Summary

Generazione di organoidi cerebrali da cellule staminali pluripotenti indotte in mini bioreattori fatti in casa

Published: December 11, 2021
doi:

Summary

Qui descriviamo un protocollo per la generazione di organoidi cerebrali da cellule staminali pluripotenti indotte umane (iPSC). Per ottenere organoidi cerebrali in grandi quantità e di alta qualità, utilizziamo mini bioreattori fatti in casa.

Abstract

L’organoide cerebrale derivato da iPSC è una tecnologia promettente per la modellazione in vitro delle patologie del sistema nervoso e lo screening farmacologico. Questa tecnologia è emersa di recente. È ancora agli inizi e ha alcune limitazioni ancora irrisolte. Gli attuali protocolli non consentono di ottenere organoidi sufficientemente coerenti per la scoperta di farmaci e studi preclinici. La maturazione degli organoidi può richiedere fino a un anno, spingendo i ricercatori a lanciare più processi di differenziazione contemporaneamente. Impone costi aggiuntivi per il laboratorio in termini di spazio e attrezzature. Inoltre, gli organoidi cerebrali hanno spesso una zona necrotica al centro, che soffre di carenza di nutrienti e ossigeno. Quindi, la maggior parte dei protocolli attuali utilizza un sistema circolante per il terreno di coltura per migliorare la nutrizione.

Nel frattempo, non ci sono sistemi dinamici economici o bioreattori per la coltivazione di organoidi. Questo documento descrive un protocollo per la produzione di organoidi cerebrali in mini bioreattori fatti in casa compatti ed economici. Questo protocollo consente di ottenere organoidi di alta qualità in grandi quantità.

Introduction

I modelli umani derivati da iPSC sono ampiamente utilizzati negli studi sui disturbi dello sviluppo neurologico e neurodegenerativo1. Negli ultimi dieci anni, i modelli di tessuto cerebrale 3D, i cosiddetti organoidi cerebrali, hanno essenzialmente completato le tradizionali colture neuronali 2D2. Gli organoidi ricapitolano in una certa misura l’architettura 3D del cervello embrionale e consentono una modellazione più precisa. Molti protocolli sono pubblicati per la generazione di organoidi che rappresentano diverse regioni del cervello: corteccia cerebrale3,4,5,cervelletto6,mesencefalo,encefalo, ipotalamo7,8,9e ippocampo10. Ci sono stati diversi esempi di utilizzo di organoidi per studiare le malattie del sistema nervoso umano11. Inoltre, gli organoidi sono stati implementati nelle scoperte di farmaci12 e utilizzati in studi di malattie infettive, tra cui SARS-Cov-213,14.

Gli organoidi cerebrali possono raggiungere fino a diversi millimetri di diametro. Quindi, la zona interna dell’organoide può soffrire di ipossia o malnutrizione e alla fine diventare necrotica. Pertanto, molti protocolli includono bioreattori speciali8, scuotitori o sistemi microfluidici15. Questi dispositivi possono richiedere grandi volumi di costosi supporti di coltura cellulare. Inoltre, il costo di tali apparecchiature è solitamente elevato. Alcuni bioreattori sono costituiti da molte parti meccaniche che li rendono difficili da sterilizzare per il riutilizzo.

La maggior parte dei protocolli soffre dell'”effetto batch”16, che genera una variabilità significativa tra gli organoidi ottenuti dalle iPSC identiche. Questa variabilità ostacola i test antidroga o gli studi preclinici che richiedono uniformità. L’alta resa di organoidi sufficiente per selezionare organoidi di dimensioni uniformi può parzialmente risolvere questo problema.

Anche il fattore tempo è un problema significativo. Matsui et al. (2018) hanno dimostrato che gli organoidi cerebrali richiedono almeno sei mesi per raggiungere la maturità17. Trujillo et al. (2019) hanno anche dimostrato che l’attività elettrofisiologica si è verificata negli organoidi solo dopo sei mesi di coltivazione18. A causa del lungo tempo di maturazione degli organoidi, i ricercatori spesso lanciano una nuova differenziazione prima di completare la precedente. Molteplici processi paralleli di differenziazione richiedono spese aggiuntive, attrezzature e spazio di laboratorio.

