Summary

En kompetent hepatocyttmodell som undersøker hepatitt B-virusinngang gjennom natriumtaurokolat som transporterer polypeptid som terapeutisk mål

Published: May 10, 2022
doi:

Summary

Vi presenterer en protokoll for å screene anti-hepatitt B-virus (HBV) forbindelser rettet mot pre- og post-viral oppføring livssyklus stadier, ved hjelp av isotermisk titrering kalorimetri for å måle binding affinitet (KD) med vert natrium taurocholate cotransporting polypeptid. Antiviral effekt ble bestemt gjennom undertrykkelse av virale livssyklusmarkører (cccDNA-dannelse, transkripsjon og viral montering).

Abstract

Hepatitt B-virus (HBV) infeksjon har blitt ansett som en avgjørende risikofaktor for hepatocellulært karsinom. Nåværende behandling kan bare redusere virusbelastningen, men ikke resultere i fullstendig remisjon. En effektiv hepatocyttmodell for HBV-infeksjon vil tilby en sann viral livssyklus som vil være avgjørende for screening av terapeutiske midler. De fleste tilgjengelige anti-HBV-midler er rettet mot livssyklusstadier etter viral oppføring, men ikke før viral oppføring. Denne protokollen beskriver genereringen av en kompetent hepatocyttmodell som er i stand til å screene for terapeutiske midler rettet mot pre-viral oppføring og livssyklusstadier etter virusinngang. Dette inkluderer målretting av natriumtaurokolat som transporterer polypeptid (NTCP), cccDNA-dannelse, transkripsjon og viral montering basert på imHC eller HepaRG som vertsceller. Her brukte HBV-inngangshemmingsanalysen curcumin for å hemme HBV-bindings- og transportfunksjoner via NTCP. Hemmerne ble evaluert for bindingsaffinitet (KD) med NTCP ved bruk av isotermisk titreringskalorimetri (ITC)-et universelt verktøy for HBV-legemiddelscreening basert på termodynamiske parametere.

Introduction

Hepatitt B-virus (HBV) infeksjon regnes som en livstruende sykdom over hele verden. Kronisk HBV-infeksjon er belastet med risiko for levercirrhose og hepatocellulært karsinom1. Nåværende anti-HBV-behandling fokuserer hovedsakelig på postviral oppføring ved bruk av nukleos (t) idanaloger (NAs) og interferon-alfa (IFN-α) 2,3. Oppdagelsen av en HBV-inngangshemmer, Myrcludex B, har identifisert et nytt mål for anti-HBV-midler4. Kombinasjonen av inngangshemmere og NAer i kronisk HBV har betydelig redusert virusbelastningen sammenlignet med de som retter seg mot viral replikasjon alene 5,6. Den klassiske hepatocyttmodellen for screening av HBV-inngangshemmere er imidlertid begrenset av lave virale reseptornivåer (natriumtaurokolat som transporterer polypeptid, NTCP). Overekspresjonen av hNTCP i hepatomceller (dvs. HepG2 og Huh7) forbedrer HBV-smittsomhet 7,8. Likevel uttrykker disse cellelinjene lave nivåer av fase I og II legemiddelmetaboliserende enzymer og utviser genetisk ustabilitet9. Hepatocyttmodeller som kan bidra til å målrette forskjellige mekanismer for kandidat-anti-HBV-forbindelser som previral oppføring, NTCP-binding og viral oppføring, vil fremskynde identifisering og utvikling av effektive kombinasjonsregimer. Studien for anti-HBV-aktivitet av curcumin har belyst inhiberingen av viral oppføring som en ny mekanisme i tillegg til postviral inngangsavbrudd. Denne protokollen beskriver en vertsmodell for screening av anti-HBV-inngangsmolekyler10.

