Summary

formulere og karakterisere et eksosombasert dopaminbærersystem

Published: April 04, 2022
doi:

Summary

Her hadde vi som mål å oppnå en formulering ved dopaminbelastning av de isolerte eksosomene av stamceller fra Whartons gelémesenkymale stamceller. Eksosomisolering og karakterisering, legemiddelbelastning i de resulterende eksosomene og den cytotoksiske aktiviteten til den utviklede formuleringen er beskrevet i denne protokollen.

Abstract

Eksosomer mellom 40 og 200 nm i størrelse utgjør den minste undergruppen av ekstracellulære vesikler. Disse bioaktive vesiklene utskilt av celler spiller en aktiv rolle i intercellulær last og kommunikasjon. Exosomer finnes for det meste i kroppsvæsker som plasma, cerebrospinalvæske, urin, spytt, fostervann, råmelk, morsmelk, leddvæske, sæd og pleurasyre. Tatt i betraktning størrelsen på eksosomer, antas det at de kan spille en viktig rolle i sykdommer i sentralnervesystemet fordi de kan passere gjennom blod-hjernebarrieren (BBB). Derfor har denne studien som mål å utvikle et eksosombasert nanobærersystem ved å innkapsle dopamin i eksosomer isolert fra Whartons gelé mesenkymale stamceller (WJ-MSCs). Exosomer som passerte karakteriseringsprosessen ble inkubert med dopamin. De dopaminbelastede eksosomene ble rekarakterisert ved slutten av inkubasjonen. Dopaminbelastede eksosomer ble undersøkt i medikamentfrigivelses- og cytotoksisitetstester. Resultatene viste at dopamin kunne bli vellykket innkapslet i eksosomene, og at de dopaminbelastede eksosomene ikke påvirket fibroblastens levedyktighet.

Introduction

Exosomer, bioaktive vesikler med betydelige egenskaper, varierer i størrelse fra 40 nm til 200 nm. Exosomer stammer fra cellemembranen og dannes på grunn av frigjøring av endosomene1. Disse strukturene tjener som celle-til-celle-kommunikatorer og interagerer med naboceller for å lette overføringen av aktive molekyler. Exosomer kan isoleres fra mange forskjellige kilder. Disse inkluderer kroppsvæsker som plasma, urin, cerebrospinalvæske, spytt, samt cellelinjer dyrket under in vitro-forhold . Eksosomer har en viktig rolle i eliminering av nerveskader, takket være biomakromolekylene de inneholder, som lipider, proteiner og nukleinsyrer2. Glia, som er støttecellene i nervesystemet3, overfører proteiner og mikro-RNA til aksonene til nevroner via eksosomer4.

Lipider som danner myelinskjeden, som er et karakteristisk trekk ved nerveledning, frigjøres også fra oligodendrocytter via eksosomer 4,5. Exosomer er også involvert i prosesser som synaptisk plastisitet, neuronal stressrespons, celle-cellekommunikasjon og neurogenese i hjernen 6,7. Det faktum at eksosomer har nano-dimensjoner gjør at de kan passere gjennom BBB. Det er en spesiell overgangsrute fra interstitialvæsken til cerebrospinalvæsken etter penetrering av denne membranen8. Takket være overflateegenskapene kan eksosomer samhandle effektivt med målceller som et legemiddelleveringssystem og aktivt levere de lastede legemidlene.

På grunn av ekspresjonen av forskjellige klebende proteiner (tetraspaniner og integriner) på overflaten av eksosomer, kan disse ekstracellulære vesiklene lett samhandle og smelte sammen med vertscellemembraner9. Det antas at eksosomer kan brukes som et legemiddelleveringssystem, spesielt ved behandling av sykdommer i sentralnervesystemet på grunn av deres evne til å trenge inn i BBB og deres overflateegenskaper. Mesenkymale stamcelle (MSC)-avledede eksosomer har lavere risiko for immunavstøtning sammenlignet med allogene cellulære terapier, og i denne forbindelse kan de være en viktig komponent i cellefrie behandlingsapplikasjoner10.

