Summary

בידוד תאי שושלת מונוציטים-מקרופאגים מעצמות חולדות בשיטת הדבקות משנית

Published: July 13, 2022
doi:

Summary

כאן אנו מציגים פרוטוקול לבידוד של BMMs מחולדות SD, הנקרא שיטת ההדבקה המשנית.

Abstract

עם ירידה בצפיפות המינרלים בעצמות, העצמות נוטות יותר להישבר, ובכך משפיעות לרעה על איכות החיים של המטופל. הצמיחה וההתפתחות של העצמות מוסדרות בעיקר על ידי אוסטאובלסטים ואוסטאוקלסטים. מקובל לחשוב כי אוסטאוקלסטים מופקים מתאי מונוציטים-מקרופאגים של מח עצם (BMMs). BMMs ותאי גזע המטופויאטיים אחרים ממוקמים בחלל מח העצם. לכן, בידוד BMMs יציבים בודדים מאוכלוסיות תאים שונות והטרוגניות הוא אתגר עצום. כאן אנו מציגים פרוטוקול לבידוד של BMMs מחולדות SD, הנקרא שיטת ההדבקה המשנית. נאספו תאים דביקים בתרבית של 24-48 שעות בתרבית ראשונית. ניתוח ציטומטרי של זרימה הראה כי כ-37.94% מהתאים היו CD11b/c+ (אנטיגן פני השטח של מונוציטים-מקרופאג’). צביעת חומצה פוספטאז (TRAP) עמידה בפני טרטרט וניתוח כתמים מערביים הראו כי BMMs יכולים להבדיל לאוסטיאוקלסטים במבחנה. הממצאים הנ”ל הציעו כי תאי ההדבקה המשניים יכולים להיחשב כמודל תאי מתאים לחקר התמיינות אוסטאוקלסט.

Introduction

דווח כי תאי שושלת מונוציטים-מקרופאגים הקיימים במח העצם יכולים להתמיין למונוציטים בדם ומקרופאגיםשל רקמות 1,2. התאים הנ”ל, שיכולים להתמיין לאוסטיאוקלסטים כדי לאזן את צמיחת העצם והתפתחותה, משמשים בדרך כלל כמודל תאי להשראת אוסטאוקלסטים in vivo 3,4. מח עצם הוא רקמה מיוחדת המכילה מספר סוגים שונים של תאים, הכוללים אך אינם מוגבלים רק לתאי גזע מזנכימליים של מח עצם, תאי מונוציטים-מקרופאג’ של מח עצם (BMMs), תאי גזע המטופויאטיים, תאי אנדותל ותאי מערכת החיסון. למעשה, מספר מחקרים קודמים הציעו כי תאים דביקים שמיהרו לצאת מחל מח העצם של העצם הארוכה יכולים להתמיין לאוסטאובלסטים, אוסטאוקלסטים, כונדרוציטים או אדיפוציטים 5,6,7,8. למרות ששיטות בידוד ותרבית שונות שימשו ליצירת אוכלוסיות תאים הומוגניות שונות, עדיין ישנם אתגרים גדולים בבידוד ובגידול BMMs ממגוון סוגי תאים שונים.

מספר שיטות פותחו כדי לחלץ מקרופאגים חד-גרעיניים של מח עצם (BMSCs). עם זאת, רוב השיטות הללו מורכבות 9,10,11. לדוגמה, צנטריפוגת שיפוע צפיפות דורשת ערכה מיוחדת והפעולה גוזלת זמן ומסורבלת. שיטה זו מתאימה לבידוד של BMMs מדגימות דם בנפח גבוה, אך לא מדגימות מח עצם 9,12,13. בנוסף, חילוץ דגימות רקמה באמצעות עיכול קולגן הוא הליך מורכב וגוזל זמן; שיטה זו אינה מומלצת לבידוד של BMMs מדגימות מח עצם14,15. בנוסף, למרות שהפרדת זרימה יכולה לגרום לאוכלוסיות מונוציטים/מקרופאגים מטוהרות מאוד, היא דורשת גודלי מדגם גדולים מאוד ודרישות גבוהות של מכשירים וציוד10,16. בנוסף, שיטת העשרת החיידקים יקרה ביותר ואינה אפשרית במעבדה כללית17.

