Summary

In vivo Positronemissionstomografi för att avslöja aktivitetsmönster inducerade av djup hjärnstimulering hos råttor

Published: March 23, 2022
doi:

Summary

Vi beskriver en preklinisk experimentell metod för att utvärdera metabolisk neuromodulering inducerad av akut djup hjärnstimulering med in vivo FDG-PET. Detta manuskript innehåller alla experimentella steg, från stereotaxisk kirurgi till tillämpning av stimuleringsbehandlingen och förvärv, bearbetning och analys av PET-bilder.

Abstract

Djup hjärnstimulering (DBS) är en invasiv neurokirurgisk teknik baserad på tillämpningen av elektriska pulser på hjärnstrukturer som är involverade i patientens patofysiologi. Trots DBS långa historia är dess verkningsmekanism och lämpliga protokoll fortfarande oklara, vilket belyser behovet av forskning som syftar till att lösa dessa gåtor. I den meningen representerar utvärdering av in vivo-effekterna av DBS med hjälp av funktionella bildtekniker en kraftfull strategi för att bestämma effekten av stimulering på hjärndynamiken. Här beskrivs ett experimentellt protokoll för prekliniska modeller (Wistar-råttor), kombinerat med en longitudinell studie [18F]-fluorodeoxyclucose positronemissionstomografi (FDG-PET), för att bedöma de akuta konsekvenserna av DBS på hjärnans ämnesomsättning. Först genomgick djur stereotaktisk kirurgi för bilateral implantation av elektroder i prefrontal cortex. En postkirurgisk datortomografi (CT) -skanning av varje djur förvärvades för att verifiera elektrodplacering. Efter en veckas återhämtning förvärvades en första statisk FDG-PET för varje opererat djur utan stimulering (D1), och två dagar senare (D2) förvärvades en andra FDG-PET medan djuren stimulerades. För det var elektroderna anslutna till en isolerad stimulator efter administrering av FDG till djuren. Således stimulerades djuren under FDG-upptagningsperioden (45 min) och registrerade de akuta effekterna av DBS på hjärnans ämnesomsättning. Med tanke på den utforskande karaktären hos denna studie analyserades FDG-PET-bilder med ett voxelmässigt tillvägagångssätt baserat på ett parat T-test mellan D1- och D2-studier. Sammantaget gör kombinationen av DBS- och bildstudier det möjligt att beskriva neuromodulationskonsekvenserna på neurala nätverk, vilket i slutändan hjälper till att avslöja gåtorna kring DBS.

Introduction

Termen neurostimulering omfattar ett antal olika tekniker som syftar till att stimulera nervsystemet med ett terapeutiskt mål1. Bland dem framträder djup hjärnstimulering (DBS) som en av de mest utbredda neurostimuleringsstrategierna i klinisk praxis. DBS består av stimulering av djupa hjärnkärnor med elektriska pulser som levereras av en neurostimulator, implanterad direkt i patientens kropp, genom elektroder placerade i hjärnmålet som ska moduleras genom stereotaktisk kirurgi. Antalet artiklar som utvärderar genomförbarheten av DBS-ansökan vid olika neurologiska och psykiatriska störningar växer kontinuerligt2, även om endast några av dem har godkänts av Food and Drug Association (FDA) (dvs. essentiell tremor, Parkinsons sjukdom, dystoni, tvångssyndrom och medicinskt eldfast epilepsi)3 . Dessutom är ett stort antal hjärnmål och stimuleringsprotokoll under forskning för DBS-behandling av många fler patologier än officiellt godkända, men ingen av dem anses vara definitiva. Dessa inkonsekvenser i DBS-forskning och kliniska förfaranden kan delvis bero på brist på fullständig förståelse för dess verkningsmekanism4. Därför görs enorma ansträngningar för att dechiffrera in vivo-effekterna av DBS på hjärndynamiken, eftersom varje framsteg, hur litet det än är, kommer att hjälpa till att förfina DBS-protokoll för större terapeutisk framgång.