Målet med denne metoden er å utforske kandidat anti-HBV forbindelser for viral oppføring hemming, spesielt blokkerer NTCP binding og transport. Siden NTCP-uttrykk er en kritisk faktor for HBV-oppføring og infeksjon, optimaliserte vi hepatocyttmodningsprotokollen for å maksimere NTCP-nivåene11. I tillegg kan denne protokollen differensiere den hemmende effekten på HBV-oppføring som inhibering av HBV-vedlegg versus inhibering av internalisering. Taurokolsyreanalysen (TCA) ble også modifisert ved hjelp av en ELISA-basert metode i stedet for en radioisotop for å representere NTCP-transport12,13. Reseptor- og ligandinteraksjonen ble bekreftet av deres 3D-strukturer14,15. Hemmingen av NTCP-funksjonen kan evalueres ved å måle TCA-opptaksaktivitet16. Denne teknikken ga imidlertid ikke direkte bevis for NTCP-binding til kandidathemmerne. Derfor kan bindingen undersøkes ved hjelp av forskjellige teknikker, for eksempel overflateplasmonresonans 17, ELISA, fluorescensbasert termisk skiftanalyse (FTSA) 18, FRET19, AlphaScreen og forskjellige andre metoder20. Blant disse teknikkene er ITC en målstandard i bindingsanalyse fordi den kan observere varmeabsorpsjon eller utslipp i nesten hver reaksjon21. Bindingsaffiniteten (KD) til NTCP og kandidatforbindelser ble direkte evaluert ved hjelp av ITC; Disse affinitetsverdiene var mer presise enn de som ble oppnådd ved bruk av In Silico prediksjonsmodell22.

Denne protokollen dekker teknikker i hepatocyttmodning, HBV-infeksjon og screening for HBV-inngangshemmer. Kort fortalt ble det utviklet en hepatocyttmodell basert på imHC- og HepaRG-cellelinjer. De dyrkede cellene ble differensiert til modne hepatocytter innen 2 uker. Oppregulering av NTCP-nivåer ble påvist ved bruk av sanntids PCR, western blot og flowcytometri11. Hepatitt B-virion (HBVcc) ble produsert og samlet inn fra HepG2.2.15. Den differensierte imHC eller HepaRG (d-imHC, d-HepaRG) ble profylaktisk behandlet med anti-HBV-kandidatene 2 timer før inokuleringen med HBV-virion. Det forventede resultatet av forsøket var identifisering av midlene som reduserer cellulær HBV og smittsomhet. Anti-NTCP-aktivitet ble evaluert ved hjelp av TCA-opptaksanalysen. NTCP-aktivitet kan undertrykkes av agenter som spesifikt bundet NTCP. ITC-teknikken ble brukt til å undersøke muligheten for interaktiv binding som kunne forutsi inhibitorer og deres målproteiner, og bestemme bindingsaffiniteten (KD) av liganden for reseptoren via ikke-kovalente interaksjoner av det biomolekylære komplekset23,24. For eksempel representerer K D ≥ 1 × 103 mM svak binding, K D ≥ 1 × 106 μM representerer moderat binding, og K D ≤ 1 × 109 nM representerer sterk binding. ΔG er direkte korrelert med bindingsinteraksjoner. Spesielt er en reaksjon med negativ ΔG en eksergonisk reaksjon, noe som indikerer at binding er en spontan prosess. En reaksjon med negativ ΔH indikerer at bindingsprosessene er avhengige av hydrogenbinding og Van der Waals-krefter. Både TCA-opptak og ITC-data kan brukes til å screene for anti-HBV-inngangsagenter. Resultatene av disse protokollene kan gi grunnlag for ikke bare anti-HBV-screening, men også interaksjonen med NTCP vurdert gjennom bindingsaffinitet og transportfunksjon. Denne artikkelen beskriver vertscellepreparering og karakterisering, eksperimentell design og evaluering av anti-HBV-oppføringen sammen med NTCP-bindingsaffiniteten.

Protocol

MERK: Følgende prosedyrer må utføres i en klasse II biologisk farestrømningshette eller en hette med laminær strømning. Håndteringen av HBV ble etisk godkjent av IRB (MURA2020/1545). Se materialfortegnelsen for detaljer om alle løsninger, reagenser, utstyr og cellelinjer som brukes i denne protokollen. 1. Forbereder vertsceller (modne hepatocytter) Dyrkningshepatocytter (3,75 × 105 celler HepaRG eller imHC) og opprettholdes i en 7…