Dopamin er et molekyl hvis mangel i hjernen er det karakteristiske trekk ved Parkinsons sykdom (PD), forverres dagfor dag 11,12,13. Det er kjent at PD er assosiert med degenerasjon av dopaminerge nevroner i substantia nigra av mesencephalon og tap av motorneuronfunksjoner14,15. Døden av dopaminerge nevroner forhindrer tilførsel av nevrotransmitteren dopamin til hjernens striatum. Dette resulterer igjen i fremveksten av PD-spesifikke symptomer16. Disse symptomene på PD er bradykinesi, postural ustabilitet, stivhet og spesielt hviletremor12,13. Selv om PD først ble beskrevet for mer enn to århundrer siden, pågår studier for å forstå sykdommens patologi og etiologi fortsatt, og det er for tiden akseptert at PD er en kompleks systemisk sykdom17. Det er spådd at dopaminmangel oppstår, og kliniske PD-symptomer observeres når mer enn 80% av nevronene degenererer18. Ved behandling av sykdommen foretrekkes ufullstendig dopamintilskudd for å redusere motoriske symptomer. In vivo studier har vist at direkte infusjon av dopamin i hjernen signifikant reduserer symptomer hos dyr19. Dopaminforløpere som L-DOPA (L-3,4-dihydroksyfenylalanin) og dopaminreseptormedikamenter brukes i klinikken fordi direkte infusjon av dopamin i hjernen ikke er mulig hos mennesker og dopamin som kommer inn i systemet ikke kan krysse BBB20. Disse typer stoffer mister sin effektivitet over tid. Imidlertid er det fortsatt ingen kurativ behandlingstilnærming for PD. Derfor er det et stort behov for å utvikle nye terapeutiske strategier og behandlingsmodaliteter for å avsløre patofysiologien til sykdommen og redusere virkningen av PD på pasienter.

Eksosombaserte studier har nylig fått oppmerksomhet for å samle informasjon om både terapeutiske tilnærminger og patologier av sykdommer i nervesystemet. MSC-avledede eksosomer har vist seg å redusere betennelse i nerveskader og bidra til nevronregenerering21,22,23. I tillegg har det blitt rapportert at MSC-avledede eksosomsekretamer reduserer apoptose ved å vise nevrotrofiske og nevrobeskyttende effekter, spesielt på dopaminerge nevroner24,25. Forskning på plattformer der eksosomer brukes som terapeutiske legemiddelleveringssystemer har intensivt akselerert de siste årene. I mange studier har det blitt observert at relevante legemidler lett kan innkapsles i eksosomer og leveres trygt inn i målceller, vev og organer26,27. Ulike metoder som inkubasjon, fryse / tine sykluser, sonikering og ekstrudering kan brukes til legemiddelbelastning i eksosomer28.

Coincubation med eksosomer eller eksosomlignende vesikler gjør at lipofile små molekyler kan passivt innkapsles i disse leveringssystemene28,29,30. Spesielt ble forskjellige molekyler som curcumin 31, katalase 30, doksorubicin32 og paklitaksel33 effektivt lastet inn i eksosomer. Det har blitt observert at katalaseholdige eksosomer, som har antioksidantaktivitet, effektivt akkumuleres i nevronene og mikroglialcellene i hjernen og viste sterke nevrobeskyttende aktiviteter30. I den samme studien, saponin, lagt inn i komplekset for å øke belastningseffektiviteten, ble funnet å øke stoffbelastningsprosenten under inkubasjon30,34. Imidlertid er det behov for ytterligere studier for å etablere standarder for legemiddelbelastning i eksosomer.

Denne artikkelen beskriver utviklingen av et nanobærersystem ved innkapsling av dopamin i eksosomer som ble isolert fra WJ-MSC. Alle trinn, inkludert dyrking av WJ-MSC, isolering og karakterisering av eksosomer, legemiddelbelastningseksperimenter, karakterisering av dopaminbelastede eksosomer med forskjellige teknikker og in vitro cytotoksisitetsanalyse er forklart i detalj.

