Summary

Påvisning av virus- og spyttproteiner av en bladhoppervektor i planteverten

Published: September 14, 2021
doi:

Summary

Denne protokollen demonstrerer hvordan man bruker planteverten til å oppdage spyttproteiner av bladhopper og plantevirale proteiner frigjort av bladhoppervektorer.

Abstract

Insektvektorer overfører horisontalt mange plantevirus av landbruksmessig betydning. Mer enn halvparten av plantevirus overføres av hemipteran insekter som har piercing-sugende munndeler. Under viral overføring bygger insektspyttet bro over virusvektorverten fordi spyttvektorvirusene og insektproteinene utløser eller undertrykker immunresponsen til planter fra insekter til planteverter. Identifisering og funksjonelle analyser av spyttproteiner blir et nytt fokusområde i forskningsfeltet arbovirus-vert interaksjoner. Denne protokollen gir et system for å oppdage proteiner i spytt av bladhoppere ved hjelp av planteverten. Bladhoppervektoren Nephotettix cincticeps infisert med risdvergvirus (RDV) tjener som et eksempel. Vitellogenin og hoved ytre kapsidprotein P8 av RDV vektorert av spytt av N. cincticeps kan detekteres samtidig i risplanten som N. cincticeps spiser på . Denne metoden er anvendelig for testing av spyttproteiner som holdes forbigående i planteverten etter insektfôring. Det antas at dette deteksjonssystemet vil være til nytte for studiet av hemipteran-virus-plante- eller hemipteran-planteinteraksjoner.

Introduction

Vektor-vert overføringsmodus for arbovirus, et grunnleggende problem, er på grensen til biologisk vitenskap. Mange plantevirus av landbruksmessig betydning overføres horisontalt av insektvektorer1. Mer enn halvparten av plantevirus er vektorert av hemipteran insekter, inkludert bladlus, hvitefugler, bladhopper, plantehoppere og thrips. Disse insektene har forskjellige egenskaper som gjør at de effektivt kan overføre plantevirus1. De har piercing-sugende munndeler og spiser på saften fra floem og xylem, og skiller ut spyttet 1,2,3,4. Med utvikling og forbedring av teknikker blir identifisering og funksjonelle analyser av spyttkomponenter et nytt fokus for intensiv forskning. De kjente spyttproteinene i spytt inkluderer mange enzymer, som pektinesterase, cellulase, peroksidase, alkalisk fosfatase, polyfenoloksidase og sukrase, blant annet 5,6,7,8,9,10,11,12,13 . Proteinene i spytt inkluderer også elicitors som utløser vertsforsvarsresponsen, og dermed endrer ytelsen til insekter, og effektorer som undertrykker vertsforsvaret, noe som forbedrer insektkondisjon og komponenter som induserer vertspatologiske responser14,15,16,17. Derfor er spyttproteiner viktige materialer for kommunikasjon mellom insekter og verter. Under overføring av virus inneholder spytt utskilt av spyttkjertlene av piercing-sugende viruliferous insekter også viruliferous proteiner. Virale komponenter utnytter spyttstrømmen for å frigjøre dem fra insektet til planteverten. Derfor bygger insektspyttet bro over virus-vektor-vert tritrofisk interaksjon. Undersøkelse av den biologiske funksjonen til spyttproteiner utskilt av viruliferous insekter bidrar til å forstå forholdet mellom virus-vektor-vert.

For dyrevirus er det rapportert at spytt av mygg medierer overføring og patogenicitet av West Nile virus (WNV) og Dengue virus (DENV). Spyttproteinet AaSG34 fremmer dengue-2-virusreplikasjon og overføring, mens spyttproteinet AaVA-1 fremmer overføring av DENV og Zika-virus (ZIKV) ved å aktivere autofagi18,19. Myggens spyttprotein D7 kan hemme DENV-infeksjon in vitro og in vivo via direkte interaksjon med DENV-virionene og det rekombinante DENV-konvoluttproteinet20. I plantevirus induserer begomovirustomatgult bladkrøllvirus (TYLCV) hvitefuglspyttproteinet Bsp9, som undertrykker den WRKY33-medierte immuniteten til planteverten, for å øke preferansen og ytelsen til hvite fluer, og til slutt øke overføringen av virus21. Fordi studier av rollen som insektspyttproteiner spiller i planteverter, har ligget bak dyrevertene, er det nødvendig med et stabilt og pålitelig system for å oppdage spyttproteiner i planteverter.

