Summary

Primer, Malign Plevral Mezotelyoma Tümör Hatlarının Oluşumu ve Genleşmesi

Published: April 21, 2022
doi:

Summary

Bu yöntem makalesinin amacı, cerrahi olarak rezeke edilmiş plevral mezotelyomadan primer tümör hücre hatlarının zenginleştirilmesi, üretilmesi ve genişletilmesi için sağlam ve tekrarlanabilir bir metodoloji göstermektir.

Abstract

Nadir tümör tiplerinden primer tümör hücre hatlarının genişlemesi için mevcut metodolojiler eksiktir. Bu protokol, primer tümör hücrelerini cerrahi olarak rezeke edilmiş, malign plevral mezotelyomadan (MPM) genişletme yöntemlerini açıklayarak, sindirimden zenginleştirmeye, genişlemeye, kriyoprezervasyona ve fenotipik karakterizasyona kadar olan sürece tam bir genel bakış sağlar. Ek olarak, bu protokol, diferansiyel tripsinizasyon ve ayrışma yöntemlerinin fenotipik karakterizasyon için hücre yüzey belirteçlerinin tespiti üzerindeki etkisi gibi çoklu tümör tipleri için yararlı olabilecek tümör üretimi için kavramlar sunmaktadır. Bu çalışmanın en büyük sınırlaması, iki boyutlu (2D) bir kültür sisteminde genişleyecek tümör hücrelerinin seçimidir. Üç boyutlu (3D) kültür sistemleri, medya takviyeleri, yapışmayı iyileştirmek için plaka kaplama ve alternatif ayrışma yöntemleri de dahil olmak üzere bu protokoldeki varyasyonlar, bu tekniği ve bir tümör hattı oluşturmanın genel başarı oranını artırabilir. Genel olarak, bu protokol bu nadir tümörden tümör hücrelerinin oluşturulması ve karakterize edilmesi için temel bir yöntem sağlar.

Introduction

Malign plevral mezotelyoma (MPM), asbest maruziyeti ile yüksek oranda ilişkili nadir bir tümördür. İmmünoterapiye dayalı yaklaşımlar cesaret verici sonuçlar göstermesine rağmen, bu hastalığı geliştiren hastalar için mevcut tedavi seçeneklerinin yetersizliği vardır ve genel 5 yıllık sağkalım oranı düşüktür 1,2. Bu hastalığı daha iyi anlamak ve hasta sonuçlarını iyileştirebilecek yeni terapötik hedefler belirlemek için birçok kurumda çabalar devam etmektedir. Birden fazla mezotelyoma fare modeli olsa da, primer mezotelyoma tümör hücrelerine erişim daha sınırlıdır3. Primer mezotelyoma tümör hücrelerinin in vitro genişlemesi, tümör hücrelerini doğrudan incelemek ve tümör infiltrasyonu yapan lenfositler gibi otolog immün hücrelerle etkileşimlerini incelemek için kullanılabilecek değerli bir model sistemi sağlayacaktır. Primer mezotelyoma tümör hücreleri hatlarının genişlemesi hakkında raporlar bulunmakla birlikte, bunlar azdır ve ayrıntılı bir standart operasyon prosedürü (SOP) sağlamamaktadır. Ayrıca, Amerikan Tipi Kültür Koleksiyonu (ATCC) gibi ticari kaynaklardan birkaç hücre hattı mevcuttur. Primer tümör hatlarının mevcudiyeti sınırlı olmakla birlikte, tümör hücrelerinin plevral efüzyonlardan ve doğrudan tümör dokusundan genişletilebileceği gösterilmiştir 4,5. Ek olarak, genişlemiş tümör hücre hatlarının orijinal tümörün moleküler profilini koruduğu gösterilmiştir 4,5,6.

Laboratuvarımız MPM’nin tümör-immün mikroçevresini incelemekte ve cerrahi olarak rezeke edilen vakalardan primer MPM tümör hücreleri hatlarını genişletmek için bir yöntem geliştirmiştir. Bu yöntem, primer metastatik melanom tümör hücre hatlarının oluşturulmasındaki deneyimlerimizden uyarlanmıştır. Bu çalışmanın amacı, bir 2D model sistemi ve ardından fenotipik profilleme kullanarak primer mezotelyoma tümör hattı genişlemesine ayrıntılı ve pratik bir yaklaşım sağlamaktır. İlk basamak ayar2’de CTLA4 ve PD-1’i hedef alan kontrol noktası blokaj stratejilerinin son zamanlardaki başarısı göz önüne alındığında, birçok primer tümör hattı üretme yeteneği, hem tümörün içsel direnç mekanizmalarının anlaşılmasını daha da ileri götürebilir hem de T hücresi tanımayı değerlendirmek için önemli bir model sistemi sağlayabilir, böylece MPM’deki immün yanıt hakkındaki anlayışımızı derinleştirebilir.

