Summary

Formulering och karakterisering av ett exosombaserat dopaminbärarsystem

Published: April 04, 2022
doi:

Summary

Här syftade vi till att erhålla en formulering genom dopaminladdning av de isolerade exosomerna av stamceller från Whartons gelémesenkymala stamceller. Exosomisolering och karakterisering, läkemedelsladdning i de resulterande exosomerna och den cytotoxiska aktiviteten hos den utvecklade formuleringen beskrivs i detta protokoll.

Abstract

Exosomer mellan 40 och 200 nm i storlek utgör den minsta undergruppen av extracellulära vesiklar. Dessa bioaktiva vesiklar som utsöndras av celler spelar en aktiv roll i intercellulär last och kommunikation. Exosomer finns främst i kroppsvätskor som plasma, cerebrospinalvätska, urin, saliv, fostervatten, råmjölk, bröstmjölk, ledvätska, sperma och pleurasyra. Med tanke på exosomernas storlek tror man att de kan spela en viktig roll vid sjukdomar i centrala nervsystemet eftersom de kan passera genom blod-hjärnbarriären (BBB). Därför syftade denna studie till att utveckla ett exosombaserat nanobärarsystem genom att kapsla in dopamin i exosomer isolerade från Whartons gelémesenkymala stamceller (WJ-MSC). Exosomer som klarade karakteriseringsprocessen inkuberades med dopamin. De dopaminladdade exosomerna omkarakteriserades i slutet av inkubationen. Dopaminladdade exosomer undersöktes i läkemedelsfrisättnings- och cytotoxicitetsanalyser. Resultaten visade att dopamin framgångsrikt kunde kapslas in i exosomerna och att de dopaminladdade exosomerna inte påverkade fibroblasternas viabilitet.

Introduction

Exosomer, bioaktiva vesiklar med betydande egenskaper, varierar i storlek från 40 nm till 200 nm. Exosomer härstammar från cellmembranet och bildas på grund av frisättningen av endosomerna1. Dessa strukturer fungerar som cell-till-cell-kommunikatörer och interagerar med närliggande celler för att underlätta överföringen av aktiva molekyler. Exosomer kan isoleras från många olika källor. Dessa inkluderar kroppsvätskor som plasma, urin, cerebrospinalvätska, saliv samt cellinjer odlade under in vitro-förhållanden . Exosomer har en viktig roll i elimineringen av nervskador, tack vare de biomakromolekyler de innehåller, såsom lipider, proteiner och nukleinsyror2. Glia, som är stödcellerna i nervsystemet3, överför proteiner och mikro-RNA till nervcellernas axoner via exosomer4.

Lipider som bildar myelinskidan, som är ett karakteristiskt drag i nervledning, frisätts också från oligodendrocyter via exosomer 4,5. Exosomer är också involverade i processer som synaptisk plasticitet, neuronal stressrespons, cell-cell-kommunikation och neurogenes i hjärnan 6,7. Det faktum att exosomer har nanodimensioner gör det möjligt för dem att passera genom BBB. Det finns en speciell övergångsväg från interstitialvätskan till cerebrospinalvätskan efter att ha penetrerat detta membran8. Tack vare sina ytegenskaper kan exosomer interagera effektivt med målceller som ett system för läkemedelstillförsel och aktivt leverera de laddade läkemedlen.

På grund av uttrycket av olika vidhäftande proteiner (tetraspaniner och integriner) på exosomernas yta kan dessa extracellulära vesiklar lätt interagera och smälta samman med värdcellmembran9. Man tror att exosomer kan användas som ett system för läkemedelstillförsel, särskilt vid behandling av sjukdomar i centrala nervsystemet på grund av deras förmåga att tränga igenom BBB och deras ytegenskaper. Mesenkymala stamceller (MSC)-härledda exosomer har en lägre risk för immunavstötning jämfört med allogena cellterapier, och i detta avseende kan de vara en viktig komponent i cellfria behandlingsapplikationer10.