I detta sammanhang öppnar molekylära avbildningstekniker ett direkt fönster för att observera in vivo neuromodulerande effekter av DBS. Dessa tillvägagångssätt ger möjlighet att inte bara bestämma effekterna av DBS medan den tillämpas utan också att avslöja arten av dess konsekvenser, förhindra oönskade biverkningar och klinisk förbättring och till och med anpassa stimuleringsparametrar till patientens behov5. Bland dessa metoder är positronemissionstomografi (PET) med användning av 2-deoxi-2-[18F] fluor-D-glukos (FDG) av särskilt intresse eftersom det ger specifik information i realtid om aktiveringstillståndet för olika hjärnregioner6. Specifikt ger FDG-PET-avbildning en indirekt utvärdering av neural aktivering baserat på den fysiologiska principen om metabolisk koppling mellan neuroner och gliaceller6. I den meningen har flera kliniska studier rapporterat DBS-modulerade hjärnaktivitetsmönster med FDG-PET (se3 för granskning). Icke desto mindre medför kliniska studier lätt flera nackdelar när man fokuserar på patienter, såsom heterogenitet eller rekryteringssvårigheter, vilket starkt begränsar deras forskningspotential6. Detta sammanhang leder forskare att använda djurmodeller av mänskliga tillstånd för att utvärdera biomedicinska tillvägagångssätt före deras kliniska översättning eller, om de redan tillämpas i klinisk praxis, för att förklara det fysiologiska ursprunget till terapeutiska fördelar eller biverkningar. Således, trots de stora avstånden mellan mänsklig patologi och det modellerade tillståndet hos laboratoriedjur, är dessa prekliniska tillvägagångssätt väsentliga för en säker och effektiv övergång till klinisk praxis.

Detta manuskript beskriver ett experimentellt DBS-protokoll för murina modeller, kombinerat med en longitudinell FDG-PET-studie, för att bedöma de akuta konsekvenserna av DBS på hjärnans ämnesomsättning. De resultat som erhålls med detta protokoll kan hjälpa till att avslöja de invecklade modulerande mönster som induceras på hjärnaktivitet av DBS. Därför tillhandahålls en lämplig experimentell strategi för att undersöka in vivo konsekvenserna av stimulering, vilket gör det möjligt för kliniker att förutse terapeutiska effekter under specifika omständigheter och sedan anpassa stimuleringsparametrar till patientens behov.

Protocol

Försök på djur utfördes i enlighet med Europeiska gemenskapernas råds direktiv 2010/63/EU och godkändes av etikkommittén för djurförsök vid sjukhuset Gregorio Marañón. En grafisk sammanfattning av experimentprotokollet visas i figur 1A. 1. Lokalisering av hjärnmål genom in vivo neuroimaging Förberedelse av djurOBS: Wistar-hanråttor på ~300 g användes.Placera djuret i en anestesiinduktionslåda och försegla …

Representative Results

Djuren offrades med hjälp av CO2 i slutet av studien eller när djurets välbefinnande äventyrades. Ett exempel på en fullständig PET/CT-studie från ett opererat djur visas i figur 3. Således kan elektroden som sätts in i råtthjärnan tydligt observeras i CT-bilden som visas i figur 3A. Denna bildmodalitet ger god anatomisk information och underlättar registreringen av FDG-PET-bilder, med tanke på att funktionella modaliteter tenderar att va…

