Summary

Ett fotodynamiskt tillvägagångssätt för att studera funktionen av intracellulärt vesikelbrott

Published: March 17, 2023
doi:

Summary

AlPcS2a-medierad kromoforassisterad laserinaktivering (CALI) är ett kraftfullt verktyg för att studera spatiotemporal skada av intracellulära vesiklar (IV) i levande celler.

Abstract

Intracellulära vesiklar (IV) bildas genom endocytos av vesiklar i cytoplasma. IV-bildning är involverad i aktivering av olika signalvägar genom permeabilisering av IV-membran och bildandet av endosomer och lysosomer. En metod som kallas kromoforassisterad laserinaktivering (CALI) används för att studera bildandet av intravenösa läkemedel och materialen vid styrning av intravenös reglering. CALI är en bildbaserad fotodynamisk metod för att studera signalvägen inducerad av membranpermeabilisering. Metoden tillåter spatiotemporal manipulation av den valda organellen att permeabiliseras i en cell. CALI-metoden har tillämpats för att observera och övervaka specifika molekyler genom permeabilisering av endosomer och lysosomer. Membranbrottet av IV är känt för att selektivt rekrytera glykanbindande proteiner, såsom galectin-3. Här beskriver protokollet induktionen av IV-ruptur av AlPcS2a och användningen av galectin-3 som en markör för att märka nedsatta lysosomer, vilket är användbart för att studera nedströmseffekterna av IV-membranbrott och deras nedströmseffekter under olika situationer.

Introduction

Endosomer, en typ av intracellulär vesikel (IV), bildas av endocytos och mognar sedan till lysosomer. Olika intracellulära signalvägar är involverade i bildandet av IV; Dessutom kan olika inneboende och yttre stimuli skada IV (t.ex. patogener kan fly från det avgränsade membranet under infektion och gå in i cytoplasma1). Detta åtföljs vanligtvis av bristning av endocytotiska vesiklar2. Därför kan teknikerna för inriktning och skada IV användas i relaterade studier3.

Fotodynamisk terapi (PDT) är en ljusberoende terapi för att bekämpa sjukdomar genom att döda tumörer eller patogener4. I PDT är riktade celler märkta med giftfria kromoforer, kallade fotosensibiliserare, som kan aktiveras lokalt med ljusbelysning 5,6. Fotosensibilisatorer absorberar energi från ljus och omvandlas till ett exciterat singletttillstånd, vilket leder till det långlivade exciterade tripletttillståndet. Fotosensibilisatorer i tripletttillståndet kan genomgå elektron- eller energiöverföring och bilda reaktiva syrearter (ROS) i närvaro av syre och kan rumsligt förstöra märkta celler inom belysningsområdet7. Konsekvensen varierar beroende på ljusets kraft8. Genom att kontrollera koncentrationen av fotosensibilisatorer och intensiteten hos ljusbelysning kan riktade biomolekyler selektivt inaktiveras utan celllys, benämnd kromoforassisterad ljusinaktivering (CALI)9. Med den betydande utvecklingen av fotosensibilisatorer som selektivt kan märka olika subcellulära mål har CALI blivit ett värdefullt verktyg för att kontrollera ljusmedierad inaktivering av biomolekyler för små biomolekyler såsom nukleotider och proteiner, liksom organeller såsom mitokondrier och endososomer 3,10,11,12,13.

Jämfört med Cali används kemiska eller fysiska metoder också för att försämra membran, såsom bakterietoxin 14,15 och Leu-Leu-OMe 16-behandling för lysosomal skada. Dessa metoder visar emellertid bulkförsämring av IV i celler. Robusta fotosensibilisatorer (dvs. Al(III)ftalocyaninkloriddisulfonsyra (AlPcS2a)) används i CALI; AlPcS 2a, som riktar sig mot lysosomerna genom endocytos, används för attbrista endosomer eller lysosomer i en kontrollerad region17. AlPcS2a är en cellmembranogenomtränglig ftalocyaninbaserad kromofor som binder till lipid på plasmamembran och internaliseras genom endocytos och ackumuleras så småningom i lysosomen genom den endocytiska vägen18. Det absorberar ljus inom ett nära infrarött spektralområde och genererar singlettsyre, en viktig ROS som genereras av exciterad AlPcS2a18. Singlettsyresönderfall begränsar snabbt dess diffusions- och reaktionsavstånd inom ett litet område i celler (ungefär 10-20 nm)19. Genom att justeravaraktigheten av AlPcS 2a-inkubation och ljusbelysning tillåts spatiotemporal kontroll av skadorna på IV inom ett subcellulärt område. CALI blir därför ett kraftfullt verktyg för att undersöka konsekvenserna av IV-skador och bildandet och regleringen av IV.