Planteviruset kjent som risdvergvirus (RDV) overføres av bladhopperen Nephotettix cincticeps (Hemiptera: Cicadellidae) med høy effektivitet og på en vedvarende forplantende måte22,23. RDV ble først rapportert å bli overført av en insektvektor og forårsaker en alvorlig sykdom av ris i Asia24,25. Virionen er icosahedral og dobbeltlags sfærisk, og det ytre laget inneholder P8 ytre kapsidprotein22. Den sirkulative overføringsperioden for RDV i N. cincticeps er 14 dager 26,27,28,29,30. Når RDV kommer til spyttkjertler, frigjøres virioner i spyttlagrede hulrom i spyttkjertlene via en eksocytoselignende mekanisme23. Vitellogenin (Vg) er eggeplommeproteinforløperen som er essensiell for oocyttutvikling hos kvinnelige insekter31,32,33. De fleste insektarter har minst ett Vg-transkript på 6-7 kb, som koder for et forløperprotein på ca. 220 kDa. Proteinforløperne til Vg kan vanligvis spaltes i store (140 til 190 kDa) og små (<50 kDa) fragmenter før de går inn i eggstokken18,19. Tidligere proteomiske analyser avslørte tilstedeværelsen av peptidene avledet fra Vg i det utskilte spyttet til bladhopperen Recilia dorsalis, selv om deres funksjon er ukjent (upubliserte data). Det er nylig rapportert at Vg, som er muntlig utskilt fra plantehoppere, fungerer som en effektor for å skade plantenes forsvar34. Det er ukjent om Vg av N. cincticeps også kunne frigjøres til planteverten med spyttstrøm, og deretter kunne spille en rolle i planten for å forstyrre planteforsvaret. For å adressere om N. cincticeps utnytter spyttproteiner, som Vg, for å hemme eller aktivere planteforsvar, er det første trinnet å identifisere proteiner som frigjøres til planten under fôring. Å forstå metoden for å identifisere spyttproteinene som er tilstede i planten er potensielt viktig for å forklare spyttproteinets funksjon og samspillet mellom Hemiptera og planter.

I protokollen som presenteres her, brukes N. cincticeps som et eksempel for å gi en metode for å undersøke tilstedeværelsen av spyttproteiner i planteverten introdusert gjennom insektfôring. Protokollen beskriver primært innsamling og påvisning av spyttproteiner og er nyttig for videre undersøkelse på de fleste hemipteraner.

Protocol

De ikke-viruliferøse voksne bladhopperne ble forplantet i Vector-borne Virus Research Center i Fujian Agriculture and Forestry University, Kina. 1. Ikke-viruliferous insektoppdrett Bak de voksne på risplanter i et kubebur som er 40 cm x 35 cm x 20 cm (lengde x bredde x høyde). Hold den ene siden av buret dekket med et insektsikkert nett for ventilasjon.Hold burene med bladhoppere i en inkubator som inneholder en innebygd fuktighetsregulator ved 26 °C med en relativ fuktig…

Representative Results

Figur 1 illustrerer alle trinnene i denne protokollen: insektoppdrett, virusoppkjøp, innsamling av spyttproteiner via risfôring og western blot. De vestlige blottresultatene viste at spesifikke og forventede bånd på ca. 220 kDa ble observert i prøvene av fôring av ris og spyttkjertler av insekter på membranen inkubert med antistoffer mot Vg. Derimot ble det ikke observert noe bånd i risprøven uten fôring. Resultatet i figur 2 …

Discussion

Spyttet som utskilles direkte av spyttkjertlene til de piercingsugende insektene, spiller en sentral rolle fordi det fordøyer og avgifter vertsvevet og vektorenes biologiske faktorer på tvers av kongeriketi vertene 1,3,4. De biologiske faktorene på tvers av riket, inkludert elicitorer, effektorer og lite RNA, er kritiske for insekt-vertkommunikasjon14,15,16

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av tilskudd fra National Natural Science Foundation of China (31772124 og 31972239) og Fujian Agriculture and Forestry University (Grant KSYLX014).