Discussion

Med tanke på framstegen i förståelsen av hjärnans funktion och de neurala nätverk som är involverade i patofysiologin för neuropsykiatriska störningar, erkänner mer och mer forskning potentialen för DBS i ett brett spektrum av neurologiskt baserade patologier2. Verkningsmekanismen för denna terapi är emellertid fortfarande oklar. Flera teorier har försökt förklara effekterna som erhållits under specifika patologiska och stimuleringsförhållanden, men heterogeniteten i de föreslag…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar prof. Christine Winter, Julia Klein, Alexandra de Francisco och Yolanda Sierra för deras ovärderliga stöd i optimeringen av den metod som beskrivs här. MLS stöddes av Ministerio de Ciencia e Innovación, Instituto de Salud Carlos III (projektnummer PI17/01766 och bidragsnummer BA21/0030) som medfinansierades av Europeiska regionala utvecklingsfonden (ERUF), “Ett sätt att skapa Europa”. CIBERSAM (projektnummer CB07/09/0031). Delegación del Gobierno para el Plan Nacional sobre Drogas (projektnummer 2017/085); Fundación Mapfre; och Fundación Alicia Koplowitz.  MCV stöddes av Fundación Tatiana Pérez de Guzmán el Bueno som stipendiat för denna institution och EU: s gemensamma program – Neurodegenerativ sjukdomsforskning (JPND). DRM stöddes av Consejería de Educación e Investigación, Comunidad de Madrid, medfinansierat av Europeiska socialfonden “Investing in your future” (bidragsnummer PEJD-2018-PRE/BMD-7899). NLR stöddes av Instituto de Investigación Sanitaria Gregorio Marañón, “Programa Intramural de Impulso a la I+D+I 2019”. MD-arbetet stöddes av Ministerio de Ciencia e Innovación (MCIN) och Instituto de Salud Carlos III (ISCIII) (PT20/00044). CNIC stöds av Instituto de Salud Carlos III (ISCIII), Ministerio de Ciencia e Innovación (MCIN) och Pro CNIC Foundation, och är ett Severo Ochoa Center of Excellence (SEV-2015-0505).

Materials

7-Tesla Biospec 70/20 scanner Bruker, Germany SN0021 MRI scanner for small animal imaging
Betadine Meda Pharma S.L., Spain 644625.6 Iodine solution (iodopovidone)
Beurer IL 11 Beurer SN87318 Infra-red light
Bipolar cable 50 cm w/50 cm mesh covering up to 100 cm Plastics One, USA 305-305 (CM)
Bipolar cable TT2  50 cm up to 100 cm Plastics One, USA 305-340/2 Bipolar cable TT2  50 cm up to 100 cm
Buprex Schering-Plough, S.A 961425 Buprenorphine (analgesic)
Ceftriaxona Reig Jofré 1g IM Laboratorio Reig Jofré S.A., Spain 624239.1 Ceftriaxone (antibiotic)
Commutator Plastics One, USA SL2+2C 4 Channel Commutator for DBS
Concentric bipolar platinum-iridium electrodes Plastics One, USA MS303/8-AIU/Spc Electrodes for DBS
Driller Bosh T58704 Driller
FDG Curium Pharma Spain S.A., Spain —– 2-[18F]fluoro-2-deoxy-D-glucose (PET radiotracer)
Heating pad DAGA, Spain 23115 Heating pad
Ketolar Pfizer S.L., Spain 776211.9 Ketamine (anesthetic drug)
Lipolasic 2 mg/g Bausch & Lomb S.A, Spain 65277 Ophthalmic lubricating gel
MatLab R2021a The MathWorks, Inc Support software for SPM12
MRIcro McCausland Center for Brain Imaging,  University of South Carolina, USA v2.1.58-0 Software for imaging preprocessing and analysis
Multimodality Workstation (MMWKS) BiiG, Spain Software for imaging processing and analysis
Omicrom VISION VET RGB Medical Devices, Spain 731100 ReV B Cardiorrespiratory monitor for small imaging
Prevex Cotton buds Prevex, Finland —– Cotton buds
Sevorane AbbVie Spain, S.L.U, Spain 673186.4 Sevoflurane (inhalatory anesthesia)
Small screws Max Witte GmbH 1,2 x 2 DIN 84 A2 Small screws
Standard U-Frame Stereotaxic Instrument for Rat, 18° Ear Bar Harvard Apparatus, USA 75-1801 Two-arms Stereotactic frame for rat
Statistical Parametric Mapping (SPM12) The Wellcome Center for Human Neuroimaging, UCL Queen Square Institute of Neurology, UK SPM12 Software for voxel-wise imaging analysis
STG1004 Multi Channel Systems GmbH, Germany STG1004 Isolated stimulator
SuperArgus PET/CT scanner Sedecal, Spain S0026403 NanoPET/CT scanner for small animal imaging
Suture thread with needle, 1/º Lorca Marín S.A., Spain 55325 Braided natural silk non-absorbable suture 1/0, with triangle needle
Technovit 4004 (powder and liquid) Kulzer Technique, Germany 64708471; 64708474 Acrylic dental cement for craniotomy tap
Wistar rats (Rattus norvergicus) Charles River, Spain animal facility Animal model used
Xylagesic Laboratorios Karizoo, A.A, Spain 572599-4 Xylazine (anesthetic drug)
Normon S.A., Spain 602910 Mepivacaine in gel for topical use