Bu protokolün en büyük sınırlaması, her tümörün farklı bir mikro çevre içermesi ve genişleme başarısının yüksek derecede değişkenliğinin olmasıdır. Ek olarak, bu yöntem bir 2D kültür sisteminde genişleyebilen tümör hücrelerini seçer. Bir 3D sferoid veya organoid kültürünün üretimini içeren diğer yöntemler, daha yüksek bir genişleme başarı oranına izin verebilecek veya geleneksel bir 2D sistemde genişleyemeyen hücre çizgilerini türetme yeteneği ile sonuçlanabilecek alternatif bir yaklaşım sağlayabilir. Bu tür 3D kültürlerin, örneğin pankreas kanseri7 gibi genişlemesi zor olan tümör tiplerinin üretimi için yararlı olduğu gösterilmiştir.

Protocol

Burada açıklanan tüm yöntemler, Teksas Üniversitesi MD Anderson Kanser Merkezi Kurum İnceleme Kurulu (IRB) tarafından onaylanmıştır. Bu, bilgilendirilmiş onam sonrasında çıkarılan bakım standardı, cerrahi olarak rezeke edilmiş MPM tümörleri ile ilgilidir. 1. Tümör sindirim ortamının ve diğer ilişkili ortamların hazırlanması Tümör sindirim ortamını hazırlamak için, laminer akışlı bir davlumbazda 500 mL steril Roswell Park Memorial…

Representative Results

Erken geçiş kültürlerinin fibroblast kontaminasyonunu belirlemek için, hücreler, fibroblastların mevcut diğer yapışkan hücrelere göre sıklığını tanımlamak için ters faz mikroskobu kullanılarak değerlendirilir. Şekil 1, fibroblast kontaminasyonu olmayan bir kültüre kıyasla% 80 (Şekil 1A),% 50 (Şekil 1B) ve% 30 (Şekil 1C) artan fibroblast kontaminasyonunun örneklerini göstermektedir (Şekil 1D).<strong cl…

Discussion

Bu protokol basit olsa da, yakından takip edilmesi gereken birkaç kritik adım vardır. Erken pasaj dondurma, başlangıçta başarısız olursa tümör hücresi zenginleştirme işlemini tekrarlama yeteneğini korumak için önemlidir. Doğru bölünme ve ortam açlığı tekniğine karar vermek için fibroblastik kontaminasyonu gözle değerlendirme yeteneği, kültürde fibroblast aşırı büyümesini önlemek için hayati öneme sahiptir. Ek olarak, diferansiyel tripsinizasyon yöntemi, inkübasyon sırasında hü…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Raquel Laza-Briviesca’ya bu protokolün başlatılmasına katkılarından ve Dr. Boris Sepesi, Reza Mehran ve David Rice’a doku koleksiyonları konusundaki işbirliğinden dolayı teşekkür ederiz. Bu çalışmayla ilgili ek bir finansman yoktur.

