Summary

Genética reversa para projetar variantes do vírus de RNA de sentido positivo

Published: June 09, 2022
doi:

Summary

O protocolo descreve um método para introduzir diversidade genética controlável no genoma do vírus da hepatite C combinando síntese completa de RNA mutante usando PCR propenso a erros e genética reversa. O método fornece um modelo para seleção de fenótipos e pode ser usado para genomas de vírus de RNA de sentido positivo de 10 kb longos.

Abstract

A falta de um método conveniente para a geração iterativa de diversas variantes virais de comprimento total tem impedido o estudo da evolução dirigida em vírus de RNA. Ao integrar uma PCR propensa a erros no genoma de RNA e genética reversa, a mutagênese de substituição aleatória do genoma pode ser induzida. Desenvolvemos um método usando esta técnica para sintetizar diversas bibliotecas para identificar mutantes virais com fenótipos de interesse. Esse método, chamado síntese completa de RNA mutante (FL-MRS), oferece as seguintes vantagens: (i) a capacidade de criar uma grande biblioteca por meio de uma PCR altamente eficiente e propensa a erros em uma etapa; (ii) a capacidade de criar grupos de bibliotecas com diferentes níveis de diversidade genética, manipulando a fidelidade da DNA polimerase; (iii) a criação de um produto de PCR completo que possa servir diretamente como um modelo para a síntese de RNA mutante; e (iv) a capacidade de criar RNA que pode ser entregue em células hospedeiras como um pool de entrada não selecionado para rastrear mutantes virais do fenótipo desejado. Descobrimos, usando uma abordagem de genética reversa, que a ERM-FL é uma ferramenta confiável para estudar a evolução dirigida por vírus em todos os estágios do ciclo de vida do vírus da hepatite C, isolado de JFH1. Esta técnica parece ser uma ferramenta inestimável para empregar a evolução dirigida para entender a adaptação, a replicação e o papel dos genes virais na patogênese e resistência antiviral em vírus de RNA de sentido positivo.

Introduction

O rastreamento genético antecipado começa com um fenótipo viral de interesse e, em seguida, por meio do sequenciamento de seu genoma e comparação com o da cepa original, tenta identificar a(s) mutação(ões) causadora(s) desse fenótipo. Em contraste, nos rastreamentos genéticos reversos, mutações aleatórias são introduzidas em um gene alvo, seguidas por um exame do(s) fenótipo(s) resultante(s)1. Para a abordagem da genética reversa, a mutagênese in vitro é a técnica mais amplamente utilizada para criar um pool de variantes que são posteriormente rastreadas para fenótipos de interesse. Várias ferramentas genéticas têm sido relatadas para a obtenção de mutagênese aleatória genômica de vírus de RNA, incluindo PCR propenso a erros (ep-PCR)2,3, extensão circular da polimerase4 e mutagênese de inserção Mu-transposon 5,6,7. Os dois últimos métodos produzem bibliotecas com diversidade limitada de sequências e são propensos à introdução de grandes inserções e deleções, que são altamente letais para vírus e limitam severamente a recuperação de variantes virais infecciosas.

A EP-PCR é uma conhecida e poderosa técnica de mutagênese amplamente utilizada na engenharia de proteínas para gerar enzimas mutantes para a seleção de fenótipos com propriedades desejadas, tais como maior estabilidade térmica, especificidade do substrato e atividade catalítica 8,9,10. Esta técnica é de fácil execução, pois requer equipamentos simples, não envolve manipulações tediosas, utiliza reagentes disponíveis comercialmente e é rápida; Além disso, gera bibliotecas de alta qualidade.

Aqui, desenvolvemos um novo método para síntese completa de RNA mutante (FL-MRS) para gerar genomas completos do vírus da hepatite C (HCV) através da integração de ep-PCR, que induz mutagênese de substituição aleatória do genoma e genética reversa. Mesmo uma inserção ou deleção de nucleotídeo único é altamente deletéria para vírus de RNA de sentido positivo ([+]ssRNA); portanto, a mutagênese de substituição baseada em PCR é o método preferido para a geração iterativa de grandes e diversas bibliotecas de genomas completos de RNA (+)ss com boa viabilidade.