Dopamin är en molekyl vars brist i hjärnan är det karakteristiska kännetecknet för Parkinsons sjukdom (PD), som förvärras dag för dag11,12,13. Det är känt att PD är associerat med degeneration av dopaminerga neuroner i substantia nigra av mesencephalon och förlust av motorneuronfunktioner14,15. Döden av dopaminerga nervceller förhindrar tillförseln av signalsubstansen dopamin till hjärnans striatum. Detta resulterar i sin tur i uppkomsten av PD-specifika symtom16. Dessa symtom på PD är bradykinesi, postural instabilitet, stelhet och särskilt vilotremor12,13. Även om PD först beskrevs för mer än två århundraden sedan, pågår fortfarande studier för att förstå sjukdomens patologi och etiologi och det är för närvarande accepterat att PD är en komplex systemisk sjukdom17. Det förutspås att dopaminbrist uppstår, och kliniska PD-symtom observeras när mer än 80 % av neuronerna degenererar18. Vid behandling av sjukdomen är ofullständigt dopamintillskott att föredra för att minska motoriska symtom. In vivo-studier har visat att direkt infusion av dopamin i hjärnan avsevärt minskar symtomen hos djur19. Dopaminprekursorer som L-DOPA (L-3,4-dihydroxifenylalanin) och dopaminreceptorläkemedel används i kliniken eftersom den direkta infusionen av dopamin i hjärnan inte är möjlig hos människor och dopamin som kommer in i systemet inte kan passera BBB20. Dessa typer av läkemedel förlorar sin effektivitet med tiden. Det finns dock fortfarande ingen botande behandlingsmetod för Parkinsons sjukdom. Därför finns det ett stort behov av att utveckla nya terapeutiska strategier och behandlingsmetoder för att avslöja sjukdomens patofysiologi och minska effekterna av PD på patienter.

Exosombaserade studier har nyligen uppmärksammats för att samla in information om både terapeutiska metoder och patologier för sjukdomar i nervsystemet. MSC-härledda exosomer har visat sig minska inflammation i nervskador och bidra till neuronal regenerering21,22,23. Dessutom har det rapporterats att MSC-härledda exosomsekretomer minskar apoptos genom att visa neurotrofiska och neuroprotektiva effekter, särskilt på dopaminerga neuroner24,25. Forskningen om plattformar där exosomer används som terapeutiska system för läkemedelstillförsel har accelererat intensivt de senaste åren. I många studier har det observerats att relevanta läkemedel lätt kan kapslas in i exosomer och levereras säkert till målceller, vävnader och organ26,27. Olika metoder såsom inkubation, frysning/upptining cykler, ultraljudsbehandling och extrudering kan användas för läkemedelsladdning i exosomer28.

Sammanföring med exosomer eller exosomliknande vesiklar gör det möjligt för lipofila små molekyler att passivt kapslas in i dessa leveranssystem28,29,30. I synnerhet laddades olika molekyler som curcumin31, katalas 30, doxorubicin 32 och paklitaxel33 effektivt in i exosomer. Det har observerats att exosomer som innehåller katalas, som har antioxidantaktivitet, effektivt ackumulerades i neuroner och mikrogliaceller i hjärnan och uppvisade starka neuroprotektiva aktiviteter30. I samma studie visade det sig att saponin, som tillsattes i komplexet för att öka laddningseffektiviteten, ökade läkemedelsladdningsprocenten under inkubation30,34. Ytterligare studier behövs dock för att fastställa standarderna för läkemedelsladdning i exosomer.

Denna artikel beskriver utvecklingen av ett nanobärarsystem genom inkapsling av dopamin i exosomer som isolerades från WJ-MSC. Alla steg, inklusive odling av WJ-MSCs, isolering och karakterisering av exosomer, läkemedelsladdningsexperiment, karakterisering av dopaminladdade exosomer med olika tekniker och in vitro cytotoxicitetsanalys förklaras i detalj.