לכן, במחקר הנוכחי הוצעה שיטה נוחה, מהירה וזולה לבידוד מקרופאגים חד-גרעיניים ממח העצם. תאי מח עצם שנדבקו במשך נקודות זמן שונות שימשו לבידוד BMMs בשיטת הדבקה משנית. BMMs שחולצו בשיטה הנ”ל יכולים לגרום להיווצרות של אוסטאוקלסטים במבחנה, ובכך לספק מודל תאים פשוט ונוח למחקר עתידי של אוסטאופורוזיס במבחנה.

Protocol

כל הניסויים במחקר זה נערכו בהתאם להנחיות הניסויים בבעלי חיים של המרכז לחקר בעלי חיים במעבדה של האוניברסיטה הרפואית הסינית בג’ה-ג’יאנג (מספר אישור: IACUC-20181029-11). 1. מיצוי תאים שים את חולדות ספראג-דאולי (חולדות SD, בנות 1-10 ימים, זכר או נקבה) בכלובי המתת חסד מלאים ב- CO…

Representative Results

אוכלוסיית התאים החסידיים המשניים הייתה יציבה ואחידה. עם התפשטות התאים המתמשכת, רוב התאים נעשו גדולים יותר, בעלי צורה לא סדירה וגדלו לדיסק דבק רדיאלי (איור 2C,D). ציטומטריית זרימה הראתה שאחוז התאים המבטאים CD11b/c, סמן מולקולרי על פני השטח של תאי שושלת ?…

Discussion

אוסטאוקלסטים הם אחד מסוגי התאים המשמעותיים ביותר המעורבים בהתרחשות ובהתפתחות של מחלות עצם, כמו גם אחד האובייקטים העיקריים של מחקר מחלות עצם20. מונוציטים/מקרופאגים יכולים להבדיל לאוסטיאוקלסטים. מאחר שמקרופאגים מונו-גרעיניים (תאי RAW264.7) יקרים מדי לרכישה ומופעלים בקלות במהלך תר…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי הקרן למדעי הטבע של מחוז ג’ג’יאנג (מענק מס’ LY19H060001) ופרויקט תוכנית המדע והטכנולוגיה של הרפואה הסינית המסורתית בג’ה-ג’יאנג (מס’ 2022ZB093).

Materials

35 mm2 cell climbing slices NEST Biotechnology 80102
Anti-cathepsin K Abcam ab19027 1:1,000
Anti-CD11 isotype control Abcam ab172730 1 μg/test,1.675 mg/Ml
Anti-CD11b/c Absin abs124232  1μg/test, 1 mg/mL
Anti-TRAP Abcam ab191406 1:1,000
Anti-β-actin Beyotime  AF5003 1:1,000
Cell climbing slices NEST Biotechnology 80102
Cell culture dish corning 430167
Cell culture flask corning 430168
Dulbecco's modified eagle medium (DMEM) Gibco C11995500BT
Fetal bovine serum (FBS) Gibco 10099141C
Goat anti-rabbit IgG Abcam ab150077 for IF, 1:2,000
goat anti-rabbit IgG Abcam ab6721 for WB, 1:2,000
M-CSF Pepro tech 400-28
PBS Biosharp BL302A
RANKL Pepro tech 400-30
SD rat Shanghai SLAC Laboratory Animal Co, Ltd 1-10 days old
SDS-PAGE gel preparation kit Solarbio P1200
TRAP/ALP Staining Kit Wako 294-67001
Trypsin-EDTA solution Biosharp BL512A
Wright-Giemsa solution Keygen Biotech KGA225-1

