Summary

Djup kärlavbildning i ögat med flödesförbättrat ultraljud

Published: October 04, 2021
doi:

Summary

Vi presenterar en icke-invasiv ultraljud teknik för att generera tredimensionella angiografier i ögat utan användning av kontrastmedel.

Abstract

Näthinnan i ögat är en av de mest energikrävande vävnaderna i kroppen och kräver därför hög syretillförsel från en rik blodtillförsel. Kapillär lamina av choroid linjer den yttre ytan av näthinnan och är den dominerande källan till syre i de flesta ryggradsdjur näthinnor. Denna vaskulär säng är dock utmanande att avbilda med traditionella optiska tekniker på grund av sin position bakom den mycket ljusabsorberande näthinnan. Här beskriver vi en högfrekvent ultraljud teknik med efterföljande flöde-förbättring att bild djupa vaskulär sängar (0,5-3 cm) av ögat med en hög spatiotemporal upplösning. Denna icke-invasiva metod fungerar bra hos arter med nukleära röda blodkroppar (icke-däggdjurs- och fosterdjurmodeller). Det möjliggör generering av icke-invasiva tredimensionella angiografier utan användning av kontrastmedel, och det är oberoende av blodflödesvinklar med högre känslighet än Doppler-baserade ultraljudsavbildningstekniker.

Introduction

Den höga ämnesomsättningen på ryggradsdjuret näthinnan medför en inneboende kompromiss mellan två kontrasterande behov; höga blodflöden och en lätt väg utan blodkärl. För att undvika synstörningar av perfusing röda blodkroppar får näthinnan hos alla ryggradsdjur syre och näringsämnen via ett ark kapillärer bakom fotoreceptorerna, choriocapillaris1,2,3. Denna enda källa till näringsämnen och syre medför dock en diffusionsbegränsning för tjockleken på näthinnan4,5, så många visuellt aktiva arter har en mängd utarbetade kärlnätverk för att ge ytterligare blodtillförsel till detta metaboliskt aktiva organ6. Dessa kärlbäddar inkluderar blodkärl som perfusar de inre näthinnans lager hos däggdjur och vissa fiskar4,7,8,9,10, blodkärl på den inre (ljusvända) sidan av näthinnan som finns i många fiskar, reptiler och fåglar4,11,12,13 och motströms vaskulär arrangemang av fisken choroid, choroid rete mirabil, som möjliggör generering av super-atmosfäriska syre partiella tryck14,15,16,17,18,19,20. Trots att dessa ytterligare icke-choroidal vägar för retinal näringstillförsel spelar en viktig roll för att driva de metaboliska kraven för överlägsen vision4, är den tredimensionella anatomin av dessa vaskulär strukturer dåligt förstådd, vilket begränsar vår förståelse av ryggradsdjurets morfologiska utveckling.

Traditionellt har retinal blodtillförsel studerats med hjälp av optiska tekniker, såsom fundus oftalmoskopi. Denna kategori av tekniker ger hög genomströmning icke-destruktiva information om icke-choroidal blodkärl anatomi i högupplösta21 och används därför lätt i klinisk diagnos av avvikelser i retinal fartyg struktur22. Näthinnepigmentet epitel absorberar dock det överförda ljuset och begränsar synfältet i dessa optiska tekniker, vilket ger minskad information om choroidal struktur och funktion utan användning av kontrastmedel21. Liknande djupbegränsningar har erfarenhet av optisk koherenstomografi (OCT). Denna teknik kan generera högupplösta fundus angiographies med hjälp av ljusvågor på den tekniska kostnaden för djup penetration23, medan det förbättrade djupet imaging OCT kan visualisera choroid på bekostnad av retinal imaging kvalitet24. Magnetisk resonans imaging övervinner de optiska begränsningarna av oftalmoskopi och OCT och kan kartlägga vaskulär lager i näthinnan, om än med en låg upplösning25. Histologi och mikrokompatibel tomografi (μCT) upprätthåller den höga upplösningen av de optiska teknikerna och ger information om helögd vaskulär morfologi4, men båda teknikerna kräver okulär provtagning och är därför inte möjliga i kliniken eller sällsynta eller utrotningshotade arter. För att övervinna några av begränsningarna i dessa etablerade näthinneavbildningstekniker presenterar studien här ett ultraljudsprotokoll på sövda djur, där blodrörelser kartläggs i silico på en serie lika fördelade tvådimensionella ultraljudsundersökningar som spänner över ett helt öga genom att tillämpa en jämförbar teknik som tidigare beskrivits för embryonal och kardiovaskulär avbildning26,27, 28 och i OCT angiografi29. Detta tillvägagångssätt möjliggör generering av icke-invasiva tredimensionella djup okulär angiografier utan att använda ett kontrastmedel och öppnar nya vägar för kartläggning av blodflödesfördelningen inom ögat över arter.