Protocol

MERK: Se materialfortegnelsen for detaljer relatert til alle materialer og utstyr som brukes i denne protokollen. 1. Dyrking og kryopreservering av Whartons gelé mesenkymale stamceller Fjern WJ-MSC (fra ATCC) fra fryseren ved -80 °C. Frø cellene til en kolbe som inneholder DMEM-F12 medium supplert med 10% føtal bovint serum (FBS). Inkuber dem ved 37 ° C i en inkubator som inneholder 5% CO2. Endre kulturmediet hver 2. Pass ce…

Representative Results

Eksosomisolasjon og karakteriseringWharton gelé stamceller dyrkes og inkuberes i et serumfritt medium i 48 timer når kulturen når tilstrekkelig tetthet. Etter endt inkubasjon lagres supernatanten ved -20 °C. De innsamlede supernatantene fortynnes med PBS og utsettes for ultrasentrifugering (figur 1). Den oppnådde løsningen analyseres ved NTA- og DLS-analyser. Eksosomene steriliseres ved å passere gjennom et 0, 22 μm filter. Den gjennomsnittlige størrelsen på d…

Discussion

Eksosomer er små membranvesikler med dimensjoner på 40-200 nm som skilles ut av de fleste celletyper, for eksempel MSC1. I stand til å muliggjøre kommunikasjon mellom celler, kan eksosomer komme inn i celler på forskjellige måter som endocytose, fagocytose, mikropinocytose, lipidmediert internalisering og fusjon 33,44. Sammenlignet med andre nanobærersystemer, gir lipidene og kolesterolet som finnes på eksosomoverflaten evnen til ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbeidet ble primært støttet av forskningsmidler fra Yıldız Technical University Scientific Research Projects (TSA-2021-4713).

Materials

0.22 µm membrane filter Aisimo Used for the sterilization process
0.45 µm syringe filter Aisimo Used for the sterilization process
15 mL Falcon tube Nest Used in cell culture step
25 cm2 cell culture flasks (Falcon, TPP tissue culture flasks Nest Used in cell culture step
50 mL Falcon tube Nest Used in cell culture step
75 cm2 cell culture flasks (Falcon, TPP tissue culture flasks Nest Used in cell culture step
96 well plates (Falcon, TPP microplates) Merck Millipore Used in cell culture step
Acetonitrile Sigma 271004-1L Used for HPLC analysis
Autoclave NUVE-OT 90L Used for the sterilization process
Cell Culture Cabin Hera Safe KS Used for the cell culture process
Centrifugal Hitachi CF16RN Used in the exosome isolation step
CO2 incubator with Safe Cell UV Panasonic Used for the cell culture process
Dopamine hydrochloride H8502-10G Sigma H8502-10G Used in exosome dopamine loading
Dulbecco's Modified Eagle's Medium/Nutrient Mixture-F12 Sigma RNBJ7249 Used as cell culture medium
Fetal Bovine Serum-FBS Capricorn FBS-16A It was used by adding to the cell culture medium.
Freezer -80 °C Panasonic MDF-U5386S-PE To store cells and the resulting exosomes
Fridge Panasonic MPR-215-PE Used to store cell culture and other materials
High performance liquid chromatography-HPLC Agilent Technologies The presence of dopamine from the content of the obtained formulation was investigated.
Microscope- Primovert Zeiss Used to observe cells in cell culture.
MTT Assay Biomatik Used to measure cell viability
NanoSight NS300 Malvern panalytical Malvern panalytical Used for exosome characterization
Optima XPN-100 Ultracentrifuge Beckman Coulter Used in the exosome isolation step
PBS tablet Biomatik 43602 In the preparation of the PBS solution
Penicilin/Streptomycin Solution Capricorn PB-S It was added to the medium to prevent contamination in cell culture.
Pipette Aid Isolab
Precision balance-Kern Kern-ABJ220-4NM Used in the preparation of solutions
Q500 Sonicator Qsonica, LLC Used to digest exosomes in HPLC analysis
Saponin Sigma 47036-50G-F It was used by adding it to the total solution in the exosome dopamine loading process.
Spectrostar-Nano-Spectrophotometry BMG LABTECH Used for MTT and drug release analyzes
SPSS 22 statistical package program
Vorteks-FinePCR FinePCR-FineVortex Used to mix solutions homogeneously
Water Bath 37 °C-Senova Senova Used in cell culture step
Wharton’s jelly mesenchymal stem cells ATCC
ZetaSizer Malvern Nano ZS Malvern Nano ZS Used for exosome characterization

