Summary

Facilitering af cerebral organoidkultur via lateral blød lysbelysning

Published: June 06, 2022
doi:

Summary

Cerebrale organoider giver hidtil usete muligheder for at studere organudvikling og human sygdomspatologi. Selvom der er opnået stor succes med cerebrale organoidkultursystemer, er der stadig operationelle vanskeligheder med at anvende denne teknologi. Den nuværende protokol beskriver en cerebral organoid procedure, der letter medium forandring og organoid overførsel.

Abstract

På nuværende tidspunkt er cerebral organoidkulturteknologi stadig kompliceret at betjene og vanskelig at anvende i stor skala. Det er nødvendigt at finde en enkel og praktisk løsning. Derfor foreslås en mere gennemførlig cerebral organoidprotokol i denne undersøgelse. For at løse de uundgåelige ulemper ved medium ændring og organoidoverførsel i den tidlige fase optimerer den nuværende forskning driftsteknologien ved at anvende ingeniørprincippet. En blød lyslampe blev vedtaget til sideværts at belyse embryoidlegemet (EB) prøver, så EB’erne kunne ses med det blotte øje gennem den forbedrede diffuse refleksionseffekt. Ved hjælp af princippet om sekundær strømning genereret ved rotation samles organoiderne mod midten af brønden, hvilket letter driften af medium ændring eller organoidoverførsel. Sammenlignet med den dispergerede celle sætter den embryoide krop sig hurtigere i pipetten. Ved hjælp af dette fænomen kan de fleste af de frie celler og døde cellefragmenter fjernes effektivt på en enkel måde, hvilket forhindrer EB’er i at pådrage sig skader fra centrifugering. Denne undersøgelse letter driften af cerebral organoidkultur og hjælper med at fremme anvendelsen af hjerneorganoider.

Introduction

Sammenlignet med todimensionale (2D) kultursystemer har tredimensionelle (3D) kultursystemer flere fordele, herunder ægte replikation og effektiv reproduktion af komplekse strukturer af visse organer1. Derfor er cerebrale organoider en af de vigtige hjælpemetoder til forskningsområderne for menneskelig hjerneudvikling og sygdom2, lægemiddelscreening og celleterapi.

Dyrkning af cerebrale organoider ved den roterende suspensionsmetode er befordrende for deres udvikling og modning3. Selvom cerebrale organoidkultursystemer har opnået stor succes, står de stadig over for kritiske udfordringer, der begrænser deres anvendelse. For eksempel involverer manuel dyrkning komplicerede manipulationstrin og introducerer hindringer for at opnå store applikationer. Derudover er der på hvert udviklingsstadium i kulturen af cerebrale organoider behov for ændringer i forskellige medier og cytokiner4. I det tidlige stadium har organoiderne eller EB’erne imidlertid små størrelser (ca. 200 μm til 300 μm) og er næsten visuelt utilgængelige uden passende apparater. Uundgåeligt skylles en vis mængde dyrebare organoidprøver væk, når mediet ændres. Mange teknikker er blevet udforsket for at overvinde dette i andre former for organoidkulturer, og nogle eksempler inkluderer nedsænkning af hele organoidchips i et kulturmedium i 3 dage uden intervention5; tilsætning af et friskt medium gennem dækslippen, efter at det gamle medium er absorberet ved hjælp af absorberende papir5; eller anvendelse af komplekse mikrofluidiske rørledninger til væskeudveksling 6,7,8. En anden hindring, der opstår i den tidlige fase af organoiddyrkning, er vanskeligheden ved at opnå direkte observationer med det blotte øje, hvilket kan forårsage dårlige operationer, der fører til organoidskade og tab under organoidoverførselstrinnene. Derfor er det nødvendigt at etablere en mere gennemførlig protokol, der letter medium forandring og organoidoverførsel for at generere organoider.

