JoVE Journal > Medicine
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Results
Discussion
Disclosures
Acknowledgements
Materials
References
자동 번역
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
의학

التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني القلبي عالي الدقة / التصوير المقطعي المحوسب للحيوانات الصغيرة

Published: December 16, 2022
doi:
10.3791/64066
, , , , , ,
1CNR Institute of Clinical Physiology, 2Sant’Anna School of Advanced Studies, 3Fondazione Regione Toscana/CNR “G. Monasterio”

Summary

هنا ، نقدم بروتوكول تصوير تجريبي لتحديد وظيفة القلب ومورفولوجيته باستخدام التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني عالي الدقة / التصوير المقطعي المحوسب للحيوانات الصغيرة. يتم النظر في كل من الفئران والجرذان ، ومناقشة المتطلبات المختلفة لعوامل تباين التصوير المقطعي المحوسب للنوعين.

Abstract

يعد التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني (PET) والتصوير المقطعي المحوسب (CT) من بين أكثر تقنيات التصوير التشخيصي استخداما ، وكلاهما يعمل في فهم وظيفة القلب والتمثيل الغذائي. في الأبحاث قبل السريرية ، يتم استخدام ماسحات ضوئية مخصصة ذات حساسية عالية ودقة مكانية زمانية عالية ، مصممة للتعامل مع المتطلبات التكنولوجية الصعبة التي يفرضها حجم القلب الصغير ومعدلات ضربات القلب المرتفعة جدا للفئران والجرذان. في هذه الورقة ، تم وصف بروتوكول تصوير القلب ثنائي النمط PET / CT لنماذج الفئران التجريبية و / أو الفئران لأمراض القلب ، من إعداد الحيوانات والحصول على الصور وإعادة بنائها إلى معالجة الصور والتصور.

على وجه الخصوص ، يسمح فحص 18 F-labeled fluorodeoxyglucose ([18F] FDG) – PET بقياس وتصور استقلاب الجلوكوز في الأجزاء المختلفة من البطين الأيسر (LV). الخرائط القطبية هي أدوات ملائمة لعرض هذه المعلومات. يتكون جزء التصوير المقطعي المحوسب من إعادة بناء ثلاثية الأبعاد للقلب بأكمله (4D-CT) باستخدام بوابات بأثر رجعي بدون خيوط تخطيط القلب الكهربائي (ECG) ، مما يسمح بالتقييم المورفولوجي الوظيفي ل LV والقياس الكمي اللاحق لأهم معلمات وظيفة القلب ، مثل الكسر القذفي (EF) وحجم السكتة الدماغية (SV). باستخدام ماسح ضوئي مدمج PET / CT ، يمكن تنفيذ هذا البروتوكول ضمن نفس تحريض التخدير دون الحاجة إلى إعادة وضع الحيوان بين الماسحات الضوئية المختلفة. وبالتالي ، يمكن اعتبار التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني / التصوير المقطعي المحوسب كأداة شاملة للتقييم المورفولوجي الوظيفي والتمثيل الغذائي للقلب في العديد من النماذج الحيوانية الصغيرة لأمراض القلب.