Protocol

OBS: Se materialtabellen för detaljer relaterade till alla material och utrustning som används i detta protokoll. 1. Odling och kryokonservering av Whartons gelémesenkymala stamceller Ta bort WJ-MSC (från ATCC) från frysen -80 °C. Frö cellerna i en kolv som innehåller DMEM-F12 medium kompletterat med 10 % fetalt bovint serum (FBS). Inkubera dem vid 37 °C i en inkubator som innehåller 5 % CO2 . Byt odlingsmedium varannan…

Representative Results

Exosomisolering och karakteriseringWharton geléstamceller odlas och inkuberas i ett serumfritt medium i 48 timmar när kulturen når tillräcklig densitet. Efter inkubationens slut förvaras supernatanten vid -20 °C. De uppsamlade supernatanterna späds med PBS och genomgår ultracentrifugering (figur 1). Den erhållna lösningen analyseras med NTA- och DLS-analyser. Exosomerna steriliseras genom att passera genom ett 0,22 μm filter. Den genomsnittliga storleken på …

Discussion

Exosomer är små membranvesiklar med dimensioner på 40-200 nm som utsöndras av de flesta celltyper, t.ex. MSC1. Exosomer kan möjliggöra kommunikation mellan celler och kan komma in i celler på olika sätt såsom endocytos, fagocytos, mikropinocytos, lipidmedierad internalisering och fusion33,44. Jämfört med andra nanobärarsystem ger lipiderna och kolesterolet som finns på exosomens yta förmågan att bära både hydrofila och hyd…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbetet stöddes främst av forskningsfinansiering från Yıldız Technical University Scientific Research Projects (TSA-2021-4713).

Materials

0.22 µm membrane filter Aisimo Used for the sterilization process
0.45 µm syringe filter Aisimo Used for the sterilization process
15 mL Falcon tube Nest Used in cell culture step
25 cm2 cell culture flasks (Falcon, TPP tissue culture flasks Nest Used in cell culture step
50 mL Falcon tube Nest Used in cell culture step
75 cm2 cell culture flasks (Falcon, TPP tissue culture flasks Nest Used in cell culture step
96 well plates (Falcon, TPP microplates) Merck Millipore Used in cell culture step
Acetonitrile Sigma 271004-1L Used for HPLC analysis
Autoclave NUVE-OT 90L Used for the sterilization process
Cell Culture Cabin Hera Safe KS Used for the cell culture process
Centrifugal Hitachi CF16RN Used in the exosome isolation step
CO2 incubator with Safe Cell UV Panasonic Used for the cell culture process
Dopamine hydrochloride H8502-10G Sigma H8502-10G Used in exosome dopamine loading
Dulbecco's Modified Eagle's Medium/Nutrient Mixture-F12 Sigma RNBJ7249 Used as cell culture medium
Fetal Bovine Serum-FBS Capricorn FBS-16A It was used by adding to the cell culture medium.
Freezer -80 °C Panasonic MDF-U5386S-PE To store cells and the resulting exosomes
Fridge Panasonic MPR-215-PE Used to store cell culture and other materials
High performance liquid chromatography-HPLC Agilent Technologies The presence of dopamine from the content of the obtained formulation was investigated.
Microscope- Primovert Zeiss Used to observe cells in cell culture.
MTT Assay Biomatik Used to measure cell viability
NanoSight NS300 Malvern panalytical Malvern panalytical Used for exosome characterization
Optima XPN-100 Ultracentrifuge Beckman Coulter Used in the exosome isolation step
PBS tablet Biomatik 43602 In the preparation of the PBS solution
Penicilin/Streptomycin Solution Capricorn PB-S It was added to the medium to prevent contamination in cell culture.
Pipette Aid Isolab
Precision balance-Kern Kern-ABJ220-4NM Used in the preparation of solutions
Q500 Sonicator Qsonica, LLC Used to digest exosomes in HPLC analysis
Saponin Sigma 47036-50G-F It was used by adding it to the total solution in the exosome dopamine loading process.
Spectrostar-Nano-Spectrophotometry BMG LABTECH Used for MTT and drug release analyzes
SPSS 22 statistical package program
Vorteks-FinePCR FinePCR-FineVortex Used to mix solutions homogeneously
Water Bath 37 °C-Senova Senova Used in cell culture step
Wharton’s jelly mesenchymal stem cells ATCC
ZetaSizer Malvern Nano ZS Malvern Nano ZS Used for exosome characterization