References

  1. Ingato, D., Lee, J. U., Sim, S. L., Kwon, Y. L. Good things come in small packages: Overcoming challenges to harness extracellular vesicles for therapeutic delivery. Journal of Controlled Release. 241, 174-185 (2016).
  2. Riazifar, M., et al. Stem cell-derived exosomes as nanotherapeutics for autoimmune and neurodegenerative disorders. ACS Nano. 13 (6), 6670-6688 (2019).
  3. Ursavaş, S., Darıci, H., Karaoz, E. Olfactory ensheathing cells: Unique glial cells promising for treatments of spinal cord injury. Journal of Neuroscience Research. 99 (6), 1579-1597 (2021).
  4. Skog, J., et al. Glioblastoma microvesicles transport RNA and proteins that promote tumour growth and provide diagnostic biomarkers. Nature Cell Biology. 10 (12), 1470-1476 (2008).
  5. Fruhbeis, C., Frohlich, D., Kramer-Albers, E. M. Emerging roles of exosomes in neuron-glia communication. Frontiers in Physiology. 3 (119), 1-7 (2012).
  6. Qing, L., Chen, H., Tang, J., Jia, X. Exosomes and their microRNA cargo: new players in peripheral nerve regeneration. Neurorehabil Neural Repair. 32 (9), 765-776 (2018).
  7. Saeedi, S., Israel, S., Nag, C., Turecki, G. The emerging role of exosomes in mental disorders. Translational Psychiatry. 9 (1), 122 (2019).
  8. Jan, A. T., et al. Perspective insights of exosomes in neurodegenerative diseases: A critical appraisal. Frontiers in Aging Neuroscience. 9, 317 (2017).
  9. Montecalvo, A., et al. Mechanism of transfer of functional microRNAs between mouse dendritic cells via exosomes. Blood. 119 (3), 756-766 (2012).
  10. Yu, B., Zhang, X., Li, X. Exosomes derived from mesenchymal stem cells. International Journal of Molecular Sciences. 15 (3), 4142-4157 (2014).
  11. Pahuja, R., et al. Trans-blood brain barrier delivery of dopamine-loaded nanoparticles reverses functional deficits in Parkinsonian rats. ACS Nano. 9 (5), 4850-4871 (2015).
  12. Rao, S. S., Hofmann, L. A., Shakil, A. Parkinson’s disease: Diagnosis and treatment. American Family Physician. 15 (74), 2046-2054 (2006).
  13. Teves, J. M. Y., et al. Parkinson’s disease skin fibroblasts display signature alterations in growth, redox homeostasis, mitochondrial function, and autophagy. Frontiers Neuroscience. 11, 737 (2017).
  14. Kalia, L. V., Lang, A. E. Parkinson disease in 2015: Evolving basic, pathological and clinical concepts in PD. Nature Reviews Neurology. 12 (2), 65-66 (2016).
  15. Poewe, W., et al. Parkinson disease. Nature Reviews Disease Primers. 3, 17013 (2017).
  16. Carlsson, T., Björklund, T. Restoration of the striatal dopamine synthesis for Parkinson’s disease: Viral vector-mediated enzyme replacement strategy. Current Gene Therapy. 7 (2), 109-120 (2007).
  17. Simon, D. K., Tanner, C. M., Brundin, P. Parkinson disease epidemiology, pathology, genetics, and pathophysiology. Clinics in Geriatric Medicine. 36 (1), 1-12 (2020).
  18. Salat, D., Tolosa, E. Levodopa in the treatment of Parkinson’s disease: Current status and new developments. Journal of Parkinson’s Disease. 3 (3), 255-269 (2013).
  19. Senthilkumar, K. S., et al. Unilateral implantation of dopamine-loaded biodegradable hydrogel in the striatum attenuates motor abnormalities in the 6-Hydroxydopamine model of Hemi-Parkinsonism. Behavioral Brain Research. 184 (1), 11-18 (2007).
