Summary

Storskalig gravitaxanalys av Caenorhabditis Dauer larver

Published: May 31, 2022
doi:

Summary

Detta protokoll beskriver metoder för att genomföra en storskalig gravitaxisanalys med Caenorhabditis dauer larver. Detta protokoll möjliggör bättre detektion av gravitaxis beteende jämfört med en plattbaserad analys.

Abstract

Gravitationssensation är en viktig och relativt understuderad process. Att känna av gravitationen gör det möjligt för djur att navigera i sin omgivning och underlättar rörelse. Dessutom är tyngdkraftskänslan, som uppträder i däggdjurets inre öra, nära besläktad med hörseln – så att förstå denna process har konsekvenser för hörsel och vestibulär forskning. Gravitaxisanalyser finns för vissa modellorganismer, inklusive Drosophila. Enstaka maskar har tidigare analyserats för sin orienteringspreferens när de bosätter sig i lösning. En tillförlitlig och robust analys för Caenorhabditis gravitaxis har dock inte beskrivits. Det nuvarande protokollet beskriver ett förfarande för att utföra gravitaxisanalyser som kan användas för att testa hundratals Caenorhabditis dauers åt gången. Denna storskaliga, långdistansanalys möjliggör detaljerad datainsamling och avslöjar fenotyper som kan missas på en standardplattbaserad analys. Dauer-rörelse längs den vertikala axeln jämförs med horisontella kontroller för att säkerställa att riktningsförspänning beror på tyngdkraften. Gravitaktisk preferens kan sedan jämföras mellan stammar eller experimentella förhållanden. Denna metod kan bestämma molekylära, cellulära och miljömässiga krav för gravitaxis i maskar.

Introduction

Att känna av jordens gravitationskraft är avgörande för många organismers orientering, rörelse, koordination och balans. De molekylära mekanismerna och neurokretsarna för gravitationssensation är emellertid dåligt förstådda jämfört med andra sinnen. Hos djur interagerar gravitationskänslan med och kan konkurreras ut av andra stimuli för att påverka beteendet. Visuella ledtrådar, proprioceptiv feedback och vestibulär information kan integreras för att skapa en känsla av kroppsmedvetenhet i förhållande till ett djurs omgivning 1,2. Omvänt kan gravitaktisk preferens ändras i närvaro av andra stimuli 3,4,5. Därför är gravitaktiskt beteende idealiskt för att studera gravitationskänsla och förstå nervsystemets komplexa sensoriska integration och beslutsfattande.

C. elegans är en särskilt användbar modellorganism för att studera gravitaxis på grund av dess polyfeniska livscykel. När de utsätts för stressfaktorer under utveckling, inklusive värme, överbeläggning eller brist på mat, utvecklas C. elegans larver till dauers, som är mycket stressresistenta6. Som dauers utför maskar karakteristiska beteenden, såsom nictation, där maskar “står” på sina svansar och viftar med huvudet, vilket kan underlätta spridning till bättre livsmiljöer7. Gravitaxisanalyser av C. elegans och C. japonica tyder på att dauerlarver negativt gravitax, och att detta beteende lättare observeras hos dauers än hos vuxna 8,9. Testning av gravitaxis i andra Caenorhabditis-stammar kan avslöja naturlig variation i gravitaktiskt beteende.

Mekanismer för gravitationskänsla har karakteriserats i Euglena, Drosophila, Ciona och olika andra arter med hjälp av gravitaxanalys 3,10,11. Samtidigt gav gravitaxisstudier i Caenorhabditis initialt blandade resultat. En studie av C. elegans orienteringspreferens fann att maskar orienterar med huvudet nedåt i lösning, vilket tyder på positiv gravitaktisk preferens12. Under tiden, även om C. japonica dauers tidigt identifierades som negativt gravitaktiska8, har detta beteende först nyligen beskrivits i C. elegans9. Flera utmaningar uppstår vid utvecklingen av en representativ gravitaxisanalys i maskar. Caenorhabditis stammar upprätthålls på agarplattor; Av denna anledning använder beteendeanalyser vanligtvis agarplattor som en del av deras experimentella design13,14,15. Den tidigaste rapporterade gravitaxisanalysen i Caenorhabditis utfördes genom att en platta stod på sidan i 90 ° vinkel mot den horisontella styrplattan8. Gravitaxis beteende är dock inte alltid robust under dessa förhållanden. Medan vuxna maskar kan analyseras för orienteringspreferens i lösning12, kan denna riktningspreferens också vara kontextberoende, vilket leder till olika beteenden om maskarna kryper snarare än simmar. Dessutom är C. elegans känslig för andra stimuli, inklusive ljus och elektromagnetiska fält16,17, som stör deras svar på tyngdkraften9. Därför är en uppdaterad gravitaxanalys som skyddar mot andra miljövariabler viktig för att dissekera mekanismerna i denna sensoriska process.

