For å studere hvordan tynntarmen håndterer partikler av varierende størrelse, har vi modifisert en etablert in vivo-metode for å bestemme tynntarmstransittrasjon.
Gastrointestinal (GI) motilitet er kritisk for normal fordøyelse og absorpsjon. I tynntarmen, som absorberer næringsstoffer, optimaliserer motilitet fordøyelsen og absorpsjonen. Av denne grunn inkluderer noen av motilitetsmønstrene i tynntarmen segmentering for blanding av luminalinnhold og peristaltikk for fremdrift. Fysiske egenskaper av luminalinnhold modulerer mønstrene av tynntarmmotilitet. Den mekaniske stimuleringen av GI-mekanosensoriske kretser ved å overføre luminalinnhold og underliggende tarmmotilitet initierer og modulerer komplekse GI-motormønstre. Likevel forblir de mekanosensoriske mekanismene som driver denne prosessen dårlig forstått. Dette skyldes først og fremst mangel på verktøy for å dissekere hvordan tynntarmen håndterer materialer med forskjellige fysiske egenskaper. For å studere hvordan tynntarmen håndterer partikler av varierende størrelse, har vi modifisert en etablert in vivo-metode for å bestemme tynntarmstransittrasjon. Vi gavage levende mus med fluorescerende væske eller små fluorescerende perler. Etter 30 minutter dissekerer vi tarmene for å avbilde fordelingen av fluorescerende innhold over hele GI-kanalen. I tillegg til høyoppløselige målinger av det geometriske senteret, bruker vi binning med variabel størrelse og spektralanalyse for å bestemme hvordan forskjellige materialer påvirker tynntarmstransittrasjonen. Vi har undersøkt hvordan en nylig oppdaget “gut touch” -mekanisme påvirker tynntarmmotilitet ved hjelp av denne tilnærmingen.
Den menneskelige gastrointestinale (GI) kanalen er et flere fot langt organsystem, omtrent tilnærmet som et rør av varierende dimensjoner og fysiske egenskaper1. Når innholdet beveger seg gjennom lengden, er GI-kanalens primære funksjon å absorbere stoffer som er kritiske for livet. Tynntarmen er spesielt ansvarlig for næringsopptak. Tynntarmens transitt er tett regulert for å matche fordøyelses- og absorpsjonsfunksjonene, noe som resulterer i forskjellige motilitetsmønstre. Bayliss og Starling beskrev “tarmens lov”2 i 1899, og viste det kontraktile fremdriftsprogrammet i tarmen kjent i dag som den peristaltiske refleksen; segmentet proksimalt for matbolusen trekker seg sammen for å drive den fremover, og det distale segmentet slapper av for å motta det. I teorien kan dette mønsteret alene være tilstrekkelig til å transportere materiale aboralt, men over et århundre med forskning har malt et mer komplekst bilde av kontraktil aktivitet i GI-kanalen. Tre tynntarmmotilitetsperioder er anerkjent hos mennesker: det migrerende motorkomplekset (MMC), fasteperioden og den postprandiale perioden3. De samme mønstrene er rapportert hos mus 4,5. MMC er et syklisk motormønster som er bevart over de fleste pattedyr 6,7. MMC har et karakteristisk firefasemønster som fungerer som en nyttig klinisk markør ved funksjonelle GI-lidelser7. De fire fasene, i rekkefølge av forekomst, er (I) hvile, (II) uregelmessige, lave amplitudekontraksjoner, (III) regelmessige sammentrekninger med høy amplitude og (IV) nedtrappingsperiode med fallende aktivitet7. MMC markerer det viktigste motormønsteret i fasteperioden3. MMC i fasteperioden rydder opp innholdet i tynntarmen som forberedelse til neste måltid.
Motormønstrene i postprandialperioden er optimalisert for fordøyelses- og absorberende funksjoner3. Uavhengig av kalorisammensetning er den første transitten rask langs tynntarmen, innholdet spres langs tarmens lengde, og transitt bremser deretter8. Absorpsjon optimaliseres ved å øke kontaktflaten og bremse den ned for å øke oppholdstiden. Når næringsstoffene er inne i lumen, består det dominerende mønsteret av nære (<2 cm fra hverandre) ukoordinerte sammentrekninger (segmenteringskontraksjoner), med noen få overliggende store amplitudekontraksjoner som spenner over hele tynntarmens lengde (peristaltiske sammentrekninger)9. Segmenteringskontraksjoner blander det intraluminale innholdet på plass. De sporadiske store peristaltiske sammentrekningene driver innholdet mot tykktarmen.