  20. Krishna, R., Ali, M., Moustafa, A. A. Effects of combined MAO-B inhibitors and levodopa vs. monotherapy in Parkinson’s disease. Frontiers Aging Neuroscience. 6, 180 (2014).
  21. Armstrong, M. J., Okun, M. S. Diagnosis and treatment of Parkinson disease: A review. JAMA. 323 (6), 548-560 (2020).
  22. Rivero Vaccari, J. P. Exosome-mediated inflammasome signaling after central nervous system injury. Journal of Neurochemistry. 136, 39-48 (2016).
  23. Han, D., Wu, C., Xiong, Q., Zhou, L., Tian, Y. Anti-inflammatory mechanism of bone marrow mesenchymal stem cell transplantation in rat model of spinal cord injury. Cell Biochemistry and Biophysics. 71 (3), 1341-1347 (2015).
  24. Vilaça-Faria, H., Salgado, A. J., Teixeira, F. G. Mesenchymal stem cells-derived exosomes: A new possible therapeutic strategy for Parkinson’s disease?. Cells. 8 (2), 118-135 (2019).
  25. Mendes-Pinheiro, B., et al. marrow mesenchymal stem cells secretome exerts neuroprotective effects in a Parkinson’s disease rat model. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 7, 294 (2019).
  26. Kalani, A., Kamat, P. K., Chaturvedi, P., Tyagi, S. C., Tyagi, N. Curcumin-primed exosomes mitigate endothelial cell dysfunction during hyperhomocysteinemia. Life Sciences. 107 (1-2), 1-7 (2014).
  27. Kalani, A., Tyagi, A., Tyagi, N. Exosomes: Mediators of neurodegeneration, neuroprotection, and therapeutics. Molecular Neurobiology. 49 (1), 590-600 (2014).
  28. Jamur, M. C., Oliver, C. Permeabilization of cell membranes. Methods in Molecular Biology. 588, 63-66 (2010).
  29. Rani, S., Ryan, A. E., Griffin, M. D., Ritter, T. Mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles: Toward cell-free therapeutic applications. Molecular Therapy. 23 (5), 812-823 (2015).
  30. Haney, M. J., et al. Exosomes as drug delivery vehicles for Parkinson’s disease therapy. Journal of Controlled Release. 207, 18-30 (2015).
  31. Sun, D., et al. A novel nanoparticle drug delivery system: The anti-inflammatory activity of curcumin is enhanced when encapsulated in exosomes. Molecular Therapy. 18 (9), 1606-1614 (2010).
  32. Tian, Y., et al. A doxorubicin delivery platform using engineered natural membrane vesicle exosomes for targeted tumor therapy. Biomaterials. 35 (7), 2383-2390 (2014).
  33. Yang, T., et al. Exosome delivered anticancer drugs across the blood-brain barrier for brain cancer therapy in danio rerio. Pharmaceutical Research. 32 (6), 2003-2014 (2015).
  34. Chen, H. X., et al. Exosomes derived from mesenchymal stem cells repair a Parkinson’s disease model by inducing autophagy. Cell Death Disease. 11 (4), 288 (2020).
  35. Yu, F., et al. Olfactory ensheathing cells seeded decellularized scaffold promotes axonal regeneration in spinal cord injury rats. Journal of Biomedical Materials Research. 109 (5), 779-787 (2020).
  36. Coughlan, C., et al. Exosome isolation by ultracentrifugation and precipitation and techniques for downstream analyses. Current Protocols in Cell Biology. 88 (1), 110 (2020).
  37. Qu, M., et al. Dopamine-loaded blood exosomes targeted to brain for better treatment of Parkinson’s disease. Journal of Controlled Release. 287, 156-166 (2018).
  38. Kim, M. S., et al. Development of exosome-encapsulated paclitaxel to overcome MDR In cancer cells. Nanomedicine: Nanotechnology, Biology, and Medicine. 12 (3), 655-664 (2016).