I detta protokoll beskrivs en analys för att observera Caenorhabditis gravitaxis. Upplägget för denna studie bygger delvis på en metod som utvecklats för att studera neuromuskulär integritet18,19. Dauerlarver odlas och isoleras med hjälp av standardprocedurer20. De injiceras sedan i kamrar gjorda av två 5 ml serologiska pipetter fyllda med agar. Dessa kamrar kan orienteras vertikalt eller horisontellt och placeras i en mörk Faraday-bur i 12-24 timmar för att skydda mot ljus och elektromagnetiska fält. Placeringen av varje mask i kamrarna registreras och jämförs med de vertikala taxibilarna för en referensstam som C. elegans N2.

Protocol

De stammar som används i denna studie är C. elegans (N2) och C. briggsae (AF16) (se materialförteckning). En blandad könspopulation av dauers användes för varje analys. 1. Förberedelse av kammaren Arbeta i en dragskåp. Ställ in arbetsytan med en Bunsen-brännare, 1-2 rakblad, tång, pincett och en plastskäryta (se Materialförteckning). För varje kammare, samla två 5 ml serologiska pipetter. Ta…

Representative Results

Jämförelse av gravitaxis mellan arterEfter det ovan beskrivna förfarandet kan C. briggsae dauer gravitaxis jämföras med C. elegans gravitaxis och horisontella kontroller. Den vertikala fördelningen (rödbrun) av C. briggsae dauers är snedställd mot kamrarnas toppar, med en stor andel maskar som når +7 (figur 2A). Kontrasterad med horisontella kontroller (aqua), där dauers fördelas i en ungefär klockformad kurva runt mitten av kamrar…

Discussion

Jämförelse med tidigare metoder
Till skillnad från kemotaxis kan gravitaxis i Caenorhabditis inte observeras på ett tillförlitligt sätt med hjälp av en traditionell experimentell design av agarplattor. En vanlig petriskål är 150 mm i diameter, vilket resulterar i endast 75 mm tillgängliga i båda riktningarna för dauers för att visa gravitaxispreferens. Även om C. elegans orienteringspreferens kan analyseras i lösning12, är denna metod låg geno…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna forskning stöddes av forskningsbidrag från National Institutes of Health till JHR (#R01 5R01HD081266 och #R01GM141493). Vissa stammar tillhandahölls av CGC, som finansieras av NIH Office of Research Infrastructure Programs (P40 OD010440). Vi vill tacka Pradeep Joshi (UCSB) för hans redaktionella input. Statistiskt samråd från UCSB DATALAB.