En tilsvarende optimeret drift baseret på tekniske principper foreslås for at overvinde disse problemer, hvilket betydeligt og bekvemt letter mange organoidprocedurer. I naturen, når solen skinner ind i et hus gennem et vindueshul, kan det blotte øje se støvet danse i lysstrålen. På grund af den diffuse refleksion af sollys på støv brydes noget lys ind i øjeæblet for at producere et visuelt billede. Inspireret af princippet om dette fænomen 9,10 lavede denne undersøgelse en blød lyslampe og oplyste EB’erne sideværts. Det blev konstateret, at EB’er kunne være visuelt klare uden at påvirke visningsomfanget. En sekundær strømning, der peger mod midten, genereres i væsken ved at dreje kulturpladen på grund af hvirvelstrømme11. Oprindeligt spredte EB’er akkumuleres i midten af pladen. Baseret på dette og det fænomen, at organoidernes sedimentationshastighed er hurtigere end cellernes, foreslås en nem driftsmetode til mediumændring og organoidoverførsel uden centrifugering. Organoiderne i kulturmediet kan effektivt adskilles fra frie celler og døde cellefragmenter gennem denne overførselsoperation.

Her foreslås en protokol, der er let at betjene, for at generere cerebrale organoider fra humane pluripotente stamceller. Driftsteknologien blev optimeret ved at anvende ingeniørprincippet, hvilket gjorde operationer i 3D-kultur så enkle og gennemførlige som dem i 2D-kultur. Den forbedrede væskeudvekslingsmetode og organoidoverførselsoperation er også nyttige til andre typer organoidkultur og design af automatiske kulturmaskiner.

Protocol

Protokollen blev gennemført efter Helsingfors-erklæringen. Godkendelse blev givet af den etiske komité for det tredje tilknyttede hospital i Guangzhou Medical University (medicinsk og etisk gennemgang [2021] nr. 022). Før eksperimentet blev hvert medium fremstillet i henhold til Juergen A. Knoblichs formel12 (supplerende tabeller 1-4), eller der blev anvendt et kommercielt tilgængeligt cerebralt organoidsæt (se materialetabel). De iPSC’er, der anvendes i den…

Representative Results

Den foreliggende undersøgelse inducerede iPSC’er (figur 2B) i cerebrale organoider (figur 2C). De EB’er, der blev dyrket i den tidlige fase, udtrykte OCT4-markøren (figur 2A), som indikerede god pluripotens. I den senere fase udviklede EB’erne sig til modne cerebrale organoider (figur 2D). Forskningen dyrkede iPSC’er fra normale raske individer og SCA3-patienter til cerebrale organoider (<strong class…

Discussion

Cerebrale organoider åbner nye veje til medicinsk forskning. Mange nyttige anvendelser af denne teknologi er kun begyndt at blive udforsket28. Denne forskning viste, at transkriptomsekventeringsresultaterne af genetisk syge cerebrale organoider og normale cerebrale organoider kan afspejle forskellene mellem sygdom og sundhed. For eksempel er RNA-seq-dataanalyseresultaterne (figur 3B) i overensstemmelse med mange rapporterede undersøgelser af SCA3-sygdomme 29,30,31,3…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne undersøgelse blev støttet af Natural Science Foundation of Guangdong Province (Grant No. 2020A0505100062), Guangzhou City Science and Technology Key Topics Project (Grant No. 201904020025), National Natural Science Foundation of China (Grant Nos. 31872800, 32070582, 82101937) og Guangzhou City Postdoctoral Research Grant-projektet (til Bangzhu Chen).