I denna studie behandlas ett specifikt protokoll för CALI som använder AlPcS2a som fotosensibiliserare. Detta protokoll kan tillämpas på olika typer av IV, inklusive endosomer och lysosomer, och används för att undersöka uppföljningssvaren efter membranbrott. HeLa-celler som uttrycker fluoroforkonjugerat galectin-316,20 som avslöjats efter lysosombrott används för att demonstrera detta protokoll.

Protocol

1. AlPcS2a lagerberedning Lös 10 mg AlPcS2a i 400 μl 0,1 M NaOH. För att förbättra lösligheten, värm lösningen vid 50 °C och virvel. Blanda lösningen med 4 ml fosfatbuffrad saltlösning (PBS). Filtrera sedan lösningen med ett 0,22 μm filter för att avlägsna de olösliga fällningarna. Mät lösningens koncentration genom en UV-Vis-spektrofotometer. Extinktionskoefficienten för AlPcS2a vid 672 nm är 4 x 104 cm-1 <sup…

Representative Results

En schematisk figur som representerar AlPcS2a-inducerad skada av IV, inklusive endosom och lysosom, har visats (figur 1). Kommersiellt tillgängliga markörer kan användas för att bestämma färgningsförhållandena för AlPcS2a. Till exempel AlPcS2a puncta och grönt fluorescerande färgämne22 samlokalisering (figur 2). Fluoroformärkt galectin-3 …

Discussion

AlPcS2a binder till plasmamembranet, internaliseras sedan av endocytos och ackumuleras så småningom i lysosomer. AlPcS2a kan således lokaliseras i de subcellulära facken genom att justera inkubationstiden. En begränsning av denna metod är att endast en subpopulation av IV kan märkas av AlPcS2a genom endocytos eftersom det finns många andra membrankällor för IV, såsom ER och Golgi-apparater. Dessutom skulle den selektiva märkningen av AlPcS 2a i tidiga ellersena endo…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka Academia Sinica Inflammation Core Facility, IBMS för forskningsstöd. Kärnfaciliteten finansieras av Academia Sinica Core Facility and Innovative Instrument Project (AS-CFII-111-213). Författarna tackar Common Equipment Core Facility vid Institute of Biomedical Sciences (IBMS), Academia Sinica (AS) för att hjälpa bildförvärvet.

Materials

Reagent
Al(III) Phthalocyanine Chloride Disulfonic acid (AlPcS2a) Frontier Scientific P40632
Culture dish ibidi 812128-200
Culture Medium DMEM supplemented with 10% FBS and 100 U/mL penicillin G and 100 mg/mL Streptomycin
DMEM Gibco 11965092
FBS Thermo Fisher Scientific A4736301
Gal3-GFP plasmid addgene
Lipofectamine 3000 kit Thermo Fisher Scientific L3000008
LysoTracker Green DND-26 Thermo Fisher Scientific L7526 green fluorescent dye
Multiwall plate perkinelmer PK-6005550
NaOH Thermo Fisher Scientific Q15895
OptiMEM Thermo Fisher Scientific 31985070
Penicillin-streptomycin Gibco 15140163
Phosphate-Buffered Saline (PBS) Gibco 21600-069 137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10mM Na2HPO4, 1.8 mM KH2PO4
Cell line
HeLa Cell Line ATCC CCL-2 The methods are applicable for most of the attached cell lines. Conditions must be determined individually.
Equipments
0.22 µm Filter Merck SLGV013SL
Collimated LED Light  (660nm) Thorlabs M660L3-C1 and DC2100 Near-infared light is ideal base on the excitation spectrum of AlPcS2a.
Confocal microscopy Carl Zeiss LSM 780 An incubation system is required for long-term imaging.
NanoDrop 2000/2000c Spectrophotometers Thermo Fisher Scientific
Red LED light Tholabs M660L4-C1