References

  1. Ingato, D., Lee, J. U., Sim, S. L., Kwon, Y. L. Good things come in small packages: Overcoming challenges to harness extracellular vesicles for therapeutic delivery. Journal of Controlled Release. 241, 174-185 (2016).
  2. Riazifar, M., et al. Stem cell-derived exosomes as nanotherapeutics for autoimmune and neurodegenerative disorders. ACS Nano. 13 (6), 6670-6688 (2019).
  3. Ursavaş, S., Darıci, H., Karaoz, E. Olfactory ensheathing cells: Unique glial cells promising for treatments of spinal cord injury. Journal of Neuroscience Research. 99 (6), 1579-1597 (2021).
  4. Skog, J., et al. Glioblastoma microvesicles transport RNA and proteins that promote tumour growth and provide diagnostic biomarkers. Nature Cell Biology. 10 (12), 1470-1476 (2008).
  5. Fruhbeis, C., Frohlich, D., Kramer-Albers, E. M. Emerging roles of exosomes in neuron-glia communication. Frontiers in Physiology. 3 (119), 1-7 (2012).
  6. Qing, L., Chen, H., Tang, J., Jia, X. Exosomes and their microRNA cargo: new players in peripheral nerve regeneration. Neurorehabil Neural Repair. 32 (9), 765-776 (2018).
  7. Saeedi, S., Israel, S., Nag, C., Turecki, G. The emerging role of exosomes in mental disorders. Translational Psychiatry. 9 (1), 122 (2019).
  8. Jan, A. T., et al. Perspective insights of exosomes in neurodegenerative diseases: A critical appraisal. Frontiers in Aging Neuroscience. 9, 317 (2017).
  9. Montecalvo, A., et al. Mechanism of transfer of functional microRNAs between mouse dendritic cells via exosomes. Blood. 119 (3), 756-766 (2012).
  10. Yu, B., Zhang, X., Li, X. Exosomes derived from mesenchymal stem cells. International Journal of Molecular Sciences. 15 (3), 4142-4157 (2014).
  11. Pahuja, R., et al. Trans-blood brain barrier delivery of dopamine-loaded nanoparticles reverses functional deficits in Parkinsonian rats. ACS Nano. 9 (5), 4850-4871 (2015).
  12. Rao, S. S., Hofmann, L. A., Shakil, A. Parkinson’s disease: Diagnosis and treatment. American Family Physician. 15 (74), 2046-2054 (2006).
  13. Teves, J. M. Y., et al. Parkinson’s disease skin fibroblasts display signature alterations in growth, redox homeostasis, mitochondrial function, and autophagy. Frontiers Neuroscience. 11, 737 (2017).
  14. Kalia, L. V., Lang, A. E. Parkinson disease in 2015: Evolving basic, pathological and clinical concepts in PD. Nature Reviews Neurology. 12 (2), 65-66 (2016).
  15. Poewe, W., et al. Parkinson disease. Nature Reviews Disease Primers. 3, 17013 (2017).
  16. Carlsson, T., Björklund, T. Restoration of the striatal dopamine synthesis for Parkinson’s disease: Viral vector-mediated enzyme replacement strategy. Current Gene Therapy. 7 (2), 109-120 (2007).
  17. Simon, D. K., Tanner, C. M., Brundin, P. Parkinson disease epidemiology, pathology, genetics, and pathophysiology. Clinics in Geriatric Medicine. 36 (1), 1-12 (2020).
  18. Salat, D., Tolosa, E. Levodopa in the treatment of Parkinson’s disease: Current status and new developments. Journal of Parkinson’s Disease. 3 (3), 255-269 (2013).
  19. Senthilkumar, K. S., et al. Unilateral implantation of dopamine-loaded biodegradable hydrogel in the striatum attenuates motor abnormalities in the 6-Hydroxydopamine model of Hemi-Parkinsonism. Behavioral Brain Research. 184 (1), 11-18 (2007).