Tidspunktet for denne overgangen tilbake til MMC avhenger av matvolum og kalorisammensetning10. Dermed er tynntarmprøvene luminale signaler for å regulere når man skal overgang mellom motilitetsperioder. Mekaniske signaler, for eksempel fysiske egenskaper til luminalinnhold11, luminalvolum og veggspenning, engasjerer mekanoreceptorceller i GI-veggen 12,13,14,15,16. Å øke den faste komponenten i et måltid fører faktisk til en økning i tynntarmstransitt17. Vi spekulerer i at fysiske egenskaper, som flytende eller fast tilstand av intraluminal innhold, må engasjere forskjellige mekanoreceptorer på grunn av de forskjellige kreftene de genererer på GI-veggen18.
Gullstandarden for måling in vivo GI-transitt hos mennesker, som hos mus, er bruk av radioaktive sporstoffer målt ved scintigrafi når de går ut av magen eller passerer langs tykktarmen19,20. Hos pattedyr sløyfer tynntarmen på uforutsigbare måter som gjør tynntarmen vanskelig å avbilde in vivo pålitelig, men det gjøres fremskritt21. Videre mangler det i dag verktøy for å kvantifisere hvordan tynntarmen håndterer partikler av varierende egenskaper og størrelser. Utgangspunktet her var en gullstandardteknikk som standardiserer studiet av tynntarmstransitt 22,23,24 og barrierefunksjon 22. Den består av gavaging mus med et fluorescerende materiale, venter på GI-motilitet for å transportere materialet, excising GI-kanalen, segmentering i flere seksjoner fra mage til tykktarm, seksjonering og homogenisering av intraluminal innhold for fluorescenskvantifisering. Vi gjorde to forbedringer. Først endret vi sammensetningen av gavaged innholdet for å inkludere fluorescerende mikroskopiske perler for å bestemme hvordan tynntarmen fordeler fysiske partikler. For det andre forbedret vi den romlige oppløsningen ved å avbilde hele GI-kanalen fra mage til kolon ex vivo og brukte binning med variabel størrelse for å standardisere analysen vår på tvers av dyr. Vi postulerer at dette avslører ny innsikt i balansen mellom propulsive versus segmenterende sammentrekninger i postprandialfasen.
GI-kanalen, som andre rørformede organer, som blodkar, krever mekaniske sensorer og effektorer for å opprettholde homeostase26,27,28. Imidlertid er GI-kanalen unik ved at de fysiske egenskapene til materialene som krysser den ikke er konstante over måltider. Intraluminal innhold av forskjellige fysiske egenskaper (fast, flytende og gass) passerer tarmen, genererer forskjellige mekaniske innganger til GI-mekanoreceptorene. Fak…
The authors have nothing to disclose.
Vi takker fru Lyndsay Busby for administrativ hjelp og Mr. Joel Pino for mediestøtte. NIH-tilskudd støttet dette arbeidet: DK123549, AT010875, DK052766, DK128913 og Mayo Clinic Center for Cell Signaling in Gastroenterology (DK084567).
C57BL/6J mice | Jackson Laboratory | 664 | other mice can be used with this protocol |
Dissection tools | n/a | n/a | |
Excel software | Microsoft | n/a | used for spreadsheet analysis |
Fluorescent Green Polyethylene Microspheres 1.00g/cc 75-90um – 10g | Cospheric | UVPMS-BG-1.00 75-90um – 10g | "smaller beads" in the manuscript |
Fluorescent Green Polyethylene Microspheres 1.00g/cc 180-212um – 10g | Cospheric | UVPMS-BG-1.00 180-212um – 10g | "larger beads" in the manuscript |
Gavage needles | Instech | FTP-18-50-50 | |
ImageJ software | n/a | n/a | used to extract fluorescence profile |
Laminated ruler paper (prepared in-house) | n/a | n/a | |
Methyl cellulose (viscosity: 400 cP) | Sigma | M0262 | |
Photoshop software | Adobe | n/a | used for image processing |
Rhodamine B isothiocyanate-Dextran | Sigma | r8881-100mg | "liquid" condition in the manuscript |
Xenogen IVIS 200 | Perkin Elmer | 124262 | In vivo imaging system |