Representative Results

Hepatiske modningsegenskaper ble observert, inkludert binukleerte celler og polygonalformet morfologi (figur 1), spesielt i det differensierte stadiet av imHC (figur 1A). En stor økning i NTCP-ekspresjon ble målt i d-HepaRG og d-imHC ved henholdsvis 7 ganger og 40 ganger (figur 1B). Den svært glykosylerte formen for NTCP, postulert for å gi følsomhet for HBV-oppføring, ble påvist mer i d-imHC enn i d-HepaRG (<strong class="xf…

Discussion

HBV-infeksjon initieres via lavaffinitetsbinding til heparansulfatproteoglykaner (HSPG) på hepatocytter25, etterfulgt av binding til NTCP med påfølgende internalisering gjennom endocytose26. Siden NTCP er en avgjørende reseptor for HBV-oppføring, kan målretting av HBV-oppføring klinisk oversettes for å redusere de novo-infeksjon , mor-til-barn-overføring (MTCT) og tilbakefall etter levertransplantasjon. Avbryte viral oppføring ville være et mulig alterna…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette forskningsprosjektet er støttet av Mahidol University og Thailand Science Research and Innovation (TSRI) separat tildelt A. Wongkajornsilp og K. Sa-ngiamsuntorn. Dette arbeidet ble økonomisk støttet av Office of National Higher Education Science Research and Innovation Policy Council gjennom Program Management Unit for Competitiveness (tilskuddsnummer C10F630093). A. Wongkajornsilp er mottaker av et Chalermprakiat-stipend fra Det medisinske fakultet Siriraj Hospital, Mahidol University. Forfatterne vil gjerne takke Miss Sawinee Seemakhan (Excellent Center for Drug Discovery, Fakultet for naturvitenskap, Mahidol University) for hennes hjelp med ITC-teknikken.