Materials

1% Sodium Dodecyl Sulfate solution From stock 10% (w/v) SDS in DI water
15 mL Centrifuge tubes Falcon 14-959-53A
3 mm Hex key Other similar sized metal tools may be used
4% Agar in Normal Growth Medium (NGM) – 1 L Prior to autoclaving: 3 g NaCl, 40 g Agar, 2.5 g Peptone, 2 g Dextrose, 10 mL Uracil (2 mg/mL), 500 μL Cholesterol (10 mg/mL), 1 mL CaCl2, 962 mL DI water; After autoclaving: 24.5 mL Phosphate Buffer, 1 mL 1 MgSO4 (1 M), 1 mL Streptomycin (200 mg/mL)
5 mL Serological pipettes Fisherbrand S68228C Polystyrene, not borosilicate glass
60% Cold sucrose solution 60% sucrose (w/v) in DI water; sterilize by filtration (0.45 μm filter). Keep at 4 °C
AF16 C. briggsae or other experimental strain Available from the CGC (Caenorhabditis Genetics Center)
Bunsen burner
Cling-wrap Fisherbrand 22-305654
Clinical centrifuge
Disposable razor blades Fisherbrand 12-640
Faraday cage Can be constructed using cardboard and aluminum foil; 30" L x 6" W x 26" H or larger
Ink markers Sharpie or other brand for marking on plastic
Labeling tape Carolina 215620
M9 buffer 22 mM KH2PO4, 42 mM Na2HPO4, 86 mM NaCl
N2 C. elegans strain Available from the CGC (Caenorhabditis Genetics Center)
NGM plates with OP50 1.7% (w/v) agar in NGM (see description: 4% agar in NGM). Seed with OP50
Paraffin film Bemis 13-374-10
Plastic cutting board
Pliers
Rotating vertical mixer BTLab SYSTEMS BT913 With 22 x 15 mL tube bar
Serological pipettor Corning 357469
Stereo Microscope Laxco S2103LS100
Tally counter ULINE H-7350
Thick NGM/agar plate media – 1 L See 4% Agar in NGM recipe; replace 40 g Agar with 20 g Agar
Tweezers

