Summary

엽록소 형광 분석에 의한 광호흡 돌연변이체의 광합성 효율 평가

Published: December 09, 2022
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Summary

우리는 엽록소 형광을 사용하여 낮은CO2 로 처리 한 후 식물에서 광합성 효율의 변화를 측정하는 접근법을 설명합니다.

Abstract

광합성과 광호흡은 식물의 1차 대사에서 가장 큰 탄소 플럭스를 나타내며 식물 생존에 필요합니다. 광합성과 광호흡에 중요한 많은 효소와 유전자는 수십 년 동안 잘 연구되어 왔지만 이러한 생화학 적 경로의 일부 측면과 여러 세포 하 과정과의 혼선은 아직 완전히 이해되지 않았습니다. 식물 대사에 중요한 유전자와 단백질을 확인한 많은 작업은 자연 및 농업 환경에서 광합성과 광호흡이 어떻게 기능하는지 가장 잘 나타내지 않을 수있는 고도로 통제 된 환경에서 수행되었습니다. 비생물적 스트레스가 광합성 효율을 손상시킨다는 점을 고려할 때, 비생물적 스트레스와 광합성에 미치는 영향을 모두 모니터링할 수 있는 고처리량 스크린의 개발이 필요합니다.

따라서, 우리는 엽록소 형광 분석 및 낮은CO2 스크리닝을 사용하여 광호흡에서 역할을 하는 특성화되지 않은 유전자를 식별할 수 있는 비생물적 스트레스로 인한 광합성 효율의 변화를 스크리닝하는 비교적 빠른 방법을 개발했습니다. 이 논문은 애기장대 탈리아나에서 전달된 DNA(T-DNA) 녹아웃 돌연변이체의 광합성 효율 변화를 연구하는 방법을 설명합니다. 동일한 방법을 에틸 메탄술포네이트(EMS) 유도 돌연변이체 스크리닝 또는 억제기 스크리닝에 사용할 수 있습니다. 이 방법을 활용하면 식물 1 차 대사 및 비 생물 적 스트레스 반응에 대한 추가 연구를위한 유전자 후보를 식별 할 수 있습니다. 이 방법의 데이터는 증가 된 스트레스 환경에 노출 될 때까지 인식되지 않을 수있는 유전자 기능에 대한 통찰력을 제공 할 수 있습니다.

Introduction

농부의 밭에서 흔히 볼 수있는 비 생물 적 스트레스 조건은 광합성 효율을 감소시켜 작물 수확량에 부정적인 영향을 미칠 수 있습니다. 열파, 기후 변화, 가뭄 및 토양 염분과 같은 해로운 환경 조건은 CO2 가용성을 변경하고 높은 빛 스트레스에 대한 식물의 반응을 감소시키는 비 생물 적 스트레스를 유발할 수 있습니다. 가장 큰 두 개의 육상 탄소 플럭스는 식물 성장과 작물 수확량에 필수적인 광합성과 광호흡입니다. 이러한 과정에 관여하는 많은 중요한 단백질과 효소는 실험실 조건에서 특성화되었으며 유전 수준1에서 확인되었습니다. 광합성과 광호흡을 이해하는 데 많은 진전이 있었지만 식물 세포 기관 간의 수송을 포함한 많은 단계가 특성화되지 않은 상태로 남아 있습니다 2,3.

광합성 후 식물에서 두 번째로 큰 탄소 플럭스 인 광호흡은 효소 Rubisco가 이산화탄소 대신 산소를 리불 로스 1,5 비스 포스페이트 (RuBP)에 고정시켜 억제 화합물 2- 포스 포 글리콜 레이트 (2PG)1. 2PG의 억제 효과를 최소화하고 이전에 고정 된 탄소를 재활용하기 위해 C3 식물은 광호흡의 다중 세포 기관 과정을 진화 시켰습니다. 광호흡은 2PG의 두 분자를 3-포스포글리세레이트(3PGA)의 한 분자로 변환하여 C3 탄소 고정 주기1에 다시 들어갈 수 있습니다. 따라서 광호흡은 75PG 생성에서 이전에 고정 된 탄소의 2 % 만 변환하고 그 과정에서 ATP를 소비합니다. 결과적으로, 광호흡 과정은 물 가용성 및 성장기 온도에 따라 광합성 과정에서 상당한 10%-50% 드래그입니다4.