Materials

0.2 μm Filter NEST Biotechnology, China 331001
1000 μL wide-bore pipette tip Thermo Fisher Scientific, USA 9405163
200 μL wide-bore pipette tip Thermo Fisher Scientific, USA 9405020
2-Mercaptoethanol Merck, Germany 8057400005
4% Paraformaldehyde Servicebio, China G1101
6-well low adhesion plate NEST Biotechnology, China 703011 It is used for EBs suspension cultures
Aaccute cell detachment solution STEMCELL Technologies, Canada 07920 It is used to digest iPSC into single cells.
AggreWell800 24-well STEMCELL Technologies, Canada 34811 Microporous culture plate for EBs preparation.
Anti-Adherence Rinsing Solution STEMCELL Technologies, Canada 07010 Rinsing solution for cultureware to prevent cell adhesion
B27-vit. A supplement Thermo Fisher Scientific, USA 12587010
bFGF Peprotech, USA GMP100-18B
BSA Beyotime Biotechnology, China ST025
Centrifuge Eppendorf, Germany 5810 R It can be used for centrifugation of various types of centrifuge tubes, reagent bottles and working plates.
Cover glass Shitai Laboratory Equipment, China 10212020C
DAPI Beyotime Biotechnology, China C1002 Used for nuclear staining. After DAPI was combined with double stranded DNA, the maximum excitation wavelength was 364nm and the maximum emission wavelength was 454nm.
DMEM-F12 Thermo Fisher Scientific, USA 11330032
ES-quality FBS Thermo Fisher Scientific, USA 10270106
Ficoll Paque General Electric Company, USA 17-5442-02 Isolate the peripheral blood mononuclear cells according to Ficoll-Paque method.
Gelatin Sangon Bioteach, China A609764
Glutamax supplement Thermo Fisher Scientific, USA 35050061
Glutamax supplement Thermo Fisher Scientific, USA 17504044
Goat anti-Chicken IgY  secondary antibody Abcam, UK ab150171 Goat anti-Chicken IgG. Conjugation: Alexa Fluor 647. Ex: 652 nm, Em: 668 nm. Use at 1:500 dilution.
Goat anti-Mouse IgG secondary antibody Abcam, UK ab150120 Goat anti-Mouse IgG. Conjugation: Alexa Fluor 594. Ex: 590 nm, Em: 617 nm. Use at 1:500 dilution.
Goat anti-Rabbit IgG secondary antibody Abcam, UK ab150077 Goat Anti-Rabbit IgG. Conjugation: Alexa Fluor 488. Ex: 495 nm, Em: 519 nm. Use at 1:500 dilution.
Heparin Merck, Germany H3149
Horizontal shaker Servicebio, China DS-H200 Relative centrifugal force (RCF) of 0.11808 x g is more appropriate, according to the manufacturer INFORS HT (Switzerland).
Insulin Merck, Germany I9278-5ML
KOSR Thermo Fisher Scientific, USA 10828028
Matrigel Corning, USA 354277 Matrigel will solidify in the environment higher than 4 °C, so it should be sub packed at low temperature.
MEM-NEAA Thermo Fisher Scientific, USA 11140050
mTeSR1 STEMCELL Technologies, Canada 85850 iPSC culture medium
N2 supplement Thermo Fisher Scientific, USA 17502048
Neurobasal Thermo Fisher Scientific, USA 21103049
OCT4 primary antibody Abcam, UK ab19857 Host: Rabbit. Dissolve with 500 μL PBS. Use at 1:200 dilution.
Pathological frozen slicer Leica, Germany Leica CM1860
PAX6 primary antibody Abcam, UK ab78545 Host: Mouse. Use at 1:100 dilution.
PBS STEMCELL Technologies, Canada 37350
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher Scientific, USA 15140122
PSC dissociation solution Beijing Saibei Biotechnology, China CA3001500 Enzyme free dissociation solution can be used for iPSC digestion and passage.
Sendai Reprogramming Kit Thermo Fisher Scientific, USA A16518 Establish iPSC according to the protocol of Sendai Reprogramming Kit.
Slide Glass Shitai Laboratory Equipment, China 188105W
Soft light lamp NUT NUT A simple self made device, refer to supplementary figure 2 for preparation.
STEMdiff Cerebral Organoid Kit STEMCELL Technologies, Canada 8570 Contain: 1. EB Formation Medium; 2. Induction Medium; 3. Expansion Medium; 4. Maturation Medium.
STEMdiff Cerebral Organoid Maturation Kit STEMCELL Technologies, Canada 8571 Maturation Medium
Sucrose Sangon Bioteach, China A502792
Triton X-100 Merck, Germany X100
TUJ1 primary antibody Abcam, UK ab41489 Host: Chicken. Use at 1:1000 dilution.
Vaseline Sangon Bioteach, China A510146
Y-27632 STEMCELL Technologies, Canada 72302 Prepare a 5 mM stock solution in PBS, resuspend 1 mg in 624 µL of PBS.
Weblink
Raw sequencing data Genome Sequence Archive (Genomics, Proteomics & Bioinformatics 2021) in National Genomics Data Center (Nucleic Acids Res 2022), China National Center for Bioinformation / Beijing Institute of Genomics, Chinese Academy of Sciences GSA-Human: HRA002430 https://ngdc.cncb.ac.cn/gsa-human/