Materials

Cell lines
HepaRG Cells, Cryopreserved Thermo Fisher Scientific HPRGC10
Hep-G2/2.2.15 Human Hepatoblastoma Cell Line Merck SCC249
Reagents
4% Paraformadehyde Phosphate Buffer Solution FUJIFLIM Wako chemical 163-20145
BD Perm/Wash buffer BD Biosciences 554723 Perm/Wash buffer
Cyclosporin A abcam 59865-13-3
EDTA Invitrogen 15575-038 8 mM
G 418 disulfate salt Merck 108321-42-2
Halt Protease Inhibitor Cocktail  EDTA-free (100x) Thermo Scientific 78425
HEPES Merck 7365-45-9
illustraTM RNAspin Mini RNA isolation kits GE Healthcare 25-0500-71
illustra RNAspin Mini RNA Isolation Kit GE Healthcare 25-0500-71
ImProm-II Reverse Transcription System Promega A3800
KAPA SYBR FAST qPCR Kit Kapa Biosystems KK4600
Lenti-X Concentrator Takara bio PT4421-2 concentrator
Luminata crescendo Western HRP substrate Merck WBLUR0100
Master Mix (2x) Universal Kapa Biosystems KK4600
Nucleospin DNA extraction kit macherey-nagel 1806/003
Phosphate buffered saline Merck P3813
Polyethylene glycol 8000 Merck 25322-68-3
ProLong Gold Antifade Mountant Thermo scientific P36930
Recombinant NTCP Cloud-Clone RPE421Hu02
RIPA Lysis Buffer (10x) Merck 20-188
TCA Sigma 345909-26-4
TCA Elisa kit Mybiosource MB2033685
Triton X-100 Merck 9036-19-5
Trypsin-EDTA Gibco 25200072 Dilute to 0.125%
Antibodies
    Anti-NTCP1 antibody Abcam ab131084 1:100 dilution
    Anti-GAPDH antibody Thermo Fisher Scientific AM4300 1:200,000 dilution
   HRP-conjugated goat anti-rabbit antibody Abcam ab205718 1:10,000 dilution
   HRP goat anti-mouse secondary antibody Abcam ab97023 1:10,000 dilution
   Goat anti-Rabbit IgG Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 Invitrogen A-11008 1:500 dilution
Reagent composition
1° Antibody dilution buffer
     1x TBST
     3% BSA Sigma A7906-100G Working concentration: 3%
     Sodium azide Sigma 199931 Working concentration: 0.05%
Hepatocyte Growth Medium
      DME/F12 Gibco 12400-024
      10% FBS Sigma Aldrich F7524
      1% Pen/Strep HyClon SV30010
      1% GlutaMAX Gibco 35050-061
Hepatic maturation medium
      Williams’ E medium Sigma Aldrich W4125-1L
      10% FBS Sigma Aldrich F7524
      1% Pen/Strep HyClon SV30010
      1% GlutaMAX Gibco 35050-061
      5 µg/mL  Insulin Sigma Aldrich 91077C-100MG
      50 µM hydrocotisone Sigma Aldrich H0888-1g
     2% DMSO PanReac AppliChem A3672-250ml
IF Blocking solution
     1x PBS Gibco 21300-058
     3% BSA Sigma A7906-100G Working concentration: 3%
     0.2% Triton X-100 Sigma T8787 Working concentration: 0.2%
RIPA Lysis Buffer Solution Merck 20-188 Final concentration: 1X
     Protease Inhibitor Cocktail Thermo Scientific 78425 Final concentration: 1X
       Na3VO4 Final concentration: 1 mM
       PMSF Final concentration: 1 mM
       NaF Final concentration: 10 mM
Western blot reagent
     10x Tris-buffered saline (TBS) Bio-Rad 170-6435 Final concentration: 1X
     Tween 20 Merck 9005-64-5
     1x TBST 0.1% Tween 20
     1x PBS Gibco 21300-058
     Pierce BCA Protein Assay Kit Thermo Fisher Scientific A53225
     Polyacrylamide gel Bio-Rad 161-0183
     Ammonium Persulfate (APS) Bio-Rad 161-0700 Final concentration: 0.05%
    TEMED Bio-Rad 161-0800 Stacker gel: 0.1%, Resolver gel: 0.05%
    2x Laemmli Sample Buffer Bio-Rad 161-0737 Final concentration: 1X
    Precision Plus Protein Dual Color Standards Bio-Rad 161-0374
WB Blocking solution/ 2° Antibody dilution buffer
     1x TBST
     5% Skim milk (nonfat dry milk) Bio-Rad 170-6404 Working concentration: 5%
1x Running buffer 1 L
      10x Tris-buffered saline (TBS) Bio-Rad 170-6435 Final concentration: 1X
     Glycine Sigma G8898 14.4 g
     SDS Merck 7910 Working concentration: 0.1%
Blot transfer buffer 500 mL
      10x Tris-buffered saline (TBS) Bio-Rad 170-6435 Final concentration: 1X
     Glycine Sigma G8898 7.2 g
     Methanol Merck 106009 100 mL
Mild stripping solution 1 L Adjust pH to 2.2
    Glycine Sigma G8898 15 g
     SDS Merck 7910 1 g
     Tween 20 Merck 9005-64-5 10 mL
Equipments
15 mL centrifuge tube Corning 430052
50 mL centrifuge tube Corning 430291
Airstream Class II Esco 2010621 Biological safety cabinet
CelCulture CO2 Incubator Esco 2170002 Humidified tissue culture incubator
CFX96 Touch Real-Time PCR Detector Bio-Rad 1855196
FACSVerse Flow Cytometer BD Biosciences 651154
Graduated pipettes (10 mL) Jet Biofil GSP010010
Graduated pipettes (5 mL) Jet Biofil GSP010005
MicroCal PEAQ-ITC Malvern Isothermal titration calorimeters
Mini PROTEAN Tetra Cell Bio-Rad 1658004 Electrophoresis chamber
Mini Trans-blot absorbent filter paper Bio-Rad 1703932
Omega Lum G Imaging System Aplegen 8418-10-0005
Pipette controller Eppendorf 4430000.018 Easypet 3
PowerPac HC Bio-Rad 1645052 Power supply
PVDF membrane Merck IPVH00010
T-75 A91:D106flask Corning 431464U
Trans-Blot SD Semi-Dry Transfer Cell Bio-Rad 1703940 Semi-dry transfer cell
Ultrasonic processor (Vibra-Cell VCX 130) Sonics & Materials
Versati Tabletop Refrigerated Centrifuge Esco T1000R Centrifuge with swinging bucket rotar