References

  1. Gildenberg, P. L. Neuromodulation: A historical perspective. Neuromodulation. 1, 9-20 (2009).
  2. Lee, D. J., Lozano, C. S., Dallapiazza, R. F., Lozano, A. M. Current and future directions of deep brain stimulation for neurological and psychiatric disorders. Journal of Neurosurgery. 131 (2), 333-342 (2019).
  3. Casquero-Veiga, M. Preclinical molecular neuroimaging in deep brain stimulation. Complutense University of Madrid. , (2021).
  4. Blaha, C. D. Theories of deep brain stimulation mechanisms. Deep Brain Stimulation: Indictions and Applications. , 314-338 (2016).
  5. Fins, J. J. Deep brain stimulation: Ethical issues in clinical practice and neurosurgical research. Neuromodulation. 1, 81-91 (2009).
  6. Desmoulin-Canselier, S., Moutaud, B. Animal models and animal experimentation in the development of deep brain stimulation: From a specific controversy to a multidimensional debate. Frontiers in Neuroanatomy. 13, 51 (2019).
  7. Casquero-Veiga, M., Hadar, R., Pascau, J., Winter, C., Desco, M., Soto-Montenegro, M. L. Response to deep brain stimulation in three brain targets with implications in mental disorders: A PET study in rats. PLOS One. 11 (12), 0168689 (2016).
  8. Casquero-Veiga, M., García-García, D., Desco, M., Soto-Montenegro, M. L. Understanding deep brain stimulation: In vivo metabolic consequences of the electrode insertional effect. BioMed Research International. 2018, 1-6 (2018).
  9. Casquero-Veiga, M., García-García, D., Pascau, J., Desco, M., Soto-Montenegro, M. L. Stimulating the nucleus accumbens in obesity: A positron emission tomography study after deep brain stimulation in a rodent model. PLOS One. 13 (9), 0204740 (2018).
  10. Pascau, J., Vaquero, J. J., Abella, M., Cacho, R., Lage, E., Desco, M. Multimodality workstation for small animal image visualization and analysis. Scientific Papers. Molecular Imaging and Biology. 8, 97-98 (2006).
  11. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (1998).
  12. Roy, M., et al. A dual tracer PET-MRI protocol for the quantitative measure of regional brain energy substrates uptake in the rat. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (82), e50761 (2013).
  13. Klein, J., et al. A novel approach to investigate neuronal network activity patterns affected by deep brain stimulation in rats. Journal of Psychiatric Research. 45 (7), 927-930 (2011).
  14. Soto-Montenegro, M. L., Pascau, J., Desco, M. Response to deep brain stimulation in the lateral hypothalamic area in a rat model of obesity: In vivo assessment of brain glucose metabolism. Molecular Imaging and Biology. , 830-837 (2014).
  15. Pascau, J., et al. Automated method for small-animal PET image registration with intrinsic validation. Molecular Imaging and Biology. 11 (2), 107-113 (2009).
  16. Andersson, J. L. R. How to estimate global activity independent of changes in local activity. Neuroimage. 244 (60), 237-244 (1997).
  17. . Wellcome Trust Centre for Neuroimaging SPM12-Statitstical Parametric Mapping Available from: https://www.fil.ion.ucl.ac.uk/spm/software/spm12/ (2022)
  18. Lozano, A. M., et al. Deep brain stimulation: current challenges and future directions. Nature Reviews Neurology. 15 (3), (2019).
  19. Boecker, H., Drzezga, A. A perspective on the future role of brain pet imaging in exercise science. NeuroImage. 131, (2016).
  20. Sprengers, M., et al. Deep brain stimulation reduces evoked potentials with a dual time course in freely moving rats: Potential neurophysiological basis for intermittent as an alternative to continuous stimulation. Epilepsia. 61 (5), 903-913 (2020).