References

  1. Jensen, C., Teng, Y. Is it time to start transitioning from 2D to 3D cell culture. Frontiers in Molecular Biosciences. 7 (33), (2020).
  2. Quadrato, G., et al. Cell diversity and network dynamics in photosensitive human brain organoids. Nature. 545 (7652), 48-53 (2017).
  3. Lancaster, M. A., et al. Cerebral organoids model human brain development and microcephaly. Nature. 501 (7467), 373-379 (2013).
  4. Qian, X., et al. et al.Brain-region-specific organoids using mini-bioreactors for modeling ZIKV exposure. Cell. 165 (5), 1238-1254 (2016).
  5. Hu, Y., et al. Lung cancer organoids analyzed on microwell arrays predict drug responses of patients within a week. Nature Communications. 12 (1), 2581 (2021).
  6. Jung, D. J., et al. A one-stop microfluidic-based lung cancer organoid culture platform for testing drug sensitivity. Lab on a Chip. 19 (17), 2854-2865 (2019).
  7. Jalili-Firoozinezhad, S., et al. A complex human gut microbiome cultured in an anaerobic intestine-on-a-chip. Nature Biomedical Engineering. 3 (7), 520-531 (2019).
  8. Gkatzis, K., Taghizadeh, S., Huh, D., Stainier, D. Use of three-dimensional organoids and lung-on-a-chip methods to study lung development, regeneration and disease. The European Respiratory Journal. 52 (5), 1800876 (2018).
  9. Ye, Y., Pui, D. Detection of nanoparticles suspended in a light scattering medium. Scientific Reports. 11 (1), 20268 (2021).
  10. Staven, V., Waaseth, M., Wang, S., Grønlie, I., Tho, I. Utilization of the tyndall effect for enhanced visual detection of particles in compatibility testing of intravenous fluids: Validity and reliability. PDA Journal of Pharmaceutical Science and Technology. 69 (2), 270-283 (2015).
  11. Fukuma, Y., Inui, T., Imashiro, C., Kurashina, Y., Takemura, K. Homogenization of initial cell distribution by secondary flow of medium improves cell culture efficiency. PloS One. 15 (7), 0235827 (2020).
  12. Lancaster, M. A., Knoblich, J. A. Generation of cerebral organoids from human pluripotent stem cells. Nature Protocols. 9 (10), 2329-2340 (2014).
  13. Ouyang, S., et al. CRISPR/Cas9-targeted deletion of polyglutamine in spinocerebellar ataxia type 3-derived induced pluripotent stem cells. Stem Cells and Development. 27 (11), 756-770 (2018).
  14. Xian, Y., et al. The safety and effectiveness of genetically corrected iPSCs derived from β-thalassaemia patients in nonmyeloablative β-thalassaemic mice. Stem Cell Research and Therapy. 11 (1), 288 (2020).
  15. Kanof, M. E., Smith, P. D., Zola, H. Isolation of whole mononuclear cells from peripheral blood and cord blood. Current Protocols in Immunology. , (2001).
  16. Knight, G. T., et al. Engineering induction of singular neural rosette emergence within hPSC-derived tissues. eLife. 7, 37549 (2018).
  17. Rieder, H. L., Smithwick, R. W. RPM or RCF. The American Review of Respiratory Disease. 132 (6), 1371 (1985).
  18. Dole, V. P., Cotzias, G. C. A nomogram for the calculation of relative centrifugal force. Science. 113 (2941), 552-553 (1951).
  19. Velasco, S., et al. Individual brain organoids reproducibly form cell diversity of the human cerebral cortex. Nature. 570 (7762), 523-527 (2019).
  20. Jacob, F., et al. Human pluripotent stem cell-derived neural cells and brain organoids reveal SARS-CoV-2 neurotropism predominates in choroid plexus epithelium. Cell Stem Cell. 27 (6), 937-950 (2020).
