., Flores-Barrera, E., West, A. R., Tseng, K. Y. Frequency-dependent corticostriatal disinhibition resulting from chronic dopamine depletion: Role of local striatal cGMP and GABAAR signaling. Cerebral Cortex. 27, 625-634 (2017).
  49. Picconi, B., et al. Loss of bidirectional striatal synaptic plasticity in L-DOPA-induced dyskinesia. Nature Neuroscience. 6 (5), 501-506 (2003).
  50. Carta, M., et al. Role of striatal L-DOPA in the production of dyskinesia in 6-hydroxydopamine lesioned rats. Journal of Neurochemistry. 96 (6), 1718-1727 (2006).
  51. Westin, J. E., Andersson, M., Lundblad, M., Cenci, M. A. Persistent changes in striatal gene expression induced by long-term L-DOPA treatment in a rat model of Parkinson’s disease. The European Journal of Neuroscience. 14 (7), 1171-1176 (2001).
  52. Bariotto-Dos-Santos, K., et al. Repurposing an established drug: an emerging role for methylene blue in L-DOPA-induced dyskinesia. The European Journal of Neuroscience. 49 (6), 869-882 (2018).
  53. Lindgren, H. S., Lane, E. L., Lane, E., Dunnett, S. Rodent Models of l-DOPA-Induced Dyskinesia. Animal Models of Movement Disorders. Neuromethods. 61, (2011).
  54. Doucet, J., et al. Drug-drug interactions related to hospital admissions in older adults: A prospective study of 1000 patients. Journal of the American Geriatrics Society. 44, 944-948 (1996).
  55. Ohlin, K. E., et al. Vascular endothelial growth factor is upregulated by L-dopa in the parkinsonian brain: implications for the development of dyskinesia. Brain: A Journal of Neurology. 134, 2339-2357 (2011).
  56. Jourdain, V. A., et al. Increased putamen hypercapnic vasoreactivity in levodopa-induced dyskinesia. JCI insight. 2 (20), 96411 (2017).
  57. Thiele, S. L., et al. Generation of a model of l-DOPA-induced dyskinesia in two different mouse strains. Journal of Neuroscience Methods. 197 (2), 193-208 (2011).
  58. Dos-Santos-Pereira, M., et al. Contributive role of TNF-α to L-DOPA-induced dyskinesia in a unilateral 6-OHDA lesion model of Parkinson’s disease. Frontiers in Pharmacology. 11, 617085 (2021).
  59. Cenci, M. A., Ohlin, K. E., Odin, P. Current options and future possibilities for the treatment of dyskinesia and motor fluctuations in Parkinson’s disease. CNS & Neurological Disorders Drug Targets. 10 (6), 670-684 (2011).
  60. Cenci, M. A. Presynaptic mechanisms of l-DOPA-induced dyskinesia: The findings, the debate, and the therapeutic implications. Frontiers in Neurology. 5, 242 (2014).
  61. Langston, J. W., Quik, M., Petzinger, G., Jakowec, M., Di Monte, D. A. Investigating levodopa-induced dyskinesias in the parkinsonian primate. Annals of Neurology. 47 (4), 79-89 (2000).
  62. Chase, T. N. Levodopa therapy: consequences of the nonphysiologic replacement of dopamine. Neurology. 50 (5), 17-25 (1998).

Play Video

Cite This Article
Bariotto-dos-Santos, K., Ribeiro, D. L., Guimarães, R. P., Padovan-Neto, F. E. Rating L-DOPA-Induced Dyskinesias in the Unilaterally 6-OHDA-Lesioned Rat Model of Parkinson’s Disease. J. Vis. Exp. (176), e62924, doi:10.3791/62924 (2021).

View Video