  20. Krishna, R., Ali, M., Moustafa, A. A. Effects of combined MAO-B inhibitors and levodopa vs. monotherapy in Parkinson’s disease. Frontiers Aging Neuroscience. 6, 180 (2014).
  21. Armstrong, M. J., Okun, M. S. Diagnosis and treatment of Parkinson disease: A review. JAMA. 323 (6), 548-560 (2020).
  22. Rivero Vaccari, J. P. Exosome-mediated inflammasome signaling after central nervous system injury. Journal of Neurochemistry. 136, 39-48 (2016).
  23. Han, D., Wu, C., Xiong, Q., Zhou, L., Tian, Y. Anti-inflammatory mechanism of bone marrow mesenchymal stem cell transplantation in rat model of spinal cord injury. Cell Biochemistry and Biophysics. 71 (3), 1341-1347 (2015).
  24. Vilaça-Faria, H., Salgado, A. J., Teixeira, F. G. Mesenchymal stem cells-derived exosomes: A new possible therapeutic strategy for Parkinson’s disease?. Cells. 8 (2), 118-135 (2019).
  25. Mendes-Pinheiro, B., et al. marrow mesenchymal stem cells secretome exerts neuroprotective effects in a Parkinson’s disease rat model. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 7, 294 (2019).
  26. Kalani, A., Kamat, P. K., Chaturvedi, P., Tyagi, S. C., Tyagi, N. Curcumin-primed exosomes mitigate endothelial cell dysfunction during hyperhomocysteinemia. Life Sciences. 107 (1-2), 1-7 (2014).
  27. Kalani, A., Tyagi, A., Tyagi, N. Exosomes: Mediators of neurodegeneration, neuroprotection, and therapeutics. Molecular Neurobiology. 49 (1), 590-600 (2014).
  28. Jamur, M. C., Oliver, C. Permeabilization of cell membranes. Methods in Molecular Biology. 588, 63-66 (2010).
  29. Rani, S., Ryan, A. E., Griffin, M. D., Ritter, T. Mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles: Toward cell-free therapeutic applications. Molecular Therapy. 23 (5), 812-823 (2015).
  30. Haney, M. J., et al. Exosomes as drug delivery vehicles for Parkinson’s disease therapy. Journal of Controlled Release. 207, 18-30 (2015).
  31. Sun, D., et al. A novel nanoparticle drug delivery system: The anti-inflammatory activity of curcumin is enhanced when encapsulated in exosomes. Molecular Therapy. 18 (9), 1606-1614 (2010).
  32. Tian, Y., et al. A doxorubicin delivery platform using engineered natural membrane vesicle exosomes for targeted tumor therapy. Biomaterials. 35 (7), 2383-2390 (2014).
  33. Yang, T., et al. Exosome delivered anticancer drugs across the blood-brain barrier for brain cancer therapy in danio rerio. Pharmaceutical Research. 32 (6), 2003-2014 (2015).
  34. Chen, H. X., et al. Exosomes derived from mesenchymal stem cells repair a Parkinson’s disease model by inducing autophagy. Cell Death Disease. 11 (4), 288 (2020).
  35. Yu, F., et al. Olfactory ensheathing cells seeded decellularized scaffold promotes axonal regeneration in spinal cord injury rats. Journal of Biomedical Materials Research. 109 (5), 779-787 (2020).
  36. Coughlan, C., et al. Exosome isolation by ultracentrifugation and precipitation and techniques for downstream analyses. Current Protocols in Cell Biology. 88 (1), 110 (2020).
  37. Qu, M., et al. Dopamine-loaded blood exosomes targeted to brain for better treatment of Parkinson’s disease. Journal of Controlled Release. 287, 156-166 (2018).
  38. Kim, M. S., et al. Development of exosome-encapsulated paclitaxel to overcome MDR In cancer cells. Nanomedicine: Nanotechnology, Biology, and Medicine. 12 (3), 655-664 (2016).