References

  1. Levrero, M., Zucman-Rossi, J. Mechanisms of HBV-induced hepatocellular carcinoma. Journal of Hepatology. 64 (1), 84-101 (2016).
  2. Kim, K. -. H., Kim, N. D., Seong, B. -. L. Discovery and development of anti-HBV agents and their resistance. Molecules. 15 (9), 5878-5908 (2010).
  3. Shaw, T., Bowden, S., Locarnini, S. Chemotherapy for hepatitis B: New treatment options necessitate reappraisal of traditional endpoints. Gastroenterology. 123 (6), 2135-2140 (2002).
  4. Volz, T., et al. The entry inhibitor Myrcludex-B efficiently blocks intrahepatic virus spreading in humanized mice previously infected with hepatitis B virus. Journal of Hepatology. 58 (5), 861-867 (2013).
  5. Mak, L. -. Y., Seto, W. -. K., Yuen, M. -. F. Novel antivirals in clinical development for chronic hepatitis B infection. Viruses. 13 (6), 1169 (2021).
  6. Zuccaro, V., Asperges, E., Colaneri, M., Marvulli, L. N., Bruno, R. HBV and HDV: New Treatments on the Horizon. Journal of Clinical Medicine. 10 (18), 4054 (2021).
  7. Iwamoto, M., et al. Evaluation and identification of hepatitis B virus entry inhibitors using HepG2 cells overexpressing a membrane transporter NTCP. Biochemical and Biophysical Research Communications. 443 (3), 808-813 (2014).
  8. Tong, S., Li, J. Identification of NTCP as an HBV receptor: the beginning of the end or the end of the beginning. Gastroenterology. 146 (4), 902-905 (2014).
  9. Xuan, J., Chen, S., Ning, B., Tolleson, W. H., Guo, L. Development of HepG2-derived cells expressing cytochrome P450s for assessing metabolism-associated drug-induced liver toxicity. Chemico-Biological Interactions. 255, 63-73 (2016).
  10. Thongsri, P., et al. Curcumin inhibited hepatitis B viral entry through NTCP binding. Scientific Reports. 11 (1), 19125 (2021).
  11. Sa-Ngiamsuntorn, K., et al. An immortalized hepatocyte-like cell line (imHC) accommodated complete viral lifecycle, viral persistence form, cccDNA and eventual spreading of a clinically-isolated HBV. Viruses. 11 (10), 952 (2019).
  12. Watashi, K., et al. Cyclosporin A and its analogs inhibit hepatitis B virus entry into cultured hepatocytes through targeting a membrane transporter, sodium taurocholate cotransporting polypeptide (NTCP). Hepatology. 59 (5), 1726-1737 (2014).
  13. Kaneko, M., et al. A novel tricyclic polyketide, Vanitaracin A, specifically inhibits the entry of hepatitis B and D viruses by targeting sodium taurocholate cotransporting polypeptide. Journal of Virology. 89 (23), 11945-11953 (2015).
  14. Manta, B., Obal, G., Ricciardi, A., Pritsch, O., Denicola, A. Tools to evaluate the conformation of protein products. Biotechnology Journal. 6 (6), 731-741 (2011).
  15. Martinez Molina, D., Nordlund, P. The cellular thermal shift assay: a novel biophysical assay for in situ drug target engagement and mechanistic biomarker studies. Annual Review of Pharmacology and Toxicology. 56, 141-161 (2016).
  16. Appelman, M. D., Chakraborty, A., Protzer, U., McKeating, J. A., van de Graaf, S. F. J. N-Glycosylation of the Na+-taurocholate cotransporting polypeptide (NTCP) determines its trafficking and stability and is required for hepatitis B virus infection. PLoS One. 12 (1), 0170419 (2017).
  17. Tsukuda, S., et al. A new class of hepatitis B and D virus entry inhibitors, proanthocyanidin and its analogs, that directly act on the viral large surface proteins. Hepatology. 65 (4), 1104-1116 (2017).
  18. Klumpp, K., et al. High-resolution crystal structure of a hepatitis B virus replication inhibitor bound to the viral core protein. Proceedings of the National Academy of Sciences. 112 (49), 15196-15201 (2015).
  19. Donkers, J. M., Appelman, M. D., van de Graaf, S. F. J. Mechanistic insights into the inhibition of NTCP by myrcludex B. JHEP Reports. 1 (4), 278-285 (2019).