Protocol

Protokollet nedan utfördes med tillstånd från den danska inspektionen för djurförsök inom det danska ministeriet för livsmedel, jordbruk och fiske, Danska veterinär- och livsmedelsförvaltningen (tillståndsnummer 2016-15-0201-00835). 1. Anestesi och ultraljud medium Bedöva forskningsdjuret.OBS: Typ och dos av lämplig anestesi är mycket artberoende. I allmänhet är nedsänkningsbaserade anestetika som MS-222 (etyl 3-aminobensoatmetanol), bensokain (etyl 4-aminobensoat…

Representative Results

Den flödesförbättrade ultraljudstekniken för att avbilda kärlbäddar i ögat kan appliceras i en rad olika arter och har för närvarande använts i 46 olika ryggradsdjur (figur 1, tabell 1). Förekomsten av nukleära röda blodkroppar i ryggradsdjur som inte är vuxna och däggdjur ger positiv kontrast till strömmande blod jämfört med statisk vävnad i cine-inspelningar (Kompletterande fil 2). Men när den analyseras bildruta för bildruta är den t…

Discussion

Vaskulär bildbehandling med hjälp av flödesförbättrad ultraljud ger en ny metod för icke-invasiv avbildning av ögats vaskulatur som erbjuder flera fördelar jämfört med nuvarande tekniker men har sina inneboende begränsningar. Den främsta fördelen med flödesförbättrad ultraljud är förmågan att generera okulära angiografier med ett skärpedjup som överstiger näthinnepigmentet epitel, vilket begränsar skärpedjupet i optiska tekniker. Vid ultraljudsavbildning bestäms rumslig upplösning och skärpedj…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete har fått finansiering från Carlsbergstiftelsen (CF17-0778; CF18-0658), Lundbeckstiftelsen (R324-2019-1470; R346-2020-1210), Veluxstiftelserna (00022458), A.P. Møller Foundation for the Advancement of Medical Science, Europeiska unionens forsknings- och innovationsprogram Horizon 2020 enligt Marie Skłodowska-Curie-stipendieavtalet (nr 754513) och Århus universitets forskningsstiftelse.

Materials

MS-222 Sigma E10521-50G
Benzocaine Sigma E-1501
Propofol B Braun
12260470_0320
Alfaxalon Jurox NA
Isoflurane Zoetis 50019100
Ultrasound scanner VisualSonics Vevo 2100

