Summary

Massuppfödning och molekylära studier på tortricidae skadegörarinsekter

Published: March 25, 2022
doi:

Summary

Det föreliggande protokollet beskriver uppfödningsmetoden för tortricid skadedjursinsekter i laboratorierna. Förfarandena för att särskilja insekters kön och extrahera nukleinsyror för sekvensering med hög genomströmning fastställs med hjälp av två tortricid skadedjur.

Abstract

Tortricidae (Lepidoptera), allmänt känd som tortrix eller bladrullemalar, omfattar många jordbruks- och skogsbruksskadegörare som orsakar allvarliga jordbruksförluster. För att förstå biologin hos sådana skadedjursmoths har grundläggande tekniker varit i hög efterfrågan. Här utvecklas metoder för massuppfödning, observationer och molekylära studier med hjälp av två tetortrix, Homona magnanima och Adoxophyes honmai (Lepidoptera: Tortricidae). Insekter massuppföddes med skivad konstgjord kost och upprätthölls genom inavel i över 100 generationer genom att överväga deras biologiska egenskaper. Insekter har olika könsdimorfismer; därför är det svårt att skilja könet under utvecklingsstadierna, vilket har förhindrat efterföljande analyser. Det föreliggande arbetet belyste att könet på tortricidlarver kunde bestämmas genom att observera testiklar eller mjölk-ättiksyra orceinfärgning för att visualisera den kvinnospecifika W-kromosomen. Dessutom, med hjälp av könsbestämningsmetoderna, möjliggjorde den aktuella studien nukleinsyraextraktioner från könsbestämda embryon och applicering mot sekvensering med hög genomströmning. Dessa tips är tillämpliga för andra skadeinsekter och kommer att underlätta ytterligare morfologiska och genetiska studier.

Introduction

Lepidopteraninsekter utgör mer än 10 % av alla beskrivna levande arter1, och vissa taxaarter orsakar allvarliga skador på växter och allvarliga jordbruksförluster 2,3. Även om molekylära och genetiska studier har utvecklats med hjälp av modellinsekter som silkesmasken Bombyx mori 4,5, förblir skadeinsekter outredda, delvis på grund av svårigheterna att föda upp och hantera 6,7. Därför är grundläggande studier och tekniker nödvändiga för att förstå biologin hos sådana icke-modellskadegörare.

Tortricidae (Lepidoptera), allmänt känd som tortrix eller bladrullemalar, omfattar många jord- och skogsbruksskadegörare8. Av insektstaxan är den orientaliska tetortrix homona magnanima Diakonoff och sommarfrukten tortrix Adoxophyes honmai Yasuda allvarliga polyfagiska skadedjur som är kända för att skada teträd i Östasien7. De två arterna lägger platta och ovala skalliknande äggkluster (eller äggmassor) bestående av tunna, mjuka och ömtåliga ägg täckta av moderns sekret. Även om embryogenesstadier är avgörande för insektsutveckling och könsbestämningar9, hindrar äggens strukturer ytterligare analys från att förstå insekternas biologi. Det är viktigt att övervinna svårigheterna för vidare studier av skadedjur som ovipositerar en sådan komplex äggmassa.

Här, för att förstå tortricids biologi, har metoder för massuppfödning, observationer och molekylära studier utvecklats med hjälp av A. honmai och H. magnanima. För det första upprätthåller massuppfödningsmetoder båda tortriciderna över 100 generationer av inavlade. Separationen av ägg från den sammanfogade skalliknande äggmassan underlättade embryogenesobservationen av tortriciderna med användning av alkaliska och organiska lösningsmedel som tidigare utvecklats från tekniker som används i flugor10. Dessutom fastställde den föreliggande studien könsdiskriminering av små embryon genom att utveckla färgningsmetoder för könskromatin hos lepidopterankvinnor med användning av mjölk-ättiksyraorcein11. Genom att kombinera dessa metoder extraherades nukleinsyror av hög kvalitet och kvantitet från könsbestämda embryon, vilket annars var svårt att fastställa6. Det extraherade RNA användes för nästa generations sekvensering. Sammantaget gäller de metoder som presenteras här för andra lepidopteraninsekter och andra insektstaxa.