Introduction

نماذج الحيوانات الصغيرة مهمة للغاية لتعزيز فهم أمراض القلب والأوعية الدموية 1,2. أحدثت أدوات التصوير التشخيصي غير الغازية ثورة في الطريقة التي ننظر بها إلى وظيفة القلب في العقود الماضية ، سواء في الإعدادات السريرية أو قبل السريرية. فيما يتعلق بنماذج الحيوانات الصغيرة لأمراض القلب ، تم تطوير أدوات تصوير محددة بدقة زمانية مكانية عالية جدا. وبالتالي ، يمكن لهذه الأدوات أن تتطابق مع الحاجة إلى تحديد كمي دقيق لمعلمات عضلة القلب الأيضية والحركية ذات الصلة على قلوب الفئران والجرذان الصغيرة جدا وسريعة الحركة في نماذج مرضية محددة ، مثل قصور القلب (HF)3 أو احتشاء عضلة القلب (MI)4. وهناك عدة طرائق متاحة لهذا الغرض، ولكل منها نقاط قوتها وضعفها. التصوير بالموجات فوق الصوتية (الولايات المتحدة) هو الطريقة الأكثر استخداما نظرا لمرونته الكبيرة ودقته الزمنية العالية جدا وتكلفته المنخفضة نسبيا. ازداد اعتماد تصوير القلب الأمريكي في الحيوانات الصغيرة بشكل كبير منذ ظهور الأنظمة التي تستخدم مجساتذات تردد فائق 5,6 ، تتميز بدقة مكانية أقل من 50 ميكرومتر.

من بين العيوب الرئيسية للولايات المتحدة لتصوير القلب 3D بالكامل هي الحاجة إلى مسح خطي على طول محور القلب عن طريق تركيب المسبار على مرحلة ترجمة آلية لإنشاء مجموعة كاملة من الصور الديناميكية B-mode للقلب كله7. في النهاية ، يؤدي هذا الإجراء (بعد التسجيل المكاني والزماني الدقيق للصور التي تم الحصول عليها في كل موضع مسبار) إلى صورة 4D بدقة مكانية مختلفة بين الاتجاهات داخل الطائرة وخارجها. تحدث نفس مشكلة الدقة المكانية غير المنتظمة في التصوير بالرنين المغناطيسي للقلب (CMR) ،8 والذي لا يزال يمثل المعيار الذهبي في التصوير الوظيفي للقلب. يمكن الحصول على التصوير الحقيقي 3D الخواص بدلا من ذلك باستخدام كل من التصوير المقطعي المحوسب (CT) والتصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني (PET)9. يوفر التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني أداة حساسة للغاية من حيث إشارة الصورة لكل كمية من المسبار المحقون (في نطاق النانومولية) ، على الرغم من أنه يعاني من انخفاض الدقة المكانية مقارنة بالتصوير المقطعي المحوسب أو الرنين المغناطيسي أو الولايات المتحدة. الميزة الرئيسية ل PET هي قدرته على عرض الآليات الخلوية والجزيئية الكامنة وراء الفيزيولوجيا المرضية للجهاز. على سبيل المثال ، يسمح فحص التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني بعد حقن [18F] FDG بإعادة بناء خريطة 3D لاستقلاب الجلوكوز في الجسم. من خلال الجمع بين هذا مع الحصول على البيانات الديناميكية (أي التي تم حلها بمرور الوقت) ، يمكن استخدام النمذجة الحركية للتتبع لحساب الخرائط البارامترية لمعدلات الأيض لامتصاص الجلوكوز (MRGlu) ، والتي ستوفر معلومات مهمة حول صلاحية عضلة القلب10.

يتطلب التصوير المقطعي المحوسب كميات كبيرة من عوامل التباين الخارجية (CA) بتركيزات عالية (تصل إلى 400 مجم من اليود لكل مل) لتوفير تعزيز قابل للقياس لمكونات الأنسجة ذات الصلة (على سبيل المثال ، الدم مقابل العضلات) ، ولكنه يتفوق في الدقة المكانية والزمانية ، خاصة عند استخدام أحدث أجهزة التصوير المقطعي المحوسب الدقيقة المصممة لتصوير الحيوانات الصغيرة. 11 نموذج المرض النموذجي الذي يمكن فيه تطبيق التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني / التصوير المقطعي المحوسب للقلب هو التقييم التجريبي لاحتشاء عضلة القلب وفشل القلب والاستجابة ذات الصلة للعلاج. من الطرق الشائعة لإحداث MI في الحيوانات الصغيرة عن طريق الربط الجراحي للشريان التاجي الأمامي الأيسر النازل (LAD)12,13 ثم تقييم طوليا لتطور المرض وإعادة تشكيل القلب في الأيام اللاحقة4. ومع ذلك ، فإن التقييم المورفولوجي الوظيفي الكمي للقلب في الحيوانات الصغيرة ينطبق إلى حد كبير أيضا على نماذج الأمراض الأخرى ، مثل تقييم تأثير الشيخوخة على وظيفة القلب14 أو التعبير المتغير للمستقبلات في نماذج السمنة15. لا يقتصر بروتوكول التصوير المقدم على أي نموذج مرض معين ، وبالتالي ، يمكن أن يكون ذا أهمية واسعة في العديد من سياقات البحث قبل السريري مع القوارض الصغيرة.