  21. Kathuria, A., et al. Transcriptomic landscape and functional characterization of induced pluripotent stem cell-derived cerebral organoids in schizophrenia. JAMA Psychiatry. 77 (7), 745-754 (2020).
  22. Paşca, A. M., et al. Functional cortical neurons and astrocytes from human pluripotent stem cells in 3D culture. Nature Methods. 12 (7), 671-678 (2015).
  23. Hu, B. Y., et al. Neural differentiation of human induced pluripotent stem cells follows developmental principles but with variable potency. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (9), 4335-4340 (2010).
  24. Tang, X. Y., et al. DSCAM/PAK1 pathway suppression reverses neurogenesis deficits in iPSC-derived cerebral organoids from patients with Down syndrome. The Journal of Clinical Investigation. 131 (12), 135763 (2021).
  25. Costa, M., Paulson, H. L. Toward understanding Machado-Joseph disease. Progress in Neurobiology. 97 (2), 239-257 (2012).
  26. Trapnell, C., et al. Transcript assembly and quantification by RNA-Seq reveals unannotated transcripts and isoform switching during cell differentiation. Nature Biotechnology. 28 (5), 511-515 (2010).
  27. Love, M. I., Huber, W., Anders, S. Moderated estimation of fold change and dispersion for RNA-seq data with DESeq2. Genome Biology. 15 (12), 550 (2014).
  28. Clevers, H. Modeling development and disease with organoids. Cell. 165 (7), 1586-1597 (2016).
  29. Klockgether, T., et al. Age related axonal neuropathy in spinocerebellar ataxia type 3/Machado-Joseph disease (SCA3/MJD). Journal of Neurology, Neurosurgery, and Psychiatry. 66 (2), 222-224 (1999).
  30. Khan, L. A., et al. Expanded polyglutamines impair synaptic transmission and ubiquitin-proteasome system in Caenorhabditis elegans. Journal of Neurochemistry. 98 (2), 576-587 (2006).
  31. Teixeira-Castro, A., et al. Serotonergic signalling suppresses ataxin 3 aggregation and neurotoxicity in animal models of Machado-Joseph disease. Brain: A Journal of Neurology. 138, 3221-3237 (2015).
  32. Joers, J. M., et al. Neurochemical abnormalities in premanifest and early spinocerebellar ataxias. Annals of Neurology. 83 (4), 816-829 (2018).
  33. Sivitilli, A., Ghiasi, P., Attisano, L. Production of phenotypically uniform human cerebral organoids from pluripotent stem cells. Bio-protocol. 11 (8), 3985 (2021).
  34. Sivitilli, A. A., et al. Robust production of uniform human cerebral organoids from pluripotent stem cells. Life Science Alliance. 3 (5), (2020).
  35. Camp, J. G., Treutlein, B. Human development: Advances in mini-brain technology. Nature. 545 (7652), 39-40 (2017).
  36. Giandomenico, S. L., Sutcliffe, M., Lancaster, M. A. Generation and long-term culture of advanced cerebral organoids for studying later stages of neural development. Nature Protocols. 16 (2), 579-602 (2021).
  37. Yoon, S. J., et al. Reliability of human cortical organoid generation. Nature Methods. 16 (1), 75-78 (2019).
  38. Lancaster, M. A., Knoblich, J. A. Organogenesis in a dish: Modeling development and disease using organoid technologies. Science. 345 (6194), 1247125 (2014).
  39. Driehuis, E., Kretzschmar, K., Clevers, H. Establishment of patient-derived cancer organoids for drug-screening applications. Nature Protocols. 15 (10), 3380-3409 (2020).
check_url/kr/63989?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chen, B., Lin, Q., Liu, N., Chen, D., Zhang, Y., Sun, X. Facilitating Cerebral Organoid Culture via Lateral Soft Light Illumination. J. Vis. Exp. (184), e63989, doi:10.3791/63989 (2022).

View Video