Materials

10 mL serological pipettes BD Falcon 357551
15 mL conical tubes BD Falcon 352097
2 mL aspirating pipettes BD Falcon 357558
5 mL serological pipettes BD Falcon 357543
50 mL conical tubes BD Falcon 352098
6-well microplates, tissue culture treated Corning 3516
Accutase Innovative Cell Technologies AT104 A protease-collagenase mixture considered to be more effective in preserving epitopes for flow cytometry.
anti-CD325 (N-Cadherin) PE Invitrogen 12-3259-42
anti-CD90 PE-Cy7 BD Biosciences 561558
anti-Mesothelin APC Miltenyi 130-118-096
Bovine Serum Albumin 30% Sigma A8577-1L
Cell Dissociation buffer, enzyme-free Thermo Fisher Scientific 13151014
Cell strainer (70 µm) Greiner Bio-One 542-070
Centrifuge with 15 mL and 50 mL adaptors
Collagenase Type 1 Sigma-Aldrich C-0130 Dissolve 1.5 g of Collagenase type I into 100 mL of sterile DMEM and aliquot in 5 mL volumes. Label well and store at -20 °C.
Controlled-rate freezing chamber Thermo Fisher Scientific 15-350-50
Cryovials Thermo Fisher Scientific 5000-0020
CulturPlate-96 Packard Instrument Company 6005680 White, opaque 96-well microplate.
Dimethyl sulfoxide Thermo Fisher Scientific BP231-100
DNAse I (from bovine pancreas) Sigma-Aldrich D4527 Aliquot at 50 μL, label well and store at -20 °C. After thawing, keep at 4 °C for up to 1 month.
Dulbecco's Phosphate buffered saline solution 1x Corning 21-031-CV
Ethanol 200 proof Thermo Fisher Scientific A4094
FACS tubes-filter top BD Falcon 352235
Fetal bovine serum Gemini-Bio 100-106
GentleMACS C-tubes Miltenyi 130-093-237
GentleMACS Octo-dissociator with heater apparatus Miltenyi 130-096-427 Includes specialized heater apparatus sleeves used to apply heat to the C-tubes during dissocation.
Goat serum Sigma-Aldrich G9023 Aliquot and store at -20 °C.
Hank's Balanced Salt solution, 500 mL Corning MT21022CV
Hyaluronidase Sigma-Aldrich H3506 Dissolve 0.15 g of Hyaluronidase into 100 mlLof sterile DMEM and distribute into 1.0 mL aliquots. Label well and store at -20 °C.
Inverted-phase microscope
Laminar flow hood
Live/dead yellow dye Life Technologies L-34968
Micropipettor tips, 20 µL ART 2149P
Micropipettor, 0.5-20 µL
Mycoalert assay control set Lonza LT07-518 Aliquot positive controls and store at -20 °C.
Mycoalert Plus mycoplasma detection kit Lonza LT07-710 Aliquot reagent and substrate and store at -20 °C. Save remaining buffer and aliquot for negative control and store at -20°C.
Paraformaldehyde 16% Electron Microscopy Sciences 15710 Prepare stock by filtering through a PVDF syringe filter (Millex cat. no. SLVV033RS) and aliquot under a fume hood. Store at -20 °C.
Penicillin-streptomycin 10,000 U/mL Gibco 15140-122
Pipet aid
Plate reader with luminescent capabilities BioTek Synergy HT any plate reader with these specifications can be used
RPMI 1640 media Corning 10-040-CV
Scalpel Andwin 2975#21
Stericup Quick Release-GP sterile vacuum filtration system, 0.22 µm PES Express PLUS, 500 mL EMD Millipore S2GPU05RE
Steriflip-GP filter, 0.22 µm PES Express PLUS, 50 mL EMD Millipore SCGP00525
Sterile forceps Thermo Fisher Scientific 12-000-157
T25 flasks, tissue culture treated Corning 430639
T75 flasks, tissue culture treated Corning 430641U
Trypan blue solution 0.4% Gibco 15250-061
Trypsin EDTA 0.05% Corning 25-052-CI
ViaStain acridine orange/propidium iodide (AO/PI) solution Nexcelom CS2-0106-5ML

References

  1. Guzman-Casta, J., et al. Prognostic factors for progression-free and overall survival in malignant pleural mesothelioma. Thoracic Cancer. 12 (7), 1014-1022 (2021).
  2. Baas, P., et al. First-line nivolumab plus ipilimumab in unresectable malignant pleural mesothelioma (CheckMate 743): a multicentre, randomised, open-label, phase 3 trial. Lancet. 397 (10272), 375-386 (2021).
  3. Testa, J. R., Berns, A. Preclinical models of malignant mesothelioma. Frontiers in Oncology. 10, 101 (2020).
  4. Usami, N., et al. Establishment and characterization of four malignant pleural mesothelioma cell lines from Japanese patients. Cancer Science. 97 (5), 387-394 (2006).
  5. Kobayashi, M., Takeuchi, T., Ohtsuki, Y. Establishment of three novel human malignant pleural mesothelioma cell lines: morphological and cytogenetical studies and EGFR mutation status. Anticancer Research. 28 (1), 197-208 (2008).
  6. Chernova, T., et al. Molecular profiling reveals primary mesothelioma cell lines recapitulate human disease. Cell Death and Differentiation. 23 (7), 1152-1164 (2016).
  7. Boj, S. F., et al. Organoid models of human and mouse ductal pancreatic cancer. Cell. 160 (1-2), 324-338 (2015).
  8. Han, A. C., et al. Differential expression of N-cadherin in pleural mesotheliomas and E-cadherin in lung adenocarcinomas in formalin-fixed, paraffin-embedded tissues. Human Pathology. 28 (6), 641-645 (1997).
  9. Tachibana, K. N-cadherin-mediated aggregate formation; cell detachment by Trypsin-EDTA loses N-cadherin and delays aggregate formation. Biochemical and Biophysical Research Communications. 516 (2), 414-418 (2019).
  10. Donnenberg, V. S., Corselli, M., Normolle, D. P., Meyer, E. M., Donnenberg, A. D. Flow cytometric detection of most proteins in the cell surface proteome is unaffected by trypsin treatment. Cytometry A. 93 (8), 803-810 (2018).
  11. Pham, K., et al. Isolation of pancreatic cancer cells from a patient-derived xenograft model allows for practical expansion and preserved heterogeneity in culture. American Journal of Pathology. 186 (6), 1537-1546 (2016).
  12. Derycke, L. D., Bracke, M. E. N-cadherin in the spotlight of cell-cell adhesion, differentiation, embryogenesis, invasion and signalling. International Journal of Developmental Biology. 48 (5-6), 463-476 (2004).
check_url/kr/63374?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Griffiths, T. M., Ramos, C., Haymaker, C. L. Generation and Expansion of Primary, Malignant Pleural Mesothelioma Tumor Lines. J. Vis. Exp. (182), e63374, doi:10.3791/63374 (2022).

View Video