Protocol

1. Insektsinsamling och massuppfödning Samla tortricidinsekter från fält efter tidigare publicerade Referenser 8,12.OBS: H. magnanima och A. honmai larver samlas in från skadade teblad (figur 1A); Vuxna lockas med 4 W bärbart UV-ljus (365 nm våglängd, se Materialtabell, figur 1B). Baka de uppsamlade larverna (<strong class…

Representative Results

Upprättande av värdlinjer och underhåll av dessaLivskraften hos fältinsamlade larver tillskrivs olika fältplats, årstider och uppfödningsförhållanden (t.ex. 90% av livskraften i Taiwan, Taoyuan, som visas i Arai et al.12). Cirka 30% -50% av paren kommer att generera nästa generation som vanligt. För H. magnanima och A. honmai har matriliner upprätthållits genom inavel i över 100 generationer. Morfologiska obse…

Discussion

Tortricid omfattar flera jord- och skogsbruksskadegörare; den föreliggande studien presenterade metoder för att baka tortrix över generationer, observera embryogenes och kön hos insekterna och genomföra molekylär analys med mogna embryon.

Ett av hindren för skadedjursbekämpning är att etablera uppfödningsmetoder. Speciellt påverkar inavel ibland artens kondition negativt. Konditionsminskningen av inavlade, kallad inavelsdepression, har i stor utsträckning observerats hos olika vä…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill erkänna stöd från Japan Society for the Promotion of Science (JSPS) Research Fellowships for Young Scientists [Grant Number 19J13123 and 21J00895].