References

  1. Cossart, P., Helenius, A. Endocytosis of viruses and bacteria. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 6 (8), 016972 (2014).
  2. Daussy, C. F., Wodrich, H. 34;Repair me if you can": membrane damage, response, and control from the viral perspective. Cells. 9 (9), 2042 (2020).
  3. Hung, Y. H., Chen, L. M., Yang, J. Y., Yang, W. Y. Spatiotemporally controlled induction of autophagy-mediated lysosome turnover. Nature Communications. 4, 2111 (2013).
  4. Sharma, S. K., et al. Photodynamic therapy for cancer and for infections: what is the difference. Israel Journal of Chemistry. 52 (8-9), 691-705 (2012).
  5. Kübler, A. C. Photodynamic therapy. Medical Laser Application. 20 (1), 37-45 (2005).
  6. De Rosa, F. S., Bentley, M. V. Photodynamic therapy of skin cancers: sensitizers, clinical studies and future directives. Pharmaceutical Research. 17 (12), 1447-1455 (2000).
  7. Hamblin, M. R. New photosensitizers for photodynamic therapy. Biochemical Journal. 473 (4), 347-364 (2016).
  8. Lavie, G., et al. A photodynamic pathway to apoptosis and necrosis induced by dimethyl tetrahydroxyhelianthrone and hypericin in leukaemic cells: possible relevance to photodynamic therapy. British Journal of Cancer. 79 (3-4), 423-432 (1999).
  9. Jay, D. G. Selective destruction of protein function by chromophore-assisted laser inactivation. Proceedings of the National Academy of Sciences. 85 (15), 5454-5458 (1988).
  10. Grate, D., Wilson, C. Laser-mediated, site-specific inactivation of RNA transcripts. Proceedings of the National Academy of Sciences. 96 (11), 6131-6136 (1999).
  11. Lin, J. Y., et al. Optogenetic inhibition of synaptic release with chromophore-assisted light inactivation (CALI). Neuron. 79 (2), 241-253 (2013).
  12. Hsieh, C. W., Yang, W. Y. Triggering mitophagy with photosensitizers. Methods in Molecular Biology. 1880, 611-619 (2019).
  13. Yang, J. Y., Yang, W. Y. Spatiotemporally controlled initiation of Parkin-mediated mitophagy within single cells. Autophagy. 7 (10), 1230-1238 (2011).
  14. Molinari, M., et al. Vacuoles induced by Helicobacter pylori toxin contain both late endosomal and lysosomal markers. Journal of Biological Chemistry. 272 (40), 25339-25344 (1997).
  15. Prince, L. R., et al. Subversion of a lysosomal pathway regulating neutrophil apoptosis by a major bacterial toxin, pyocyanin. Journal of Immunology. 180 (5), 3502-3511 (2008).
  16. Aits, S., et al. Sensitive detection of lysosomal membrane permeabilization by lysosomal galectin puncta assay. Autophagy. 11 (8), 1408-1424 (2015).
  17. Prasmickaite, L., Hogset, A., Berg, K. Evaluation of different photosensitizers for use in photochemical gene transfection. Photochemistry and Photobiology. 73 (4), 388-395 (2001).
  18. Berg, K., et al. Photochemical internalization: a novel technology for delivery of macromolecules into cytosol. 암 연구학. 59 (6), 1180-1183 (1999).
  19. Moan, J., Berg, K. The photodegradation of porphyrins in cells can be used to estimate the lifetime of singlet oxygen. Photochemistry and Photobiology. 53 (4), 549-553 (1991).
  20. Thurston, T. L., Wandel, M. P., von Muhlinen, N., Foeglein, A., Randow, F. Galectin 8 targets damaged vesicles for autophagy to defend cells against bacterial invasion. Nature. 482 (7385), 414-418 (2012).
  21. Repnik, U., et al. L-leucyl-L-leucine methyl ester does not release cysteine cathepsins to the cytosol but inactivates them in transiently permeabilized lysosomes. Journal of Cell Science. 130 (18), 3124-3140 (2017).
  22. Griffiths, G., Hoflack, B., Simons, K., Mellman, I., Kornfeld, S. The mannose 6-phosphate receptor and the biogenesis of lysosomes. Cell. 52 (3), 329-341 (1988).
  23. Jia, J., et al. Galectin-3 Coordinates a cellular system for lysosomal repair and removal. Developmental Cell. 52 (1), 69-87 (2020).
  24. Chu, Y. P., Hung, Y. H., Chang, H. Y., Yang, W. Y. Assays to monitor lysophagy. Methods in Enzymology. 588, 231-244 (2017).
  25. Nguyen, L., Madsen, S. J., Berg, K., Hirschberg, H. An improved in vitro photochemical internalization protocol for 3D spheroid cultures. Lasers in Medical Science. 36 (8), 1567-1571 (2021).
  26. Daugelaviciene, N., et al. Lysosome-targeted photodynamic treatment induces primary keratinocyte differentiation. Journal of Photochemistry and Photobiology. B, Biology. 218, 112183 (2021).
  27. Hong, M. H., et al. Intracellular galectins control cellular responses commensurate with cell surface carbohydrate composition. Glycobiology. 30 (1), 49-57 (2019).
check_url/kr/63962?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Hung, Y., Wang, H., Wang, J., Hsu, C., Chen, H. A Photodynamic Approach to Study Function of Intracellular Vesicle Rupture. J. Vis. Exp. (193), e63962, doi:10.3791/63962 (2023).

View Video