في هذه الورقة ، نقدم بروتوكولا تجريبيا من البداية إلى النهاية لتصوير القلب باستخدام PET / CT متكامل للحيوانات الصغيرة. على الرغم من أن البروتوكول المقدم مصمم لماسح ضوئي متكامل ثنائي النمط محدد ، إلا أنه يمكن إجراء أجزاء PET و CT من الإجراء الموصوف بشكل مستقل على ماسحات ضوئية منفصلة من جهات تصنيع مختلفة. في الماسح الضوئي PET / CT المستخدم ، يتم تنظيم تسلسل العمليات في سير عمل مبرمج مسبقا. الفروع الرئيسية لكل سير عمل هي واحد أو أكثر من بروتوكولات الاستحواذ. يمكن أن يحتوي كل بروتوكول اكتساب على فرع واحد أو أكثر لبروتوكولات معالجة مسبقة محددة، وفي المقابل، يمكن أن يكون لكل بروتوكول معالجة مسبقة فرع واحد أو أكثر لبروتوكولات إعادة بناء محددة. يتم وصف كل من إعداد الحيوان على سرير التصوير وإعداد العوامل الخارجية التي سيتم حقنها أثناء إجراءات التصوير. بعد الانتهاء من إجراء الحصول على الصور ، يتم توفير أمثلة على إجراءات التحليل الكمي للصور بناء على أدوات البرامج المتاحة بشكل شائع. تم تصميم البروتوكول الرئيسي خصيصا لنماذج الماوس ؛ على الرغم من أن الفأر لا يزال أكثر الأنواع استخداما في هذا المجال ، إلا أننا نعرض أيضا تكيفا لبروتوكول تصوير الفئران في نهاية البروتوكول الرئيسي. يتم عرض النتائج التمثيلية لكل من الفئران والجرذان ، مما يدل على نوع الناتج الذي يمكن توقعه مع الإجراءات الموصوفة. يتم إجراء مناقشة مستفيضة في نهاية هذه الورقة للتأكيد على إيجابيات وسلبيات التقنية ، والنقاط الحرجة ، وكذلك كيف يمكن استخدام مقتفيات الإشعاع PET المختلفة دون أي تعديل تقريبا على الخطوات التحضيرية واكتساب / إعادة البناء.

Protocol

تم إجراء التجارب على الحيوانات وفقا للتوصيات الواردة في دليل رعاية واستخدام المختبر للمبادئ التوجيهية الدولية بشأن التعامل مع المختبر ، التي يتطلبها التوجيه الأوروبي (التوجيه 86/609 / EEC لعام 1986 والتوجيه 2010/63 / UE) والقوانين الإيطالية (D.Lgs. 26/2014). 1. إعداد بروتوكولات التصوير ال?…

Representative Results

في هذا القسم ، يتم عرض النتائج النموذجية لكل من تحليل التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني والتصوير المقطعي المحوسب باتباع الإجراءات الموضحة حتى الآن. يوضح الشكل 6 نتائج التجزئة التلقائية لتجويف عضلة القلب والجهد المنخفض لفحص التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني [18</s…