Materials

1/2 ounce cup FP CHUPA CP070009 insect rearing; https://www.askul.co.jp/p/6010417/
1/2 ounce cup lid FP CHUPA CP070011 insect rearing; https://www.askul.co.jp/p/6010434/?int_id=recom_DtTogether
99.7% acetic acid FUJIFILM Wako Chemicals Co., Osaka, Japan 36289 fixation; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01ALF036289.html
Agilent 2100 Bioanalyzer Agilent Technologies not shown Nucleic acids quantification; https://www.agilent.com/en/product/automated-electrophoresis/bioanalyzer-systems/bioanalyzer-instrument
Agilent RNA6000 nano kit Agilent Technologies 5067-1511 Nucleic acids quantification; https://www.agilent.com/cs/library/usermanuals/Public/G2938-90034_RNA6000Nano_KG
.pdf
benzalkonium chloride solution Nihon Pharmaceutical Co., Ltd No.4987123116046 Sterilization; https://www.nihon-pharm.co.jp/consumer/products/disinfection.html
Cotton AOUME 8-1611-02 insect rearing; https://item.rakuten.co.jp/athlete-med/10006937/?scid=af_pc_etc&sc2id=af_113_0_1
DAPI solution Dojindo, Tokyo, Japan 340-07971 stainings; https://www.dojindo.co.jp/products/D523/
Disodium Hydrogenphosphate FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 Na2HPO4; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0119-0286.html
dsDNA HS quantification kit Invitrogen Q33231 Nucleic acids quantification; https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/Q33230?SID=srch-srp-Q33230
Econospin RNA II column Epoch Life Science Inc. EP-11201 RNA extraction; http://www.epochlifescience.com/Product/SpinColumn/minispin.aspx
Ethanol FUJIFILM Wako Chemicals Co., Osaka, Japan 4.98748E+12 fixation; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0105-0045.html
Ethylenediamine-N,N,N',N'-tetraacetic Acid Tetrasodium Salt Tetrahydrate (4NA) FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 Cell lysis buffer (EDTA); https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01T02N003.html
Glassine paper HEIKO 2100010 insect rearing; https://www.monotaro.com/p/8927/0964/?utm_id=g_pla&
utm_medium=cpc&utm_source=
Adw
heat block WSC-2620 PowerBLOCK ATTO, Tokyo, Japan 4002620 incubation; https://www.attoeng.site/
heptane FUJIFILM Wako Chemicals Co., Osaka, Japan 4.98748E+12 fixation; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0108-0015.html
INSECTA LF Nosan Co., Ltd not shown Artificial diet; https://www.nosan.co.jp/business/fodder/ist.htm
ISOGENII Nippon Gene 311-07361 RNA extraction; https://www.nippongene.com/siyaku/product/extraction/isogen2/isogen2.html
isopropanol FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 nucleic acids extraction; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0232-0004.html
Lactic acid FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 Stainings; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0112-0005.html
methanol FUJIFILM Wako Chemicals Co., Osaka, Japan 4.98748E+12 fixation; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0113-0182.html
MSV-3500 vortex Biosan BS-010210-TAK Voltex mixer; https://biosan.lv/products/-msv-3500-multi-speed-vortex/
Nano Photometer NP 80 Implen not shown Nucleic acids quantification; https://www.implen.de/product-page/implen-nanophotometer-np80-microvolume-cuvette-spectrophotometer/tech-specs/
Natural pack wide Inomata chemical 1859 insect rearing; https://www.monotaro.com/g/03035766/?t.q=%E3%83%8A%E3%83%81%E3%83%A5%E3%
83%A9%E3%83%AB%E3%83%91%
E3%83%83%E3%82%AF%E3%83%
AF%E3%82%A4%E3%83%89
NEBNext Ultra II RNA Library Prep Kit for Illumina New England BioLabs E7770S Library preparation; https://www.nebj.jp/products/detail/2039
orcein FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 Stainings; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0115-0094.html
Paraformaldehyde FUJIFILM Wako Chemicals Co. 160-16061 fixation; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0116-1606.html
Polyoxyethylene(20) Sorbitan Monolaurate FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 Tween-20; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0116-2121.html
Portable UV Black Light (4W, 365nm wavelength) Southwalker Co., Ltd., Kanagawa, Japan not shown Insect collection; http://www.southwalker.com/shopping/?pid=1364614057-467328
Potassium Chloride FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 KCl; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0116-0354.html
Potassium Dihydrogen Phosphate FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 KH2PO4; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0116-0424.html
ProLong Diamond Antifade Mountant Invitrogen, MA, USA P36965 antifade; https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/P36965
Proteinase K Solution Merck 71049-4CN DNA extraction; https://www.merckmillipore.com/JP/ja/product/Proteinase-K-Solution-600-mAU-ml,EMD_BIO-71049
protein precipitation solution Qiagen 158912 DNA extraction; https://www.qiagen.com/us/products/discovery-and-translational-research/lab-essentials/buffers-reagents/puregene-accessories/?cmpid=PC_DA_NON_
BIOCOMPARE_ProductListing_
0121_RD_MarketPlace_ProductC
Qubit V4 Invitrogen Q33238 Nucleic acids quantification; https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/Q33238
rifampicin FUJIFILM Wako Chemicals Co., Osaka, Japan 4.98748E+12 Sterilization; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0118-0100.html
RNA HS quantification kit Invitrogen Q32855 Nucleic acids quantification; https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/Q32852
RNase solution Nippon Gene 313-01461 RNA extraction; https://www.nippongene.com/siyaku/product/modifying-enzymes/rnase-a/rnase-s.html
Silk Mate 2S Nosan Co., Ltd not shown Artificial diet; https://www.nosan.co.jp/business/fodder/ist.htm
Sodium Chloride FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 NaCl; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0119-0166.html
Sodium Dodecyl Sulfate FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 Cell lysis buffer (SDS); https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0119-1398.html
sodium hypochlorite aqueous solution FUJIFILM Wako Chemicals Co., Osaka, Japan 4.98748E+12 egg separation; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0119-0220.html
Tetracycline Hydrochloride FUJIFILM Wako Chemicals Co., Osaka, Japan 4.98748E+12 Sterilization; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0120-1656.html
Tris-HCl FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 Cell lysis buffer; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0120-1536.html
ultra-pure distilled water Invitrogen 10977023 RNA extraction; https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/10977015