광호흡에 관여하는 효소는 수십 년 동안 연구 초점의 영역이었지만 과정 5,6,7에 최소 25개의 수송 단계가 관련되어 있음에도 불구하고 유전적 수준에서 소수의 수송 단백질만 특성화되었습니다. 광호흡 과정에서 생성 된 탄소의 이동에 직접 관여하는 두 가지 수송 단백질은 색소체 글리콜 레이트 / 글리세 레이트 수송 체 PLGG1과 담즙산 나트륨 symporter BASS6이며, 둘 다 엽록체 5,6에서 글리콜 레이트의 수출에 관여합니다.

주변 [CO2]하에서, 루비스코는 산소 분자를 시간의 약 20%의 RuBP에 고정시킨다1. 식물이 낮은 [CO2]에 노출되면 광호흡 속도가 증가하여 낮은 [CO2]가 높은 광호흡 스트레스 하에서 중요할 수 있는 돌연변이를 테스트하기에 이상적인 환경이 됩니다. 24시간 동안 낮은CO2 하에서 추가적인 추정 엽록체 수송 단백질 T-DNA 라인을 테스트하고 엽록소 형광의 변화를 측정하여 광호흡 돌연변이 표현형5를 입증한 bass6-1 식물 라인을 식별했습니다. 추가 특성화는 BASS6가 엽록체의 내막에있는 글리콜 레이트 수송 체임을 입증했습니다.

이 논문은 엽록체 막 내에 위치한 추정 수송 단백질 목록에서 나온 BASS6를 광호흡 수송체로 식별하기 위해 처음에 사용 된 것과 유사한 프로토콜을 자세히 설명합니다.8 이 프로토콜은 열과 같은 다양한 비 생물 적 스트레스 하에서 광합성 효율을 유지하는 데 중요한 유전자를 식별하는 방법으로 Arabidopsis T-DNA 돌연변이 체 또는 EMS 생성 돌연변이 식물을 특성화하는 고 처리량 실험에 사용될 수 있습니다. 높은 가벼운 스트레스, 가뭄 및 CO2 가용성. 엽록소 형광을 이용한 식물 돌연변이체 스크리닝은 1차 대사에 중요한 유전자를 신속하게 식별하기 위해 과거에 사용되어왔습니다9. Arabidopsis 게놈의 30 %가 알려지지 않았거나 잘 특성화되지 않은 단백질을 암호화하는 유전자를 포함하고 있기 때문에 광합성 효율의 스트레스 유도 분석은 돌연변이 식물10에서 통제 된 조건에서 관찰되지 않은 분자 기능에 대한 통찰력을 제공 할 수 있습니다. 이 방법의 목표는 낮은CO2 스크리닝을 사용하여 광호흡 경로의 돌연변이체를 확인하는 것이다. 우리는 낮은CO2에 노출 된 후 광호흡을 방해하는 돌연변이를 확인하는 방법을 제시합니다. 이 방법의 장점은 비교적 짧은 시간에 수행 할 수있는 묘목에 대한 고 처리량 스크리닝이라는 것입니다. 비디오 프로토콜 섹션은 종자 준비 및 살균, 식물 성장 및 낮은CO2 처리, 형광 이미징 시스템의 구성, 처리된 샘플의 양자 수율 측정, 대표 결과 및 결론에 대한 세부 정보를 제공합니다.

Protocol

1. 종자 준비 및 살균 알림: 종자 준비는 종자 흡수와 종자 살균으로 구성됩니다. 이러한 모든 단계는 멸균 상태를 유지하기 위해 층류 후드에서 수행되어야한다는 점에 유의해야합니다. 필요한 모든 재료, 시약 및 성장 배지는 오토클레이브되어야 합니다( 재료 표 참조). 종자 흡수 및 층화참고: 사용된 시드 라인은 plgg1-1 (salk_053463), <…

Representative Results

결과는 WT 및 시험 돌연변이체의 주변 및 낮은CO2 스크리닝으로부터의 원시 및 형광 이미지의 플레이트 이미지를 보여준다. 각 묘목은 면적 번호로 표시되어 있으며 해당 형광 판독값은 QY로 제공됩니다. 데이터는 텍스트 파일로 내보내지고 분석을 위해 스프레드시트에서 열 수 있습니다(보충 표 S1 참조). 돌연변이 라인 plgg1-1 및 abcb26은 광호흡 스트레스와 관련된 …

Discussion

이 백서에 설명된 실험 방법에는 몇 가지 장점과 한계가 있습니다. 한 가지 장점은이 방법이 많은 식물 묘목을 스크리닝 할 수 있다는 것입니다., 도금 및 성장 과정에서 식물 매체 플레이트의 오염을 방지하기 위해 몇 가지 예방 조치를 취해야합니다. 따라서 애기장대 판을 수술 용 테이프로 밀봉하는 것이 중요합니다. 이 실험의 또 다른 장점은 이전에 발표 된 작업8에 비해 12 ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 연구는 루이지애나 이사회 (AWD-AM210544)의 자금 지원을 받았습니다.