Discussion

يركز البروتوكول المقدم في هذه الورقة على إجراء تجريبي نموذجي لأبحاث القلب والأوعية الدموية الانتقالية على نماذج الحيوانات الصغيرة لإصابات القلب باستخدام التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني / التصوير المقطعي المحوسب عالي الدقة. تشير النتائج المقدمة إلى القيمة الكمية والنوعية العالية …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تم دعم هذا البحث جزئيا من قبل مشروع “GUTMOM” JPI-HDHL-INTIMIC: سمنة الأمهات والخلل المعرفي في النسل: دور السبب والنتيجة لميكروبيوم الأمعاء والوقاية الغذائية المبكرة (المشروع رقم. INTIMIC-085 ، وزارة التعليم الإيطالية ، الجامعة ومرسوم البحث رقم 946/2019).

Materials

0.9% sterile saline Fresenius Kabi 0.9% sodium chloride for injection
1025L Physiological Monitoring Small Animal Instruments Physiological monitoring system for small animal imaging
5 mL syringes Artsana Syringes with needle for injection of PET tracer
Atomlab 500 Else Nuclear PET Dose calibrator
Atrium software Inviscan Version 1.5.5 PET/CT operating software
Butterfly catheters Delta Med 27.5 G needle
Carimas software Turku PET Center Version 2.10 Image analysis software
Fenestra VC Medilumine Lipid emulsion iodinated contrast agent for small animals
Heat lamp Heat lamp with clamp and switch
Insulin syringes Artsana Syringes with needle for injection of CT CA
Iomeron 400 mgI/mL Bracco Iomeprol, vascular contrast agent
IRIS PET/CT Inviscan PET/CT scanner for small animals
Isoflurane Zoetis Inhalation anesthetic, 250 mL
OneTouch Glucometer Johnson&Johnson Medical Glucose meter kit
Osirix MD software Pixmeo Version 11 Image analysis software
Oxygen Air liquide Compressed gas
Rectal probe for 1025L Small Animal Instruments Rectal probe with cable for SAII 1025L systems
Respiratory sensor for 1025L Small Animal Instruments Respiratory pillow with tubings for SAII 1025L systems
TJ-3A syringe pump Longer Motorized syringe pump for CT CA injection
DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Zaragoza, C. Animal models of cardiovascular diseases. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 497841 (2011).
  2. Russell, J. C., Proctor, S. D. Small animal models of cardiovascular disease: Tools for the study of the roles of metabolic syndrome, dyslipidemia, and atherosclerosis. Cardiovascular Pathology. 15 (6), 318-330 (2006).
  3. Riehle, C., Bauersachs, J. Small animal models of heart failure. Cardiovascular Research. 115 (13), 1838-1849 (2019).
  4. Menichetti, L., et al. MicroPET/CT imaging of αvß3 integrin via a novel 68Ga-NOTA-RGD peptidomimetic conjugate in rat myocardial infarction. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 40 (8), 1265-1274 (2013).
  5. Zhou, H., et al. Development of a micro-computed tomography-based image-guided conformal radiotherapy system for small animals. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 78 (1), 297-305 (2010).
  6. Di Lascio, N., Kusmic, C., Stea, F., Faita, F. Ultrasound-based pulse wave velocity evaluation in mice. Journal of Visualized Experiments. (120), e54362 (2017).
  7. Dann, M. M., et al. Quantification of murine myocardial infarct size using 2-D and 4-D high-frequency ultrasound. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 322 (3), 359-372 (2022).
  8. Espe, E. K. Novel insight into the detailed myocardial motion and deformation of the rodent heart using high-resolution phase contrast cardiovascular magnetic resonance. Journal of Cardiovascular Magnetic Resonance. 15 (1), 82 (2013).
  9. Vanhove, C., et al. Accurate molecular imaging of small animals taking into account animal models, handling, anaesthesia, quality control and imaging system performance. EJNMMI Physics. 2 (1), 31 (2015).