  39. Branquinho, R. T., et al. HPLC-DAD and UV-spectrophotometry for the determination of lychnopholide in nanocapsule dosage form: Validation and application to release kinetic study. Journal of Chromatographic Science. 52 (1), 19-26 (2014).
  40. Karagöz Kutlutürk, I., et al. Producing aflibercept loaded poly (lactic-co-glycolic acid) [PLGA] nanoparticles as a new ocular drug delivery system and its challenges. Fresenius Environmental Bulletin. 30 (2), 1481-1493 (2021).
  41. Setiawatie, E. M., et al. Viability of nigella sativa toothpaste with SLS compared non-SLS on fibroblast cell culture. Journal of International Dental and Medical Research. 14 (2), 525-528 (2021).
  42. Jebelli, A., Khalaj-Kondori, M., Rahmati-Yamchi, M. The effect of beta-boswellic acid on the expression of Camk4 and Camk2α genes in the PC12 cell line. Advanced Pharmaceutical Bulletin. 10 (3), 437-443 (2020).
  43. Cantelmo, R. A., Santos, N. A., Santos, A. C., Regiane, S., Joca, L. Dual effects of S-Adenosyl-Methionine on Pc12 cells exposed to the dopaminergic neurotoxin MPP. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 72 (10), 1427-1435 (2020).
  44. Mulcahy, L. A., Pink, R. C., Carter, D. R. Routes and mechanisms of extracellular vesicle uptake. Journal of Extracell Vesicles. 3, (2014).
  45. Kooijmans, S. A., Vader, P., van Dommelen, S. M., van Solinge, W. W., Schiffelers, R. M. Exosome mimetics: A novel class of drug delivery systems. International Journal of Nanomedicine. 7 (1), 1525-1541 (2012).
  46. Yuan, Z., Kolluri, K. K., Gowers, K. H., Janes, S. M. Trail delivery by MSC-derived extracellular vesicles is an effective anticancer therapy. Journal Extracell Vesicles. 6 (1), 1265291 (2017).
  47. Darici, H., Sun, E., Koyuncu-Irmak, D., Karaöz, E., Khan, M. Mesenchymal stem cells for the treatment of COVID-19: Why and when they should be used? in Human Mesenchymal Stem Cells. Journal of Stem Cells. 4 (15), 159-181 (2021).
  48. Koyuncu-Irmak, D., Darici, H., Karaoz, E. Stem cell-based therapy option in COVID-19: Is it promising?. Aging and Disease. 11 (5), 1174-1191 (2020).
  49. Leblanc, P., et al. Isolation of exosomes and microvesicles from cell culture systems to study prion transmission. Exosomes Microvesicles. 1545, 153-176 (2017).
  50. Fuhrmann, G., Serio, A., Mazo, M., Nair, R., Stevens, M. M. Active loading into extracellular vesicles significantly improves the cellular uptake and photodynamic effect Of porphyrins. Journal of Control Release. 205, 35-44 (2015).
  51. Mehryab, F., et al. Exosomes as a next-generation drug delivery system: An update on drug loading approaches, characterization, and clinical application challenges. Acta Biomaterialia. 113, 42-62 (2020).
  52. Zhang, Y., et al. Exosome: A review of its classification, isolation techniques, storage, diagnostic and targeted therapy applications. International Journal of Nanomedicine. 15, 6917-6934 (2020).
check_url/kr/63624?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Yavuz, B., Darici, H., Zorba Yildiz, A. P., Abamor, E. Ş., Topuzoğullari, M., Bağirova, M., Allahverdiyev, A., Karaoz, E. Formulating and Characterizing an Exosome-based Dopamine Carrier System. J. Vis. Exp. (182), e63624, doi:10.3791/63624 (2022).

View Video