  39. Branquinho, R. T., et al. HPLC-DAD and UV-spectrophotometry for the determination of lychnopholide in nanocapsule dosage form: Validation and application to release kinetic study. Journal of Chromatographic Science. 52 (1), 19-26 (2014).
  40. Karagöz Kutlutürk, I., et al. Producing aflibercept loaded poly (lactic-co-glycolic acid) [PLGA] nanoparticles as a new ocular drug delivery system and its challenges. Fresenius Environmental Bulletin. 30 (2), 1481-1493 (2021).
  41. Setiawatie, E. M., et al. Viability of nigella sativa toothpaste with SLS compared non-SLS on fibroblast cell culture. Journal of International Dental and Medical Research. 14 (2), 525-528 (2021).
  42. Jebelli, A., Khalaj-Kondori, M., Rahmati-Yamchi, M. The effect of beta-boswellic acid on the expression of Camk4 and Camk2α genes in the PC12 cell line. Advanced Pharmaceutical Bulletin. 10 (3), 437-443 (2020).
  43. Cantelmo, R. A., Santos, N. A., Santos, A. C., Regiane, S., Joca, L. Dual effects of S-Adenosyl-Methionine on Pc12 cells exposed to the dopaminergic neurotoxin MPP. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 72 (10), 1427-1435 (2020).
  44. Mulcahy, L. A., Pink, R. C., Carter, D. R. Routes and mechanisms of extracellular vesicle uptake. Journal of Extracell Vesicles. 3, (2014).
  45. Kooijmans, S. A., Vader, P., van Dommelen, S. M., van Solinge, W. W., Schiffelers, R. M. Exosome mimetics: A novel class of drug delivery systems. International Journal of Nanomedicine. 7 (1), 1525-1541 (2012).
  46. Yuan, Z., Kolluri, K. K., Gowers, K. H., Janes, S. M. Trail delivery by MSC-derived extracellular vesicles is an effective anticancer therapy. Journal Extracell Vesicles. 6 (1), 1265291 (2017).
  47. Darici, H., Sun, E., Koyuncu-Irmak, D., Karaöz, E., Khan, M. Mesenchymal stem cells for the treatment of COVID-19: Why and when they should be used? in Human Mesenchymal Stem Cells. Journal of Stem Cells. 4 (15), 159-181 (2021).
  48. Koyuncu-Irmak, D., Darici, H., Karaoz, E. Stem cell-based therapy option in COVID-19: Is it promising?. Aging and Disease. 11 (5), 1174-1191 (2020).
  49. Leblanc, P., et al. Isolation of exosomes and microvesicles from cell culture systems to study prion transmission. Exosomes Microvesicles. 1545, 153-176 (2017).
  50. Fuhrmann, G., Serio, A., Mazo, M., Nair, R., Stevens, M. M. Active loading into extracellular vesicles significantly improves the cellular uptake and photodynamic effect Of porphyrins. Journal of Control Release. 205, 35-44 (2015).
  51. Mehryab, F., et al. Exosomes as a next-generation drug delivery system: An update on drug loading approaches, characterization, and clinical application challenges. Acta Biomaterialia. 113, 42-62 (2020).
  52. Zhang, Y., et al. Exosome: A review of its classification, isolation techniques, storage, diagnostic and targeted therapy applications. International Journal of Nanomedicine. 15, 6917-6934 (2020).
check_url/kr/63624?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Yavuz, B., Darici, H., Zorba Yildiz, A. P., Abamor, E. Ş., Topuzoğullari, M., Bağirova, M., Allahverdiyev, A., Karaoz, E. Formulating and Characterizing an Exosome-based Dopamine Carrier System. J. Vis. Exp. (182), e63624, doi:10.3791/63624 (2022).

View Video