Abbiamo recentemente sviluppato un mini bioreattore che risolve principalmente i problemi sopra menzionati19. Questo bioreattore fatto in casa è costituito da un’adesione ultra-bassa o da una capsula di Petri non trattata con una manopola di plastica al centro. Questa manopola in plastica impedisce l’affollamento degli organoidi e la loro conglutinazione al centro della capsula di Petri, causata dalla rotazione dello shaker. Questo documento descrive come questo mini bioreattore fatto in casa economico e semplice consente di generare organoidi cerebrali di alta qualità in grandi quantità.

Protocol

NOTA: utilizzare la tecnica sterile in tutto il protocollo, esclusi i passaggi 1.2 e 1.3. Riscaldare tutti i mezzi di coltura e le soluzioni a 37 °C prima di applicarli a cellule o organoidi. Coltivare le cellule in un incubatore a CO2 a 37 °C in 5% CO2 su 80% di umidità. Lo schema di protocollo è illustrato nella Figura 1. 1. Trasformare le piastre di Petri in mini bioreattori Tagliare tubi centrifughi sterili …

Representative Results

Lo schema di protocollo è illustrato nella Figura 1. Il protocollo includeva cinque media in cui le iPSC si differenziavano in organoidi cerebrali per almeno un mese. La differenziazione è stata avviata quindi le iPSC hanno raggiunto la confluenza del 75-90% (Figura 2A,B). I primi segni di differenziazione verso i neuroni sono stati osservati nei giorni 10-11 della coltivazione di iPSC nel mezzo A, quando le cellule hanno iniziato a raggruppar…

Discussion

Il protocollo descritto ha due passaggi cruciali che consentono la generazione di organoidi di alta qualità di dimensioni uniformi. In primo luogo, gli organoidi crescono da sferoidi che sono quasi identici nel numero di cellule e nella maturità cellulare. In secondo luogo, i bioreattori fatti in casa forniscono a ciascun organoide un ambiente uniforme, in cui gli organoidi non si affollano o si attaccano insieme.

La qualità cellulare e lo stato di maturazione cellulare sono essenziali per …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato sostenuto dalla sovvenzione 075-15-2019-1669 del Ministero della Scienza e dell’Istruzione Superiore della Federazione Russa (analisi RT-PCR) e dalla sovvenzione n. 19-15-00425 della Russian Science Foundation (per tutti gli altri lavori). Gli autori ringraziano anche Pavel Belikov per il suo aiuto con l’editing video. Le figure nel manoscritto sono state create con BioRender.com.

Materials

Advanced DMEM/F-12 Gibco 12634010 DMEM/F-12
AggreWell400 STEMCELL Technologies Inc 34425 24-well culture plate with microwells
B-27 Supplement Gibco 17504044 Neuronal supplement B
GlutaMAX Supplement Gibco 35050061 200 mM L-alanyl-L-glutamine
Human BDNF Miltenyi Biotec 130-096-285
Human FGF-2 Miltenyi Biotec 130-093-839
Human GDNF Miltenyi Biotec 130-096-290
KnockOut Serum Replacement Gibco 10828028 Serum replacement
mTESR1 STEMCELL Technologies Inc 85850 Pliripotent stem cell medium
N2 Supplement Gibco 17502001
Neurobasal Medium Gibco 21103049 Basal medium for neuronal cell maintenance
Penicillin-Streptomycin Solution Gibco 15140130
Plasmocin InvivoGen ant-mpt-1 Antimicrobials
Purmorphamine EMD Millipore 540220
StemMACS Y27632 Miltenyi Biotec 130-106-538 Y27632
StemMACS Dorsomorphin Miltenyi Biotec 130-104-466 Dorsomorphin
StemMACS LDN-193189 Miltenyi Biotec 130-106-540 LDN-193189
StemMACS SB431542 Miltenyi Biotec 130-106-543 SB431542
Trypan Blue Solution Gibco 15250061
Versen solution Gibco 15040066 0.48 mM EDTA in PBS
β-mercaptoethanol Gibco 31350010

References

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Eremeev, A., Belikova, L., Ruchko, E., Volovikov, E., Zubkova, O., Emelin, A., Deev, R., Lebedeva, O., Bogomazova, A., Lagarkova, M. Brain Organoid Generation from Induced Pluripotent Stem Cells in Home-Made Mini Bioreactors. J. Vis. Exp. (178), e62987, doi:10.3791/62987 (2021).

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