FL-MRS é uma abordagem direta que pode ser aplicada a qualquer vírus de RNA de sentido positivo com um comprimento de genoma de ~10 kb através do design meticuloso de um conjunto de primers que se liga ao clone de cDNA viral. pJFH1 é um clone de cDNA infeccioso que codifica o genótipo 2a do HCV e pode recapitular todas as etapas do ciclo de vida do vírus. Usando a abordagem da FL-MRS, demonstramos a síntese de bibliotecas do genoma completo mutagenizadas aleatoriamente (bibliotecas mutantes [MLs]) para produzir variantes JFH1 competentes em replicação para as quais não havia conhecimento prévio das propriedades associadas às mutações. Após a exposição a um antiviral, algumas das variantes virais rapidamente superaram a pressão medicamentosa com a mudança fenotípica desejada. Usando o protocolo descrito aqui, uma infinidade de variantes virais pode ser gerada, criando oportunidades para estudar a evolução dos vírus (+)ssRNA.

Protocol

NOTA: A cepa JFH1 (WT) usada aqui foi um presente gentil de Takaji Wakita, Instituto Nacional de Doenças Infecciosas. A linhagem celular de hepatoma humano, Huh7.5, foi um presente gentil de Charles Rice, da Universidade Rockefeller. Um esquema do método é mostrado na Figura 1. 1. Mutagênese de substituição genômica ampla de JFH1 usando PCR propenso a erros Para a realização da ep-PCR, preparar a mistura mestre para quatro conju…

Representative Results

Uma infinidade de variantes completas do HCV pode ser gerada e rastreada para fenótipos resistentes de interesse seguindo os procedimentos descritos na Figura 1. Bibliotecas completas de mutantes do genoma foram sintetizadas usando clonal-pJFH1 em quantidades decrescentes (100-10 ng), como mostrado na Figura 2. Os rendimentos médios dos produtos de ep-PCR (bibliotecas mutantes) variaram de 3,8-12,5 ng/μL. A Figura 3 mostra os tra…

Discussion

Neste estudo, detalhamos um procedimento simples e rápido de FL-MRS que integra ep-PCR18 e genética reversa para sintetizar bibliotecas do genoma completo do HCV, que pode então ser usado em um sistema de cultura celular para gerar variantes competentes em replicação para a triagem de fenótipos resistentes a drogas. O uso de Taq DNA polimerase de baixa fidelidade é um pré-requisito da ep-PCR que permite a incorporação de substituições durante a amplificação por PCR de um genoma viral…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

O apoio financeiro (número de processo BT/PR10906/MED/29/860/2014) para este estudo foi fornecido pelo Departamento de Biotecnologia, Governo da Índia.