  10. Garcia, M. J., et al. State of the art: Imaging for myocardial viability: A scientific statement from the American Heart Association. Circulation: Cardiovascular Imaging. 13 (7), 000053 (2020).
  11. Panetta, D., et al. Cardiac computed tomography perfusion: Contrast agents, challenges and emerging methodologies from preclinical research to the clinics. Academic Radiology. 28 (1), 1-18 (2020).
  12. Kusmic, C. Up-regulation of heme oxygenase-1 after infarct initiation reduces mortality, infarct size and left ventricular remodeling: experimental evidence and proof of concept. Journal of Translational Medicine. 12 (1), 89 (2014).
  13. Muthuramu, I., Lox, M., Jacobs, F., De Geest, B. Permanent ligation of the left anterior descending coronary artery in mice: A model of post-myocardial infarction remodelling and heart failure. Journal of Visualized Experiments. (94), e52206 (2014).
  14. Fischer, M., et al. Comparison of metabolic and functional parameters using cardiac 18F-FDG-PET in early to mid-adulthood male and female mice. EJNMMI Research. 11 (1), 7 (2021).
  15. Valenta, I., et al. Feasibility evaluation of myocardial cannabinoid type 1 receptor imaging in obesity: A translational approach. JACC: Cardiovascular Imaging. 11 (2), 320-332 (2018).
  16. Fueger, B. J., et al. Impact of animal handling on the results of 18F-FDG PET studies in mice. Journal of Nuclear Medicine. 47 (6), 999-1006 (2006).
  17. . Carimas User Manual Available from: https://turkupetcentre.fl/carimas/files/archive/Html/a1.html (2022)
  18. Peters, A. M. Graphical analysis of dynamic data: The Patlak-Rutland plot. Nuclear Medicine Communications. 15 (9), 669-672 (1994).
  19. Choi, Y., et al. Parametric images of myocardial metabolic rate of glucose generated from dynamic cardiac PET and 2-[18F]fluoro-2-deoxy-d-glucose studies. Journal of Nuclear Medicine. 32 (4), 733-738 (1991).
  20. Laffon, E., Marthan, R. Is Patlak y-intercept a relevant metrics. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 48 (5), 1287-1290 (2021).
  21. Flores, J. E., McFarland, L. M., Vanderbilt, A., Ogasawara, A. K., Williams, S. -. P. The effects of anesthetic agent and carrier gas on blood glucose and tissue uptake in mice undergoing dynamic FDG-PET imaging: Sevoflurane and isoflurane compared in air and in oxygen. Molecular Imaging and Biology. 10 (4), 192-200 (2008).
  22. Ng, C. K. Sensitivity of myocardial fluorodeoxyglucose lumped constant to glucose and insulin. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 260 (2), 593-603 (1991).
  23. Shoghi, K. I., Welch, M. J. Hybrid image and blood sampling input function for quantification of small animal dynamic PET data. Nuclear Medicine and Biology. 34 (8), 989-994 (2007).
  24. Heuberger, J., Pixmeo, S., Rosset, A. OsiriX User Manual. Blurb. , (2017).
  25. Cerqueira, M. D., et al. Standardized myocardial segmentation and nomenclature for tomographic imaging of the heart. A statement for healthcare professionals from the Cardiac Imaging Committee of the Council on Clinical Cardiology of the American Heart Association. Circulation. 105 (4), 539-542 (2002).
  26. Kolanowski, T. J., et al. Multiparametric evaluation of post-MI small animal models using metabolic ([18F]FDG) and perfusion-based (SYN1) heart viability tracers. International Journal of Molecular Sciences. 22 (22), 12591 (2021).
  27. Guiducci, L., et al. Contribution of organ blood flow, intrinsic tissue clearance and glycaemia to the regulation of glucose use in obese and type 2 diabetic rats: A PET study. Nutrition Metabolism and Cardiovascular Diseases. 21 (9), 726-732 (2011).