Materials

1.5 mL microcentrifuge tube VWR 10810-070 container for seed sterilization
agarose VWR 9012-36-6 chemical used to suspend seeds for ease of plating
Arabidopsis thaliana seeds (abcb26) ABRC, ordered through TAIR www.arabidopsis.org SALK_085232 arabidopsis seeds used as experimental group
Arabidopsis thaliana seeds (plgg1-1) ABRC, ordered through TAIR www.arabidopsis.org SALK_053469C parental arabidopsis seeds 
Arabidopsis thaliana seeds (WT) ABRC, ordered through TAIR www.arabidopsis.org Col-0 arabidopsis wild type seeds used as a control group
 bleach  clorox generic bleach  chemical used to sterilize seeds
Carbolime absorbent Medline products S232-104-001 CO2 absorbent
Closed FluorCam Photon Systems Instruments FC 800-C Fluorescence imager
FluoroCam FC 800-C Photon Systems Instruments Closed FluorCam FC 800-C/1010-S Fluorescence imager
FluoroCam7 Photon Systems Instruments Closed FluorCam FC 800-C/1010-S Fluorescence image analysis software
Gelzan (plant agar) Phytotech labs 71010-52-1 chemical used to solidify MS media as plates 
glass flask 1 L Fisherbrand FB5011000 container for making and autoclaving MS media
growth chamber caron 7317-50-2 growth chamber used to grow plants
Murashige & Skoog Basal Medium with Vitamins & 1.0 g/L MES (MS) Phytotech labs M5531  growth media for arabidopsis seedlings 
potassium Hydroxide (KOH) Phytotech labs 1310-58-3 make as 1 M solution for ph adjustment
spider lights Mean Well Enterprises XLG-100-H-AB lights used in the light assay 
Square Petri Dish with Grid, sterile Simport Scientific D21016 used to hold MS media for arabidopsis seedlings
surgical tape 3M 1530-1 tape used to seal plates
tween 20 biorad  9005-64-5 surfactant used to assist seed sterilization

References

  1. Peterhansel, C., et al. Photorespiration. Arabidopsis Book. 8, 0130 (2010).
  2. Bordych, C., Eisenhut, M., Pick, T. R., Kuelahoglu, C., Weber, A. P. Co-expression analysis as tool for the discovery of transport proteins in photorespiration. Plant Biology. 15 (4), 686-693 (2013).
  3. Eisenhut, M., Pick, T. R., Bordych, C., Weber, A. P. Towards closing the remaining gaps in photorespiration–the essential but unexplored role of transport proteins. Plant Biology. 15 (4), 676-685 (2013).
  4. Walker, B. J., VanLoocke, A., Bernacchi, C. J., Ort, D. R. The costs of photorespiration to food production now and in the future. Annual Review of Plant Biology. 67 (1), 107-129 (2016).
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  6. Pick, T. R., et al. PLGG1, a plastidic glycolate glycerate transporter, is required for photorespiration and defines a unique class of metabolite transporters. Proceedings of the National Academy Sciences of the United States of America. 110 (8), 3185-3190 (2013).
  7. Kuhnert, F., Schlüter, U., Linka, N., Eisenhut, M. Transport proteins enabling plant photorespiratory metabolism. Plants. 10 (5), 880 (2021).
  8. Badger, M. R., Fallahi, H., Kaines, S., Takahashi, S. Chlorophyll fluorescence screening of Arabidopsis thaliana for CO2 sensitive photorespiration and photoinhibition mutants. Funct Plant Biology. 36 (11), 867-873 (2009).
  9. Ogawa, T., Sonoike, K. Screening of mutants using chlorophyll fluorescence. Journal of Plant Research. 134 (4), 653-664 (2021).
  10. Kleffmann, T., et al. The Arabidopsis thaliana chloroplast proteome reveals pathway abundance and novel protein functions. Current Biology. 14 (5), 354-362 (2004).
  11. Hempel, J. J. . Molecular characterization of the plastid-localized ABC protein TAP1 in Arabidopsis thaliana. , (2018).
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Cite This Article
Qian, J., Ferrari, N., Garcia, R., Rollins, M. B. L., South, P. F. Evaluation of Photosynthetic Efficiency in Photorespiratory Mutants by Chlorophyll Fluorescence Analysis. J. Vis. Exp. (190), e63801, doi:10.3791/63801 (2022).

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