Materials

1 kb plus DNA ladder  Thermo Fisher 10787018
1.5 ml centrifuge tube Tarsons 500010
15 ml centrifuge tube Tarsons 546021
35 mm cell culture dish  Tarsons 960010
50 ml centrifuge tube Tarsons 546041
Acetic acid Merck A6283
Agarose  HiMedia MB080
Agrose gel electrophoresis unit BioRad 1704406
Biosafety Cabinet, ClassII ESCO AC2 4S
Bovine serum albumin HiMedia MB083
Centrifuge  Eppendorf 5424-R
CFX Connect Real-Time PCR Detection System BioRad 1855201
Cloning plates 90 mm  Tarson 460091
CO2 Incubator  New Brunswick Galaxy 170R
Colibri Microvolume Spectrometer Titertek-Berthold 11050140
DAB Substrate Kit  Abcam ab94665
dATP Solution NEB N0440S
Deoxynucleotide (dNTP) Solution Set NEB N0446
Diethyl Pyrocarbonate (DEPC)  SRL chemical 46791
Dimethyl sulphoxide (DMSO) HiMedia MB058
DMEM high glucose Lonza BE12-604F
EcoR1-HF NEB R3101
EDTA tetrasodium salt dihydrate HiMedia GRM4918
Ethidium Bromide Amresco X328
Fetal bovine serum  Gibco 26140079
Formaldehyde  Fishser Scientific 12755
Gel Documentation System ALPHA IMAGER
Goat anti-Mouse IgG (H+L) Secondary Antibody, HRP Thermo Fisher A16066
Hydrogen peroxide 30% Merck 107209
Inverted microscope Nickon  ECLIPSE Ts2
LB broth  HiMedia M1245
Lipofectamine 2000  Thermo Fisher 116680270 transfection reagent
Mechanical Pipette Set Eppendorf   3120000909
Methanol Merck 106009
Micro Tips 0.2-10 µl  Tarsons 521000
Micro Tips 10 – 100 µl  Tarsons 521010
Micro Tips 200-1000 µl  Tarsons 521020
MOPS buffer  GeNei 3601805001730
Nonessential aminoacids (NEAA) Gibco 11140050
One Shot TOP10 Chemically Competent E. coli Invitrogen C404010 E.coli DH5α
Opti-MEM Gibco 1105-021 minimal essential medium
PCR tubes 0.2 ml Tarsons 510051
Pencillin/streptomycin  Gibco 15070063
pGEM-T Easy Vector System Promega A1360 T-vector DNA
Phosphate buffer saline (PBS) HiMedia TI1099
Phusion High-Fidelity DNA Polymerase NEB M0530S
Pibrentasvir Cayman Chemical 27546
Pipette controller  Gilson  F110120
Platinum Taq DNA Polymerase  Thermo 10966034
Prism GraphPad statistical analysis software
QIAamp Viral RNA Mini kit  Qiagen 52904 viral isolation kit
QIAprep Spin Miniprep Kit Qiagen 27106
QIAquick PCR Purification Kit QIAGEN 28104 cokum purification kit
RNeasy Mini Kit  QIAGEN 74104 RNA cleanup kit
Serological Pipettes 25 ml Thermo Fisher 170357N
Serological Pipettes 5 ml Thermo Fisher 170355N
Serological Pipettes10 ml Thermo Fisher 170356N
Single strand RNA Marker 0.2-10 kb Merck R7020
Skim milk  HiMedia M530
Sodium azide 0.1 M solution Merck 8591
SuperScript III Reverse Transcriptase  Invitrogen 18080044 reverse transcriptase
T100 Thermal Cycler BioRad 1861096
T175 cell culture flask  Tarsons 159910
T25 cell culture flask  Tarsons 950040
T7 RiboMax Express Large Scale RNA Production System  Promega P1320  Large Scale RNA Production System 
T75 cell culture flask  Tarsons 950050
Taq DNA Polymerase Genetix Biotech (Puregene) PGM040
TaqMan RNA-to-CT 1-Step Kit Applied Biosystems 4392653
TaqMan RNA-to-CT 1-Step Kit Thermo Fisher 4392653 commercial qRT-PCR kit 
TOPO-XL–2 Complete PCR Cloning Kit Thermo Fisher K8050-10 kit for cloning of long-PCR product 
Tris base HiMedia TC072
Trypsin-EDTA solution HiMedia TCL007
Tween 20 HiMedia MB067
Vacuum Concentrator  Eppendorf, Concentrator Plus 100248
Water bath  GRANT JBN-18
Xba1 NEB R0145S

References

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Cite This Article
Soni, S., Agarwal, S., Aggarwal, R., Veerapu, N. S. Reverse Genetics to Engineer Positive-Sense RNA Virus Variants. J. Vis. Exp. (184), e63685, doi:10.3791/63685 (2022).

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