References

  1. Peterka, R. J. Sensory integration for human balance control. Handbook of Clinical Neurology. 159, 27-42 (2018).
  2. Lacquaniti, F., et al. Multisensory Integration and Internal Models for Sensing Gravity Effects in Primates. BioMed Research International. 2014, 61584 (2014).
  3. Bostwick, M., et al. Antagonistic inhibitory circuits integrate visual and gravitactic behaviors. Current Biology. 30 (4), 600-609 (2020).
  4. Ntefidou, M., Richter, P., Streb, C., Lebert, M., Hader, D. -. P. High light exposure leads to a sign change in gravitaxis of the flagellate Euglena gracilis. Journal of Gravitational Physiology. 9 (1), 277-278 (2002).
  5. Fedele, G., Green, E. W., Rosato, E., Kyriacou, C. P. An electromagnetic field disrupts negative geotaxis in Drosophila via a CRY-dependent pathway. Nature Communications. 5, 4391 (2014).
  6. Frézal, L., Félix, M. -. A. C. elegans outside the Petri dish. eLife. 4, 05849 (2015).
  7. Lee, H., et al. a dispersal behavior of the nematode Caenorhabditis elegans, is regulated by IL2 neurons. Nature Neuroscience. 15 (1), 107-112 (2012).
  8. Okumura, E., Tanaka, R., Yoshiga, T. Negative gravitactic behavior of Caenorhabditis japonica dauer larvae. The Journal of Experimental Biology. 216, 1470-1474 (2013).
  9. Ackley, C., et al. Parallel mechanosensory systems are required for negative gravitaxis in C. elegans. bioRxiv. , (2022).
  10. Häder, D. -. P., Hemmersbach, R., Schwartzbach, S. D., Shigeoka, S. Gravitaxis in Euglena. Euglena: Biochemistry, Cell and Molecular Biology. , 237-266 (2017).
  11. Sun, Y., et al. TRPA channels distinguish gravity sensing from hearing in Johnston’s organ. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (32), 13606-13611 (2009).
  12. Chen, W. -. L., Ko, H., Chuang, H. -. S., Raizen, D. M., Bau, H. H. Caenorhabditis elegans exhibits positive gravitaxis. BMC Biology. 19 (1), 186 (2021).
  13. Ward, S. Chemotaxis by the nematode Caenorhabditis elegans: Identification of attractants and analysis of the response by use of mutants. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 70 (3), 817-821 (1973).
  14. Bargmann, C. I., Hartwieg, E., Horvitz, H. R. Odorant-selective genes and neurons mediate olfaction in C. elegans. Cell. 74 (3), 515-527 (1993).
  15. Margie, O., Palmer, C., Chin-Sang, I. C. elegans chemotaxis assay. Journal of Visualized Experiments. (74), e50069 (2013).
  16. Ward, A., Liu, J., Feng, Z., Xu, X. Z. S. Light-sensitive neurons and channels mediate phototaxis in C. elegans. Nature Neuroscience. 11 (8), 916-922 (2008).
  17. Vidal-Gadea, A., et al. Magnetosensitive neurons mediate geomagnetic orientation in Caenorhabditis elegans. eLife. 4, 07493 (2015).
  18. Bainbridge, C., Schuler, A., Vidal-Gadea, A. G. Method for the assessment of neuromuscular integrity and burrowing choice in vermiform animals. Journal of Neuroscience Methods. 264, 40-46 (2016).
  19. Beron, C., et al. The burrowing behavior of the nematode Caenorhabditis elegans: a new assay for the study of neuromuscular disorders. Genes, Brain and Behavior. 14 (4), 357-368 (2015).
  20. Ow, M. C., Hall, S. E. A Method for obtaining large populations of synchronized Caenorhabditis elegans dauer larvae. Methods in Molecular Biology. , 209-219 (2015).
  21. Chaudhuri, J., Parihar, M., Pires-daSilva, A. An introduction to worm lab: from culturing worms to mutagenesis. Journal of Visualized Experiments. (47), e2293 (2011).
  22. Karp, X. Working with dauer larvae. WormBook. , 1-19 (2018).
  23. Dinno, A. Nonparametric pairwise multiple comparisons in independent groups using Dunn’s test. The Stata Journal. 15 (1), 292-300 (2015).
  24. Gray, J. M., et al. Oxygen sensation and social feeding mediated by a C. elegans guanylate cyclase homologue. Nature. 430 (6997), 317-322 (2004).
  25. Goodman, M. B., Sengupta, P. How Caenorhabditis elegans senses mechanical stress, temperature, and other physical stimuli. 유전학. 212 (1), 25-51 (2019).
  26. Iliff, A. J., Xu, X. Z. S. C. elegans: a sensible model for sensory biology. Journal of Neurogenetics. 34 (3-4), 347-350 (2020).
  27. Russell, J., Vidal-Gadea, A. G., Makay, A., Lanam, C., Pierce-Shimomura, J. T. Humidity sensation requires both mechanosensory and thermosensory pathways in Caenorhabditis elegans. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (22), 8269-8274 (2014).
  28. Iliff, A. J., et al. The nematode C. elegans senses airborne sound. Neuron. 109 (22), 3633-3646 (2021).
  29. Metaxakis, A., Petratou, D., Tavernarakis, N. Multimodal sensory processing in Caenorhabditis elegans. Open Biology. 8 (6), 180049 (2018).
  30. Wicks, S., Rankin, C. Integration of mechanosensory stimuli in Caenorhabditis elegans. The Journal of Neuroscience. 15, 2434-2444 (1995).
  31. Chen, X., Chalfie, M. Modulation of C. elegans touch sensitivity is integrated at multiple levels. The Journal of Neuroscience. 34 (19), 6522-6536 (2014).
  32. Stockand, J. D., Eaton, B. A. Stimulus discrimination by the polymodal sensory neuron. Commun. Integrative Biology. 6 (2), 23469 (2013).
  33. Mackowetzky, K., Yoon, K. H., Mackowetzky, E. J., Waskiewicz, A. J. Development and evolution of the vestibular apparatuses of the inner ear. Journal of Anatomy. 239 (4), 801-828 (2021).
  34. Eppsteiner, R. W., Smith, R. J. H. Genetic disorders of the vestibular system. Current Opinion in Otolaryngology & Head and Neck Surgery. 19 (5), 397-402 (2011).
  35. Roman-Naranjo, P., Gallego-Martinez, A., Lopez Escamez, J. A. Genetics of vestibular syndromes. Current Opinion in Neurology. 31 (1), 105-110 (2018).
  36. Mei, C., et al. Genetics and the individualized therapy of vestibular disorders. Frontiers in Neurology. 12, 633207 (2021).
  37. Weghorst, F. P., Cramer, K. S. The evolution of hearing and balance. eLife. 8, 44567 (2019).
check_url/kr/64062?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ackley, C., Washiashi, L., Krishnamurthy, R., Rothman, J. H. Large-Scale Gravitaxis Assay of Caenorhabditis Dauer Larvae. J. Vis. Exp. (183), e64062, doi:10.3791/64062 (2022).

View Video