Materials

Reagents
Tris base Roche D609K69032 For 5×Tris-glycine buffer and 10×TBS buffer preparation
glycine Sigma-Aldrich WXBD0677V For 5×Tris-glycine buffer preparation
SDS Sigma-Aldrich SLCB4394 For 5×Tris-glycine buffer preparation
NaCl Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10019318 For 10×TBS buffer preparation
KCl Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10016318 For 10×TBS buffer preparation
ß-mercaptoethanol Xiya Reagent B14492 For 4× protein sample buffer preparation
bromophenol blue Sigma-Aldrich SHBL3668 For 4× protein sample buffer preparation
glycerol Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10010618 For 4× protein sample buffer preparation
methanol Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10014118 For transfer buffer preparation
Tween 20 Coolaber SCIENCE&TeCHNoLoGY CT30111220 For TBST preparation
non-fat dry milk Becton.Dickinso and company 252038 For membrane blocking, antibodies dilution
goat anti-rabbit IgG Sangon Biotech D110058-0001 Recognization of the primary andtibody
ECL Western kit ThermoFisher Scientific 32209 Chemiluminescent substrate
nitrocellulose membrane Pall Corporation 25312915 For proteins transfer
Buffers and Solutions
Buffer Composition Comments/Description
 5×Tris-glycine buffer 15.1 g Tris base
94 g glycine
 5 g SDS in 1 L sterile water
 Stock solution
1×Tris-glycine buffer 200 mL of 5×Tris-glycine buffer
800 mL sterile water
Work solution, for SDS-PAGE
10×Tris-buffered saline (TBS) buffer 80 g NaCl
30 g Tris base
2 g KCl
in 1 L sterile water
Stock solution
TBS with Tween 20 (TBST) solution 100 mL 10×TBS solution
3 mL Tween 20
900 mL sterile water
Work solution
4× protein sample buffer 8 g SDS
4 mL ß-mercaptoethanol
0.02 g bromophenol blue
40 mL glycerol
in 40 mL 0.1 M Tris-HCl (pH 6.8)
For protein extraction
Transfer buffer 800 mL Tris-glycine buffer
200 mL methanol
For protein transfer
Instruments
Bromophenol blue Sigma-Aldrich SHBL3668 For 4x protein sample buffer preparation
Constant temperature incubator Ningbo Saifu Experimental Instrument Co., Ltd. PRX-1200B For rearing leafhoppers
Electrophoresis Tanon Science & Technology Co.,Ltd. Tanon EP300 For SDS-PAGE
Electrophoretic transfer core module BIO-RAD 1703935 For SDS-PAGE
glycerol Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10010618 For 4x protein sample buffer preparation
glycine Sigma-Aldrich WXBD0677V For 5x Tris-glycine buffer preparation
goat anti-rabbit IgG Sangon Biotech D110058-0001 Recognization of the primary andtibody
High-pass tissue grinding instrument Shanghai Jingxin Industrial Development Co., Ltd. JXFSIPRP-24 For grinding plant tissues
KCl Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10016318 For 10x TBS buffer preparation
methanol Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10014118 For transfer buffer preparation
Mini wet heat transfer trough BIO-RAD 1703930 For SDS-PAGE
NaCl Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10019318 For 10x TBS buffer preparation
nitrocellulose membrane Pall Corporation 25312915 For proteins transfer
non-fat dry milk Becton.Dickinso and company 252038 For membrane blocking, antibodies dilution
Pierce ECL Western kit ThermoFisher Scientific 32209 Chemiluminescent substrate
Protein color instrument GE Healthcare bio-sciences AB Amersham lmager 600 For detecting proteins
SDS Sigma-Aldrich SLCB4394 For 5x Tris-glycine buffer preparation
Tris base Roche D609K69032 For 5x Tris-glycine buffer and 10×TBS buffer preparation
Tween 20 Coolaber SCIENCE&TeCHNoLoGY CT30111220 For TBST preparation
Vertical plate electrophoresis tank BIO-RAD 1658001 For SDS-PAGE
Water bath Shanghai Jinghong Experimental equipment Co., Ltd. XMTD-8222 For boil the protein samples
β-mercaptoethanol Xiya Reagent B14492 For 4x protein sample buffer preparation