References

  1. Jakubzick, C. V., Randolph, G. J., Henson, P. M. Monocyte differentiation and antigen-presenting functions. Nature Reviews. Immunology. 17 (6), 349-362 (2017).
  2. Locati, M., Curtale, G., Mantovani, A. Diversity, mechanisms, and significance of macrophage plasticity. Annual Review of Pathology. 15 (1), 123-147 (2020).
  3. Boyle, W. J., Simonet, W. S., Lacey, D. L. Osteoclast differentiation and activation. Nature. 423 (6937), 337-342 (2003).
  4. Ono, T., Nakashima, T. Recent advances in osteoclast biology. Histochemistry and Cell Biology. 149 (4), 325-341 (2018).
  5. Zhou, X., et al. Wnt/ß-catenin-mediated p53 suppression is indispensable for osteogenesis of mesenchymal progenitor cells. Cell Death & Disease. 12 (6), 521-534 (2021).
  6. Yu, Q., Zhao, B., He, Q., Zhang, Y., Peng, X. B. microRNA-206 is required for osteoarthritis development through its effect on apoptosis and autophagy of articular chondrocytes via modulating the phosphoinositide 3-kinase/protein kinase B-mTOR pathway by targeting insulin-like growth factor-1. Journal of Cellular Biochemistry. 120 (4), 5287-5303 (2019).
  7. Li, Z., MacDougald, O. A. Preclinical models for investigating how bone marrow adipocytes influence bone and hematopoietic cellularity. Best Practice & Research. Clinical Endocrinology & Metabolism. 35 (4), 101547-101560 (2021).
  8. Horowitz, M. C., et al. marrow adipocytes. Adipocyte. 6 (3), 193-204 (2017).
  9. Maridas, D. E., Rendina-Ruedy, E., Le, P. T., Rosen, C. J. Isolation, culture, and differentiation of bone marrow stromal cells and osteoclast progenitors frommice. Journal of Visualized Experiments. (131), e56750 (2018).
  10. Schyns, J., et al. Non-classical tissue monocytes and two functionally distinct populations of interstitial macrophages populate the mouse lung. Nature Communications. 10 (1), 3964-3980 (2019).
  11. Atif, S. M., Gibbings, S. L., Jakubzick, C. V. Isolation and identification of interstitial macrophages from the lungs using different digestion enzymes and staining strategies. Methods in Molecular Biology. 1784, 69-76 (2018).
  12. Scheven, B. A., Milne, J. S., Robins, S. P. A sequential culture approach to study osteoclast differentiation from nonadherent porcine bone marrow cells. In Vitro Cellular & Developmental Biology. Animal. 34 (7), 568-577 (1998).
  13. Bradley, E. W., Oursler, M. J. Osteoclast culture and resorption assays. Methods in Molecular Biology. , 19-35 (2008).
  14. Yu, Y. R., et al. Flow cytometric analysis of myeloid cells in human blood, bronchoalveolar lavage, and lung tissues. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 54 (1), 13-24 (2016).
  15. Gibbings, S. L., Jakubzick, C. V. A consistent method to identify and isolate mononuclear phagocytes from human lung and lymph nodes. Methods in Molecular Biology. 1799, 381-395 (2018).
  16. Jacquin, C., Gran, D. E., Lee, S. K., Lorenzo, J. A., Aguila, H. L. Identification of multiple osteoclast precursor populations in murine bone marrow. Journal of Bone and Mineral Research. 21 (1), 67-77 (2006).
  17. Gibbings, S. L., et al. Three unique interstitial macrophages in the murine lung at steady state. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 57 (1), 66-76 (2017).
  18. Higashi, S. L., et al. Ultra-high-speed western blot using immunoreaction enhancing technology. Journal of Visualized Experiments. (163), e61657 (2020).
  19. Gallagher, S., Chakavarti, D. Immunoblot analysis. Journal of Visualized Experiments. 20 (16), 759 (2008).
  20. Yin, Z., et al. Glycyrrhizic acid suppresses osteoclast differentiation and postmenopausal osteoporosis by modulating the NF-κB, ERK, and JNK signaling pathways. European Journal of Pharmocology. 859, 172550 (2019).
  21. Liu, F., et al. LRRc17 controls BMSC senescence via mitophagy and inhibits the therapeutic effect of BMSCs on ovariectomy-induced bone loss. Redox Biology. , (2021).
  22. Jin, X., et al. Thioacetamide promotes osteoclast transformation of bone marrow macrophages by influencing PI3K/AKT pathways. Journal of Orthopedic Surgery and Research. 17 (1), 53-63 (2022).
check_url/kr/64053?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Jin, X., Li, Y., Chen, X., Chen, J., Xu, J. Isolation of Monocyte-Macrophage Lineage Cells from Rat Bones by Secondary Adherence Method. J. Vis. Exp. (185), e64053, doi:10.3791/64053 (2022).

View Video