  28. Tadinada, S. M., et al. Functional resilience of C57BL/6J mouse heart to dietary fat overload. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 321 (5), 850-864 (2021).
  29. Dreyfuss, A. D., et al. A novel mouse model of radiation-induced cardiac injury reveals biological and radiological biomarkers of cardiac dysfunction with potential clinical relevance. Clinical Cancer Research. 27 (8), 2266-2276 (2021).
  30. Hsu, B. PET tracers and techniques for measuring myocardial blood flow in patients with coronary artery disease. Journal of Biomedical Research. 27 (6), 452-459 (2013).
  31. Dinkel, J., et al. Intrinsic gating for small-animal computed tomography. Circulation: Cardiovascular Imaging. 1 (3), 235-243 (2008).
  32. Kuntz, J., et al. Fully automated intrinsic respiratory and cardiac gating for small animal CT. Physics in Medicine and Biology. 55 (7), 2069-2085 (2010).
  33. Li, Y., Zhang, W., Wu, H., Liu, G. Advanced tracers in PET imaging of cardiovascular disease. BioMed Research International. 2014, 504532 (2014).
  34. Kim, D. -. Y., Cho, S. -. G., Bom, H. -. S. Emerging tracers for nuclear cardiac PET imaging. Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 52 (4), 266-278 (2018).
  35. Maddahi, J., Packard, R. R. S. Cardiac PET perfusion tracers: Current status and future directions. Seminars in Nuclear Medicine. 44 (5), 333-343 (2014).
  36. Bentourkia, M. Kinetic modeling of PET data without blood sampling. IEEE Transactions on Nuclear Science. 52 (3), 697-702 (2005).
  37. Lammertsma, A. A. Forward to the past: The case for quantitative PET imaging. Journal of Nuclear Medicine. 58 (7), 1019-1024 (2017).
  38. Nahrendorf, M., et al. High-resolution imaging of murine myocardial infarction with delayed-enhancement cine micro-CT. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 292 (6), 3172-3178 (2007).
  39. Badea, C. T., Fubara, B., Hedlund, L. W., Johnson, G. A. 4-D micro-CT of the mouse heart. Molecular Imaging. 4 (2), 110-116 (2005).
  40. Technical Resources. MediLumine Available from: https://www.medilumine.com/technical-resources (2019)
  41. Nebuloni, L., Kuhn, G. A., Müller, R. A Comparative analysis of water-soluble and blood-pool contrast agents for in vivo vascular imaging with micro-CT. Academic Radiology. 20 (10), 1247-1255 (2013).
  42. Panetta, D., et al. Performance evaluation of the CT component of the IRIS PET/CT preclinical tomograph. Nuclear Instruments & Methods in Physics Research Section A: Accelerators Spectrometers Detectors and Associated Equipment. 805, 135-144 (2016).
  43. Gu, J., et al. At what dose can total body and whole abdominal irradiation cause lethal intestinal injury among C57BL/6J mice. Dose-Response. 18 (3), 1559325820956783 (2020).
  44. Amirrashedi, M., Zaidi, H., Ay, M. R. Advances in preclinical PET instrumentation. PET Clinics. 15 (4), 403-426 (2020).
  45. Clark, D. P., Badea, C. T. Advances in micro-CT imaging of small animals. Physica Medica. 88, 175-192 (2021).
  46. Belcari, N., Del Guerra, A., Panetta, D., Grupen, C., Buvat, I. High-Resolution and Animal Imaging Instrumentation and Techniques. Handbook of Particle Detection and Imaging. , 1497-1535 (2021).
  47. Wang, G., Rahmim, A., Gunn, R. N. PET Parametric imaging: Past, present, and future. IEEE Transactions on Radiation and Plasma Medical Sciences. 4 (6), 663-675 (2020).
  48. Befera, N. T., Badea, C. T., Johnson, G. A. Comparison of 4D-microSPECT and microCT for murine cardiac function. Molecular Imaging and Biology. 16 (2), 235-245 (2014).