References

  1. Gaston, K. J. The magnitude of global insect species richness. Conservation Biology. 5 (3), 283-296 (1991).
  2. Pogue, M. A world revision of the genus Spodoptera Guenée (Lepidoptera: Noctuidae). Memoirs of the American Entomological Society. 43, 1 (2002).
  3. Matsuura, H., Naito, A. Studies on the cold-hardiness and overwintering of Spodoptera litura F. (Lepidoptera: Noctuidae): VI. Possible overwintering areas predicted from meteorological data in Japan. Applied Entomology and Zoology. 32 (1), 167-177 (1997).
  4. Mita, K., et al. The construction of an EST database for Bombyx mori and its application. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (24), 14121-14126 (2003).
  5. Kawamoto, M., et al. High-quality genome assembly of the silkworm, Bombyx mori. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 107, 53-62 (2019).
  6. Fukui, T., et al. In vivo masculinizing function of the Ostrinia furnacalis Masculinizer gene. Biochemical and Biophysical Research Communications. 503 (3), 1768-1772 (2018).
  7. Arai, H., Ishitsubo, Y., Nakai, M., Inoue, M. N. A simple method to disperse eggs from lepidopteran scale-like egg masses and to observe embryogenesis. Entomological Science. 25 (1), 12497 (2022).
  8. vander Geest, L. P., Evenhuis, H. H. . Tortricid pests: their biology, natural enemies and control. , (1991).
  9. Kiuchi, T., et al. A single female-specific piRNA is the primary determiner of sex in the silkworm. Nature. 509 (7502), 633-636 (2014).
  10. Rand, M. D., Kearney, A. L., Dao, J., Clason, T. Permeabilization of Drosophila embryos for introduction of small molecules. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 40 (11), 792-804 (2010).
  11. Kageyama, D., Traut, W. Opposite sex-specific effects of Wolbachia and interference with the sex determination of its host Ostrinia scapulalis. Proceedings of the Royal Society B. 271 (1536), 251-258 (2004).
  12. Arai, H., Lin, S. R., Nakai, M., Kunimi, Y., Inoue, M. N. Closely related male-killing and nonmale-killing Wolbachia strains in the oriental tea tortrix Homona magnanima. Microbial Ecology. 79 (4), 1011-1020 (2020).
  13. Schalamun, M., et al. Harnessing the MinION: An example of how to establish long-read sequencing in a laboratory using challenging plant tissue from Eucalyptus pauciflora. Molecular Ecology Resources. 19 (1), 77-89 (2019).
  14. Winnebeck, E. C., Millar, C. D., Warman, G. R. Why does insect RNA look degraded. Journal of Insect Science. 10 (1), 159 (2010).
  15. Ivey, C. T., Carr, D. E., Eubanks, M. D. Effects of inbreeding in Mimulus guttatus on tolerance to herbivory in natural environments. Ecology. 85 (2), 567-574 (2004).
  16. Saccheri, I., et al. Inbreeding and extinction in a butterfly metapopulation. Nature. 392 (6675), 491-494 (1998).
  17. Crnokrak, P., Roff, D. A. Inbreeding depression in the wild. Heredity. 83 (3), 260-270 (1999).
  18. Keller, L. F., Waller, D. M. Inbreeding effects in wild populations. Trends in Ecology & Evolution. 17 (5), 230-241 (2002).
  19. Margaritis, L. H., Kafatos, F. C., Petri, W. H. The eggshell of Drosophila melanogaster. I. Fine structure of the layers and regions of the wild-type eggshell. Journal of Cell Science. 43 (1), 1-35 (1980).
  20. Sugimoto, T. N., Ishikawa, Y. A male-killing Wolbachia carries a feminizing factor and is associated with degradation of the sex-determining system of its host. Biology Letters. 8 (3), 412-415 (2012).
check_url/63737?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Arai, H., Ishitsubo, Y., Nakai, M., Inoue, M. N. Mass-Rearing and Molecular Studies in Tortricidae Pest Insects. J. Vis. Exp. (181), e63737, doi:10.3791/63737 (2022).

View Video