  20. Saso, W., et al. A new strategy to identify hepatitis B virus entry inhibitors by AlphaScreen technology targeting the envelope-receptor interaction. Biochemical and Biophysical Research Communications. 501 (2), 374-379 (2018).
  21. Baranauskiene, L., Kuo, T. C., Chen, W. Y., Matulis, D. Isothermal titration calorimetry for characterization of recombinant proteins. Current Opinion in Biotechnology. 55, 9-15 (2019).
  22. Zhang, J., et al. Structure-based virtual screening protocol for in silico identification of potential thyroid disrupting chemicals targeting transthyretin. Environmental Science & Technology. 50 (21), 11984-11993 (2016).
  23. Duff, J. M. R., Grubbs, J., Howell, E. E. Isothermal titration calorimetry for measuring macromolecule-ligand affinity. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (55), e2796 (2011).
  24. Du, X., et al. Insights into protein-ligand interactions: mechanisms, models, and methods. International Journal of Molecular Sciences. 17 (2), 144 (2016).
  25. Sureau, C., Salisse, J. A conformational heparan sulfate binding site essential to infectivity overlaps with the conserved hepatitis B virus A-determinant. Hepatology. 57 (3), 985-994 (2013).
  26. Herrscher, C., et al. Hepatitis B virus entry into HepG2-NTCP cells requires clathrin-mediated endocytosis. Cellular Microbiology. 22 (8), 13205 (2020).
  27. Gripon, P., et al. Infection of a human hepatoma cell line by hepatitis B virus. Proceedings of the National Academy of Sciences. 99 (24), 15655-15660 (2002).
  28. Mayati, A., et al. Functional polarization of human hepatoma HepaRG cells in response to forskolin. Scientific Reports. 8 (1), 16115 (2018).
  29. Sells, M. A., Chen, M. L., Acs, G. Production of hepatitis B virus particles in Hep G2 cells transfected with cloned hepatitis B virus DNA. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 84 (4), 1005-1009 (1987).
  30. Freyer, M. W., Lewis, E. A. Isothermal titration calorimetry: experimental design, data analysis, and probing macromolecule/ligand binding and kinetic interactions. Methods in Cell Biology. 84, 79-113 (2008).
  31. Srivastava, V. K., Yadav, R., Misra, G. . Data Processing Handbook for Complex Biological Data Sources. , 125-137 (2019).
  32. Seeger, C., Mason, W. S. Sodium-dependent taurocholic cotransporting polypeptide: a candidate receptor for human hepatitis B virus. Gut. 62 (8), 1093-1095 (2013).
  33. Seeger, C., Sohn, J. A. Targeting hepatitis B virus with CRISPR/Cas9. Molecular Therapy – Nucleic Acids. 3, 216 (2014).
  34. Ni, Y., et al. Hepatitis B and D viruses exploit sodium taurocholate co-transporting polypeptide for species-specific entry into hepatocytes. Gastroenterology. 146 (4), 1070-1083 (2014).
  35. Chai, N., et al. Properties of subviral particles of hepatitis B virus. Journal of Virology. 82 (16), 7812-7817 (2008).
  36. Moore, A., Chothe, P. P., Tsao, H., Hariparsad, N. Evaluation of the interplay between uptake transport and CYP3A4 induction in micropatterned cocultured hepatocytes. Drug Metabolism and Disposition. 44 (12), 1910-1919 (2016).
  37. Parvez, M. K., et al. Plant-derived antiviral drugs as novel hepatitis B virus inhibitors: Cell culture and molecular docking study. Saudi Pharmaceutical Journal. 27 (3), 389-400 (2019).
check_url/kr/63761?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sa-ngiamsuntorn, K., Thongsri, P., Pewkliang, Y., Borwornpinyo, S., Wongkajornsilp, A. A Competent Hepatocyte Model Examining Hepatitis B Virus Entry through Sodium Taurocholate Cotransporting Polypeptide as a Therapeutic Target. J. Vis. Exp. (183), e63761, doi:10.3791/63761 (2022).

View Video