References

  1. Yu, C. Q., Schwab, I. R., Dubielzig, R. R. Feeding the vertebrate retina from the Cambrian to the Tertiary. Journal of Zoology. 278 (4), 259-269 (2009).
  2. Yu, D. Y., Cringle, S. J. Oxygen distribution and consumption within the retina in vascularised and avascular retinas and in animal models of retinal disease. Progress in Retinal and Eye Research. 20 (2), 175-208 (2001).
  3. Country, M. W. Retinal metabolism: A comparative look at energetics in the retina. Brain Research. 1672, 50-57 (2017).
  4. Damsgaard, C., et al. Retinal oxygen supply shaped the functional evolution of the vertebrate eye. Elife. , 8 (2019).
  5. Buttery, R. G., Hinrichsen, C. F. L., Weller, W. L., Haight, J. R. How thick should a retina be? A comparative study of mammalian species with and without intraretinal vasculature. Vision Research. 31 (2), 169-187 (1991).
  6. Ames, A., Li, Y., Heher, E., Kimble, C. Energy metabolism of rabbit retina as related to function: high cost of Na+ transport. The Journal of Neuroscience. 12 (3), 840-853 (1992).
  7. Chase, J. The Evolution of retinal vascularization in mammals: A comparison of vascular and avascular retinae. Ophthalmology. 89 (12), 1518-1525 (1982).
  8. Johnson, G. L. Ophthalmoscopic studies on the eyes of mammals. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 254 (794), 207-220 (1968).
  9. Johnson, G. L. I. Contributions to the comparative anatomy of the mammalian eye, chiefly based on ophthalmoscopic examination. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 194 (194-206), 1-82 (1901).
  10. Rodriguez-Ramos Fernandez, J., Dubielzig, R. R. Ocular comparative anatomy of the family Rodentia. Veterinary Ophthalmology. 16, 94-99 (2013).
  11. Copeland, D. E. Functional vascularization of the teleost eye. Current Topics in Eye Research. 3, 219-280 (1980).
  12. Meyer, D. B., Crescitelli, F. . The Visual System in Vertebrates. Handbook of Sensory Physiology. 7, (1977).
  13. Potier, S., Mitkus, M., Kelber, A. Visual adaptations of diurnal and nocturnal raptors. Seminars in Cell & Developmental Biology. 106, 116-126 (2020).
  14. Wittenberg, J. B., Wittenberg, B. A. Active secretion of oxygen into the eye of fish. Nature. 194, 106-107 (1962).
  15. Damsgaard, C. Physiology and evolution of oxygen secreting mechanism in the fisheye. Comparative Biochemistry and Physiology. 252, 110840 (2021).
  16. Damsgaard, C., et al. A novel acidification mechanism for greatly enhanced oxygen supply to the fish retina. Elife. 9, (2020).
  17. Wittenberg, J. B., Haedrich, R. L. The choroid rete mirabile of the fish eye. II. Distribution and relation to the pseudobranch and to the swimbladder rete mirabile. Biological Bulletin. 146 (1), 137-156 (1974).
  18. Wittenberg, J. B., Wittenberg, B. A. The choroid rete mirabile of the fish eye. I. Oxygen secretion and structure: comparison with the swimbladder rete mirabile. Biological Bulletin. 146 (1), 116-136 (1974).
  19. Berenbrink, M. Historical reconstructions of evolving physiological complexity: O2 secretion in the eye and swimbladder of fishes. Journal of Experimental Biology. 210, 1641-1652 (2007).
  20. Berenbrink, M., Koldkjaer, P., Kepp, O., Cossins, A. R. Evolution of oxygen secretion in fishes and the emergence of a complex physiological system. Science. 307 (5716), 1752-1757 (2005).
  21. Keane, P. A., Sadda, S. R. Retinal imaging in the twenty-first century: State of the art and future directions. Ophthalmology. 121 (12), 2489-2500 (2014).
  22. Yung, M., Klufas, M. A., Sarraf, D. Clinical applications of fundus autofluorescence in retinal disease. International Journal of Retina and Vitreous. 2 (1), 12 (2016).
  23. Ang, M., et al. Optical coherence tomography angiography: a review of current and future clinical applications. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 256 (2), 237-245 (2018).
  24. Spaide, R. F., Koizumi, H., Pozonni, M. C. Enhanced depth imaging spectral-domain optical coherence tomography. American Journal of Ophthalmology. 146 (4), 496-500 (2008).
  25. Shen, Q., et al. Magnetic resonance imaging of tissue and vascular layers in the cat retina. Journal of Magnetic Resonance Imaging. 23 (4), 465-472 (2006).
  26. Tan, G. X., Jamil, M., Tee, N. G., Zhong, L., Yap, C. H. 3D reconstruction of chick embryo vascular geometries using non-invasive high-frequency ultrasound for computational fluid dynamics studies. Annals of Biomedical Engineering. 43 (11), 2780-2793 (2015).
  27. Ho, S., Tan, G. X. Y., Foo, T. J., Phan-Thien, N., Yap, C. H. Organ dynamics and fluid dynamics of the HH25 chick embryonic cardiac ventricle as revealed by a novel 4D high-frequency ultrasound imaging technique and computational flow simulations. Annals of Biomedical Engineering. 45 (10), 2309-2323 (2017).
  28. Dittrich, A., Thygesen, M. M., Lauridsen, H. 2D and 3D echocardiography in the Axolotl (Ambystoma Mexicanum). Journal of Visualized Experiments: JoVE. (141), e57089 (2018).
  29. Jia, Y., et al. Split-spectrum amplitude-decorrelation angiography with optical coherence tomography. Optics Express. 20 (4), 4710-4725 (2012).
  30. Clarke, K. W., Trim, C. M., Trim, C. M. . Veterinary Anaesthesia E-Book. , (2013).
  31. Flecknell, P. . Laboratory Animal Anaesthesia. , (2015).
  32. West, G., Heard, D., Caulkett, N. . Zoo Animal and Wildlife Immobilization and Anesthesia. , (2014).
  33. Lauridsen, H., Hansen, K., Nørgård, M. &. #. 2. 1. 6. ;., Wang, T., Pedersen, M. From tissue to silicon to plastic: three-dimensional printing in comparative anatomy and physiology. Royal Society Open Science. 3 (3), 150643 (2016).
  34. Lauridsen, H., et al. Inside out: Modern imaging techniques to reveal animal anatomy. PLoS One. 6 (3), 17879 (2011).
  35. Ruthensteiner, B., Heß, M. Embedding 3D models of biological specimens in PDF publications. Microscopy Research and Technique. 71 (11), 778-786 (2008).
  36. Damsgaard, C., Lauridsen, H. Deep vascular imaging in the eye with flow-enhanced ultrasound. bioRxiv. , 447055 (2021).
  37. Mueller, R. L., Ryan Gregory, T., Gregory, S. M., Hsieh, A., Boore, J. L. Genome size, cell size, and the evolution of enucleated erythrocytes in attenuate salamanders. Zoology. 111 (3), 218-230 (2008).
  38. Greis, C. Quantitative evaluation of microvascular blood flow by contrast-enhanced ultrasound (CEUS). Clinical Hemorheology and Microcirculation. 49, 137-149 (2011).
  39. Urs, R., Ketterling, J. A., Tezel, G., Silverman, R. H. Contrast-enhanced plane-wave ultrasound imaging of the rat eye. Experimental Eye Research. 193, 107986 (2020).
  40. Walls, G. L. . The vertebrate eye and its adaptive radiation. , (1942).

Play Video

Cite This Article
Damsgaard, C., Lauridsen, H. Deep Vascular Imaging in the Eye with Flow-Enhanced Ultrasound. J. Vis. Exp. (176), e62986, doi:10.3791/62986 (2021).

View Video