References

  1. Hogenhout, S. A., Ammar el, D., Whitfield, A. E., Redinbaugh, M. G. Insect vector interactions with persistently transmitted viruses. Annual Review of Phytopathology. 46, 327-359 (2008).
  2. Cranston, P. S., Gullan, P. J., Resh, V. H., Carde, R. T. Phylogeny of insects. Encyclopedia of Insects. , (2003).
  3. Ammar el, D., Tsai, C. W., Whitfield, A. E., Redinbaugh, M. G., Hogenhout, S. A. Cellular and molecular aspects of rhabdovirus interactions with insect and plant hosts. Annual Review of Entomology. 54, 447-468 (2009).
  4. Wei, T., Li, Y. Rice reoviruses in insect vectors. Annual Review of Phytopathology. 54, 99-120 (2016).
  5. Hattori, M., Konishi, H., Tamura, Y., Konno, K., Sogawa, K. Laccase-type phenoloxidase in salivary glands and watery saliva of the green rice leafhopper, Nephotettix cincticeps. Journal of Insect Physiology. 51 (12), 1359-1365 (2005).
  6. Ma, R., Reese, J. C., William, I. V., Bramel-Cox, P. Detection of pectinesterase and polygalacturonase from salivary secretions of living greenbugs, schizaphis graminum (Homoptera: aphididae). Journal of Insect Physiology. 36 (7), 507-512 (1990).
  7. Miles, P. W. Dynamic aspects of the chemical relation between the rose aphid and rose buds. Entomologia Experimentalis et Applicata. 37 (2), 129-135 (2011).
  8. Urbanska, A., Tjallingii, W. F., Dixon, A., Leszczynski, B. Phenol oxidising enzymes in the grain aphid’s saliva. Entomologia Experimentalis et Applicata. 86 (2), 197-203 (1998).
  9. Miles, P. W., Peng, Z. Studies on the salivary physiology of plant bugs: detoxification of phytochemicals by the salivary peroxidase of aphids. Journal of Insect Physiology. 35 (11), 865-872 (1989).
  10. Will, T., van Bel, A. Physical and chemical interactions between aphids and plants. Journal of Experimental Botany. 57 (4), 729-737 (2006).
  11. Ma, R. Z., Reese, J. C., Black, W. C., Bramel-Cox, I. Chlorophyll loss in a greenbug-susceptible sorghum due to pectinases and pectin fragments. Journal of the Kansas Entomological Society. 71 (1), 51-60 (1998).
  12. Madhusudhan, V. V., Miles, P. W. Mobility of salivary components as a possible reason for differences in the responses of alfalfa to the spotted alfalfa aphid and pea aphid. Entomologia Experimentalis et Applicata. 86 (1), 25-39 (1998).
  13. Funk, C. J. Alkaline phosphatase activity in whitefly salivary glands and saliva. Archives of Insect Biochemistry & Physiology. 46 (4), 165-174 (2010).
  14. Hogenhout, S. A., Bos, J. I. Effector proteins that modulate plant-insect interactions. Current Opinion in Plant Biology. 14 (4), 422-428 (2011).
  15. Tomkins, M., Kliot, A., Maree, A. F., Hogenhout, S. A. A multi-layered mechanistic modelling approach to understand how effector genes extend beyond phytoplasma to modulate plant hosts, insect vectors and the environment. Current Opinion in Plant Biology. 44, 39-48 (2018).
  16. Huang, H. J., Lu, J. B., Li, Q., Bao, Y. Y., Zhang, C. X. Combined transcriptomic/proteomic analysis of salivary gland and secreted saliva in three planthopper species. Journal of Proteomics. , (2018).
  17. Hogenhout, S. A., Bos, J. I. Effector proteins that modulate plant–insect interactions. Current Opinion in Plant Biology. 14 (4), 422-428 (2011).