  21. Middlebrooks, E. H., et al. Acute brain activation patterns of high- versus low-frequency stimulation of the anterior nucleus of the thalamus during deep brain stimulation for epilepsy. Neurosurgery. 89 (5), 901-908 (2021).
  22. Ashkan, K., Rogers, P., Bergman, H., Ughratdar, I. Insights into the mechanisms of deep brain stimulation. Nature Reviews Neurology. 13 (9), 548-554 (2017).
  23. Williams, N. R., Taylor, J. J., Lamb, K., Hanlon, C. A., Short, E. B., George, M. S. Role of functional imaging in the development and refinement of invasive neuromodulation for psychiatric disorders. World Journal of Radiology. 6 (10), 756-778 (2014).
  24. Rodman, A. M., Dougherty, D. D. . Nuclear medicine in neuromodulation. Neuromodulation in Psychiatry. , 81-99 (2016).
  25. Albaugh, D. L., Shih, Y. -. Y. I. Neural circuit modulation during deep brain stimulation at the subthalamic nucleus for Parkinson’s disease: what have we learned from neuroimaging studies. Brain Connectivity. 4 (1), 1-14 (2014).
  26. Mayberg, H. S., et al. Reciprocal limbic-cortical function and negative mood: Converging PET findings in depression and normal sadness. Neurology, and Radiology. 156 (5), 675-682 (1999).
  27. Kennedy, S. H., et al. Differences in brain glucose metabolism between responders to CBT and Venlafaxine in a 16-week randomized controlled trial. American Journal of Psychiatry. 164 (5), 778-788 (2007).
  28. Kennedy, S. H., et al. Changes in regional brain glucose metabolism measured with positron emission tomography after paroxetine treatment of major depression. American Journal of Psychiatry. 158 (6), 899-905 (2001).
  29. Brown, E. C., Clark, D. L., Forkert, N. D., Molnar, C. P., Kiss, Z. H. T., Ramasubbu, R. Metabolic activity in subcallosal cingulate predicts response to deep brain stimulation for depression. Neuropsychopharmacology. 45, 1681-1688 (2020).
  30. Klooster, D. C. W., et al. Technical aspects of neurostimulation: Focus on equipment, electric field modeling, and stimulation protocols. Neuroscience & Biobehavioral Reviews. 65, 113-141 (2016).
  31. Kasoff, W., Gross, R. E. Deep brain stimulation: Introduction and Technical Aspects. Neuromodulation in Psychiatry. , 245-275 (2016).
  32. Perez-Caballero, L., et al. Early responses to deep brain stimulation in depression are modulated by anti-inflammatory drugs. Molecular Psychiatry. 19, 607-614 (2014).
  33. Solera Ruiz, I., UñaOrejón, R., Valero, I., Laroche, F. Craniotomy in the conscious patient. Considerations in special situations. Spanish Journal of Anesthesiology and Resuscitation. 60 (7), 392-398 (2013).
  34. Casali, M., et al. State of the art of 18F-FDG PET/CT application in inflammation and infection: a guide for image acquisition and interpretation. Clinical and Translational Imaging. 9 (4), 299-339 (2021).
  35. Gonzalez-Escamilla, G., Muthuraman, M., Ciolac, D., Coenen, V. A., Schnitzler, A., Groppa, S. Neuroimaging and electrophysiology meet invasive neurostimulation for causal interrogations and modulations of brain states. NeuroImage. 220, 117144 (2020).
check_url/kr/63478?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Casquero-Veiga, M., Lamanna-Rama, N., Romero-Miguel, D., Desco, M., Soto-Montenegro, M. L. In vivo Positron Emission Tomography to Reveal Activity Patterns Induced by Deep Brain Stimulation in Rats. J. Vis. Exp. (181), e63478, doi:10.3791/63478 (2022).

View Video