  49. van Deel, E., Ridwan, Y., van Vliet, J. N., Belenkov, S., Essers, J. In vivo quantitative assessment of myocardial structure, function, perfusion and viability using cardiac micro-computed tomography. Journal of Visualized Experiments. (108), e53603 (2016).
  50. Lee, C. -. L., et al. Assessing cardiac injury in mice with dual energy-microCT, 4D-microCT and microSPECT imaging following partial-heart irradiation. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 88 (3), 686-693 (2014).
  51. Harms, H., et al. Comparison of clinical non-commercial tools for automated quantification of myocardial blood flow using oxygen-15-labelled water PET/CT. European Heart Journal – Cardiovascular Imaging. 15 (4), 431-441 (2013).
  52. Nesterov, S. V., et al. Myocardial perfusion quantitation with 15O-labelled water PET: High reproducibility of the new cardiac analysis software (CarimasTM). European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 36 (10), 1594-1602 (2009).
  53. Nesterov, S. V., et al. Myocardial perfusion quantification with Rb-82 PET: Good interobserver agreement of Carimas software on global, regional, and segmental levels. Annals of Nuclear Medicine. 36, 507-514 (2022).
  54. Nesterov, S. V., et al. One-tissue compartment model for myocardial perfusion quantification with N-13 ammonia PET provides matching results: A cross-comparison between Carimas, FlowQuant, and PMOD. Journal of Nuclear Cardiology. , (2021).
  55. Thackeray, J. T., Kuntner-Hannes, C., Haemisch, Y. Preclinical Multimodality Imaging and Image Fusion in Cardiovascular Disease. Image Fusion in Preclinical Applications. , 161-181 (2019).
  56. Vohra, R., Batra, A., Forbes, S. C., Vandenborne, K., Walter, G. A. Magnetic resonance monitoring of disease progression in mdx mice on different genetic backgrounds. The American Journal of Pathology. 187 (9), 2060-2070 (2017).
  57. Baehr, A., et al. Agrin promotes coordinated therapeutic processes leading to improved cardiac repair in pigs. Circulation. 142 (9), 868-881 (2020).
  58. Lalwani, K., et al. Contrast agents for quantitative microCT of lung tumors in mice. Comparative Medicine. 63 (6), 482-490 (2013).
  59. Bertoldo, A., et al. Evaluation of compartmental and spectral analysis models of [18F]FDG kinetics for heart and brain studies with PET. IEEE Transactions on Bio-medical Engineering. 45 (12), 1429-1448 (1998).
  60. Li, Y., Kundu, B. K. An improved optimization algorithm of the three-compartment model with spillover and partial volume corrections for dynamic FDG PET images of small animal hearts in vivo. Physics in Medicine and Biology. 63 (5), 055003 (2018).
  61. Mabrouk, R., Dubeau, F., Bentourkia, M., Bentabet, L. Extraction of time activity curves from gated FDG-PET images for small animals’ heart studies. Computerized Medical Imaging and Graphics. 36 (6), 484-491 (2012).

Tags

Cardiac PET/CTSmall Animal ImagingMyocardial InfarctionCardiometabolic DiseasesCardiac MetabolismCardiac FunctionF-18 FDGIomeprolCaudal Vein CannulationBlood SamplingAnesthesiaTemperature MonitoringRespiration MonitoringMotion Artifacts
check_url/kr/64066?article_type=t

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Cite This Article
Panetta, D., Guzzardi, M. A., La Rosa, F., Granziera, F., Terlizzi, D., Kusmic, C., Iozzo, P. High-Resolution Cardiac Positron Emission Tomography/Computed Tomography for Small Animals. J. Vis. Exp. (190), e64066, doi:10.3791/64066 (2022).
Download Citation
Reprints and Permissions

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image