  18. Sun, P., et al. A mosquito salivary protein promotes flavivirus transmission by activation of autophagy. Nature Communications. 11 (1), 260 (2020).
  19. Sri-In, C., et al. A salivary protein of Aedes aegypti promotes dengue-2 virus replication and transmission. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 111, 103181 (2019).
  20. Conway, M. J., et al. Aedes aegypti D7 saliva protein inhibits dengue virus infection. Plos Neglected Tropical Diseases. 10 (9), 0004941 (2016).
  21. Wang, N., et al. A whitefly effector Bsp9 targets host immunity regulator WRKY33 to promote performance. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 374 (1767), 20180313 (2019).
  22. Omura, T., Yan, J. Role of outer capsid proteins in transmission of phytoreovirus by insect vectors. Advances in Virus Research. 54, 15-43 (1999).
  23. Chen, Q., Liu, Y., Long, Z., Yang, H., Wei, T. Viral release threshold in the salivary gland of leafhopper vector mediates the intermittent transmission of rice dwarf virus. Frontiers in Microbiology. 12, 639445 (2021).
  24. Fukushi, T. Further studies on the dwarf disease of rice plant. Journal of the Faculty of Agriculture, Hokkaido Imperial University. 45 (3), 83-154 (1940).
  25. Miyazaki, N., et al. The functional organization of the internal components of rice dwarf virus. Journal of Biochemistry. 147, 843-850 (2010).
  26. Wei, T., Shimizu, T., Hagiwara, K., Kikuchi, A., Omura, T. Pns12 protein of rice dwarf virus is essential for formation of viroplasms and nucleation of viral-assembly complexes. Journal of General Virology. 87, 429-438 (2006).
  27. Chen, Q., Zhang, L., Chen, H., Xie, L., Wei, T. Nonstructural protein Pns4 of rice dwarf virus is essential for viral infection in its insect vector. Virology Journal. 12, 211 (2015).
  28. Chen, Q., et al. Nonstructural protein Pns12 of rice dwarf virus is a principal regulator for viral replication and infection in its insect vector. Virus Research. 210, 54-61 (2015).
  29. Chen, Q., Zhang, L., Zhang, Y., Mao, Q., Wei, T. Tubules of plant reoviruses exploit tropomodulin to regulate actin-based tubule motility in insect vector. Scientific Reports. 7, 38563 (2017).
  30. Wei, T., et al. The spread of Rice dwarf virus among cells of its insect vector exploits virus-induced tubular structures. Journal of Virology. 80 (17), 8593-8602 (2006).
  31. Mao, Q., et al. Insect bacterial symbiont-mediated vitellogenin uptake into oocytes to support egg development. mBio. 11 (6), 01142 (2020).
  32. Tufail, M., Takeda, M. Molecular characteristics of insect vitellogenins. Journal of Insect Physiology. 54 (12), 1447-1458 (2008).
  33. Sappington, T. W., Raikhel, A. S. Molecular characteristics of insect vitellogenins and vitellogenin receptors. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 28 (5-6), 277-300 (1998).
  34. Ji, R., et al. Vitellogenin from planthopper oral secretion acts as a novel effector to impair plant defenses. New Phytologist. , (2021).
check_url/kr/63020?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Wang, Y., Wang, X., Li, Z., Chen, Q. Detecting Virus and Salivary Proteins of a Leafhopper Vector in the Plant Host. J. Vis. Exp. (175), e63020, doi:10.3791/63020 (2021).

View Video